Summary

En høy gjennomstrømning, høyt innhold og vannbasert C. elegans Pathosystem

Published: July 01, 2018
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokoll som er tilpasningsdyktige, hele vert, høyt innhold screeningsverktøy som kan brukes til å studere vert-patogen interaksjoner og brukes for medisiner.

Abstract

Antall nye stoffer identifisert av tradisjonelle i vitro skjermer har svekket, redusere suksessen til denne tilnærmingen i letingen etter nye våpen mot flere resistens. Dette har ført til konklusjonen at forskerne ikke trenger bare å finne nye stoffer, men må også utvikle nye måter å finne dem. Blant de mest lovende kandidaten metoder er hele-organisme, i vivo søk at bruk høy gjennomstrømning og fenotypiske readouts og vert som spenner fra Caenorhabditis elegans til Danio rerio. Disse vertene har flere kraftige fordeler, inkludert dramatiske reduksjoner i falske positive treff, som forbindelser som er giftige for vert og/eller biounavailable utelates vanligvis første skjermen før kostbare følge opp.

Her viser vi hvordan våre analysen er brukt til å forhøre vert variasjon i den godt dokumentert C. elegans,Pseudomonas aeruginosa flytende drap pathosystem. Vi viser også flere utvidelser av denne godt jobbet ut teknikken. For eksempel kan vi utføre høy gjennomstrømming genetisk skjermer bruker RNAi i 24 – eller 96-brønnen plate formater spørringen vert faktorer i denne verten-patogen samhandlingen. Bruker denne analysen, kan hele genomet skjermer gjennomføres på bare noen få måneder, som kan dramatisk forenkler oppgaven med å identifisere narkotika mål, potensielt uten behov for arbeidskrevende biokjemiske rensing tilnærminger.

Vi rapporterer også her en variant av vår metode som erstatter gram-positive bakterien Enterococcus faecalis for gram-negative patogen P. aeruginosa. Mye som er tilfellet for P. aeruginosa, er drepe av E. faecalis tidsavhengige. I motsetning til tidligere C. elegansE. faecalis analyser, analysen vår E. faecalis ikke krever preinfection, forbedre sin sikkerhet profil og redusere sjansene for forurensende væske-håndtering av utstyr. Analysen er svært robust, viser ~ 95% dødelighet 96 h innlegget infeksjon.

Introduction

Identifisering og utviklingen av effektive, bredspektret antibiotika, nå nesten et århundre siden, førte til et vannskille øyeblikk i folkehelsen der det var en utbredt tro at smittsomme sykdommer ville være en svøpe fortiden. I noen få korte tiår begynte optimismen å avta, som patogen etter patogen utviklet resistens som begrenset disse en gang mirakuløse behandlinger. For noen tid syntes våpenkappløp mellom drug discovery innsats og patogener balansert. Men har misbruk av poesi aksent nylig kulminerte i fremveksten av pan-resistente stammer av Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumanii, Serratia marcescensog P. aeruginosa1, 2,3,4.

P. aeruginosa er en opportunistisk, gram negativ, multi-Host patogen som er en alvorlig trussel for pasienter med alvorlige forbrenninger, som er nedsatt immunforsvar, eller har cystisk fibrose. Det er også stadig identifisert som en utløsende agent i alvorlig nosokomiale infeksjoner, spesielt på grunn av pågående oppkjøpet av resistensutvikling. For å begynne å ta denne trusselen, har vi brukt den veldokumenterte C. elegansP. aeruginosa infeksjon system5. Våre lab har utnyttet dette systemet for å utvikle en vannbasert, høy gjennomstrømning og høyt innhold screening plattform for å identifisere romanen forbindelser som begrenser patogen å drepe vert6. Intriguingly, synes disse forbindelsene å tilhøre minst tre generelle kategorier, inkludert poesi aksent7 og virulens hemmere8. Andre høyt innhold drug discovery analyser i C. elegans er rapportert for Mycobacterium tuberculosum, Chlamydia trachomatis, blodlegemer, Listeria monocytogenes, Francisella tularensis, Staphylococcus aureus, Candida albicans, og Enterococcus faecalis, blant annet9,10,11,12,13,14,15,16. Disse typer analyser har flere anerkjente fordeler, for eksempel begrense falske positive treff som kan være giftig for både verten og patogen, økt sannsynlighet for biotilgjengelighet sammenlignet med en kjemisk skjerm, og evnen til å identifisere treff utover bare begrense mikrobiell vekst, som anti-virulents, immun stimulerende molekyler eller forbindelser som ellers vipper vert-patogen samhandlingen for den tidligere balansen. I tillegg er forbindelser i disse skjermene ofte effektive i pattedyr verter.

Det er verdt å merke seg at minst to andre analyser17,18 er tilgjengelig til å utføre høy gjennomstrømming skjermer i C. elegans i væske. Hver av disse analyser er imidlertid en endring som lar prototypiske intestinal kolonisering analysen, kjent som sakte-drapet, utføres i væske, øke gjennomstrømming og gir forbindelser til screenes lettere. Forsiktig karakterisering har definitivt vist at mekanismer for bakteriell virulens er forskjellige mellom disse analyser og våre vannbasert skjermen7. Siden begge typer virulens er observert i pattedyr systemer, er det viktig å vurdere hvilke virulens determinant er mest relevante for den eksperimentator interesser før analysen valget.

Her viser vi en optimalisert versjon av den vannbasert C. elegans-P. aeruginosa analysen. Vi rapporterer også tilpasningen av vår vannbasert analysen metode å imøtekomme gram-positive bakteriell patogen Enterococcus faecalis. Som P. aeruginosa, er E. faecalis stadig identifisert som en alvorlig nosocomial trussel med en voksende armament resistensutvikling veier1. Selv om en tidligere metode for høy gjennomstrømming screening av E. faecalis finnes14, krever det preinfection med patogen, som kompliserer prosedyren og øker sannsynligheten for forurensende utstyr som COPAS FlowSort. Våre protokollen eliminerer behovet for pre-smitte, forbedre sikkerhet profilen. Til slutt, vi rapporterer et middel som en av disse analyser kan kombineres med mating RNAi, tillater brukeren å søke for vert faktorer som spiller en rolle i etableringen av, eller resistens mot infeksjon.

Protocol

Forsiktig: P. aeruginosa og E. faecalis er grad 2 patogener, og riktige sikkerhetsforanstaltninger må tas for å hindre utilsiktet infeksjon og for å redusere forurensning av overflater. Alle medier og materialer som kommer i kontakt med patogener må bli sterilisert og/eller forkastet. Ytterligere retningslinjene er tilgjengelig fra CDC publikasjonen biosikkerhet mikrobiologisk og biomedisinsk Laboratories (BMBL), 5th edition. 1. forberedelse og vedlikehold av P. aerugin…

Representative Results

Viktige parametere for analysen ytelse En riktig forståelse av biologi underliggende denne analysen er nødvendig for feilsøking og optimalisering analysen. Derfor, vi viser først til flere viktige papirer Klargjørende mekanismer av patogenesen av P. aeruginosa-mediert drap i flytende7,20. Forutsatt at fremgangsmåten ovenfor følges (se <strong cla…

Discussion

Denne analysen (eller lignende analyser der andre patogener ut P. aeruginosa eller E. faecalis) er nyttig for ulike formål, herunder medisiner. Det er også nyttig for å ta opp grunnleggende biologisk spørsmål, for eksempel identifisere virulens faktorer, utviklingen av vert forsvar trasé, og bestemme regulatoriske maskineriet involvert i interaksjonen som vert-patogen.

Selv om P. aeruginosa flytende drapet analysen er robust, finnes det flere punkter hvor forsi…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av kreftforebygging og Research Institute of Texas (CPRIT) Award RR150044, Welch Foundation Research Grant C-1930, og den nasjonale institutter for helse K22 AI110552 til NVK. Fond ikke hadde noen rolle i studien design, innsamling og analyse, beslutningen om å publisere eller utarbeidelse av manuskriptet.

Materials

COPAS FP BioSorter Union Biometrica Large object flow cytometer/worm sorter
Cytation 5 BioTek
EL406 Washer Dispenser BioTek
Multitron Pro Infors HT
24 Deep-Well RB Block Thermo Fisher Scientific CS15124
384-Well plate Greiner Bio-One MPG-781091
Nematode Growth Media (NGM) Amount per liter: 18 grams agar, 3 grams NaCl, 2.5 grams Peptone, 1 mL CaCl2 (1 M), 1 mL MgSO4 (1 M), 25 mL Phospate buffer, and 973 mL of milli-Q water
Slow Killing (SK) plates Amount per liter: 18 grams agar, 3 grams NaCl, 3.5 grams Peptone, 1 mL CaCl2 (1 M), 1 mL MgSO4 (1 M), 25 mL Phospate buffer, and 973 mL of milli-Q water
Slow Killing (SK) media Amount per liter:  3 grams NaCl, 3.5 grams Peptone, 1 mL CaCl2 (1 M), 1 mL MgSO4 (1 M), 25 mL Phosphate buffer, and 973 mL of milli-Q water
Lysogeny Broth (LB) USBiological Life Sciences L1520
Brian Heart Infusion broth (BHI) Research Products International Corp 50-488-526
Worm Bleach Solution Amount per 100 mL: 10 mL of 5 M NaOH solution, 20 mL of 5% Sodium Hypochlorite Solution, and 70 mL of sterile water
S Basal Amount per liter: 5.85 grams NaCl, 6 grams KH2PO4, 1 gram K2HPO4, and 1 Liter of milli-Q water
Agar USBiological Life Sciences A0930
NaCl USBiological Life Sciences S5000
Peptone USBiological Life Sciences P3300
CaCl2 USBiological Life Sciences
MgSO4 Fisher Scientific M63-500
Phospate buffer amount per liter: 132 mL of K2HPO4 (1M) and 868 mL of KH2PO4 (1M)
KH2PO4 Acros Organics 7778-77-0
K2HPO4 USBiological Life Sciences P5100
5% Sodium Hypochlorite Solution BICCA 7495.5-32
NaOH solution Fisher Scientific SS255-1
Breathe-easy Diversified Biotech BEM-1
SYTOX Orange Nucleic Acid Stain Fisher Scientific S11368
Bacterial Strains
P. aeruginosa (PA14)
E. faecalis(OG1RF)
E. coli superfood (OP50)
E. coli RNAi expressing bacteria (HT115)
Worm Strains
glp-4(bn2) (Beanan and Strome, 1992, PMID: 1289064)
PINK-1::GFP reporter (Kang et al., 2018, PMID: 29532717)

Referencias

  1. Falagas, M. E., et al. Pandrug-resistant Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii infections: Characteristics and outcome in a series of 28 patients. International Journal of Antimicrobial Agents. 32 (5), 450-454 (2008).
  2. Hsueh, P. R., et al. Pandrug-resistant Acinetobacter baumannii causing nosocomial infections in a university hospital, Taiwan. Emerging Infectious Diseases. 8 (8), 827-832 (2002).
  3. Wang, C. Y., et al. Pandrug-resistant Pseudomonas aeruginosa among hospitalised patients: clinical features, risk-factors and outcomes. Clinical Microbiology and Infection. 12 (1), 63-68 (2006).
  4. Yao, Y., et al. Draft genome sequences of pandrug-resistant Serratia marcescens clinical isolates harboring blaNDM-1. Genome Announcements. 5 (3), (2017).
  5. Utari, P. D., Quax, W. J. Caenorhabditis elegans reveals novel Pseudomonas aeruginosa virulence mechanism. Trends in Microbiology. 21 (7), 315-316 (2013).
  6. Conery, A. L., Larkins-Ford, J., Ausubel, F. M., Kirienko, N. V. High-throughput screening for novel anti-infectives using a C. elegans pathogenesis model. Current Protocols in Chemical Biology. 6 (1), 25-37 (2014).
  7. Kirienko, N. V., et al. Pseudomonas aeruginosa disrupts Caenorhabditis elegans iron homeostasis, causing a hypoxic response and death. Cell Host & Microbe. 13 (4), 406-416 (2013).
  8. Kirienko, D. R., Revtovich, A. V., Kirienko, N. V. A high-content, phenotypic screen identifies fluorouridine as an inhibitor of pyoverdine biosynthesis and pseudomonas aeruginosa virulence. mSphere. 1 (4), (2016).
  9. Manning, A. J., et al. A high content microscopy assay to determine drug activity against intracellular Mycobacterium tuberculosis. Methods. 127, 3-11 (2017).
  10. Marwaha, S., et al. N-acylated derivatives of sulfamethoxazole and sulfafurazole inhibit intracellular growth of Chlamydia trachomatis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 58 (5), 2968-2971 (2014).
  11. Kota, K. P., et al. Integrating high-content imaging and chemical genetics to probe host cellular pathways critical for Yersinia pestis infection. PLoS One. 8 (1), e55167 (2013).
  12. Arif, M., et al. Quantification of cell infection caused by Listeria monocytogenes invasion. Journal of Biotechnology. 154 (1), 76-83 (2011).
  13. Jayamani, E., et al. Characterization of a Francisella tularensis-Caenorhabditis elegans pathosystem for the evaluation of therapeutic compounds. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 61 (9), (2017).
  14. Moy, T. I., et al. High-throughput screen for novel antimicrobials using a whole animal infection model. ACS Chemical Biology. 4 (7), 527-533 (2009).
  15. Rajamuthiah, R., et al. Whole animal automated platform for drug discovery against multi-drug resistant Staphylococcus aureus. PLoS One. 9 (2), e89189 (2014).
  16. Breger, J., et al. Antifungal chemical compounds identified using a C. elegans pathogenicity assay. PLoS Pathogens. 3 (2), e18 (2007).
  17. Garvis, S., et al. Caenorhabditis elegans semi-automated liquid screen reveals a specialized role for the chemotaxis gene cheB2 in Pseudomonas aeruginosa virulence. PLoS Pathogens. 5 (8), e1000540 (2009).
  18. Zhou, Y. M., et al. An efficient and novel screening model for assessing the bioactivity of extracts against multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa using Caenorhabditis elegans. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 75 (9), 1746-1751 (2011).
  19. Leung, C. K., Deonarine, A., Strange, K., Choe, K. P. High-throughput screening and biosensing with fluorescent C. elegans strains. Journal of Visual Experiments. (51), (2011).
  20. Kirienko, N. V., Ausubel, F. M., Ruvkun, G. Mitophagy confers resistance to siderophore-mediated killing by Pseudomonas aeruginosa. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (6), 1821-1826 (2015).
  21. Kirienko, N. V., Cezairliyan, B. O., Ausubel, F. M., Powell, J. R. Pseudomonas aeruginosa PA14 pathogenesis in Caenorhabditis elegans. Methods in Molecular Biology. 1149, 653-669 (2014).
  22. Kang, D., Kirienko, D. R., Webster, P., Fisher, A. L., Kirienko, N. V. Pyoverdine, a siderophore from Pseudomonas aeruginosa, translocates into C. elegans, removes iron, and activates a distinct host response. Virulence. , 1-41 (2018).
  23. Garsin, D. A., et al. Long-lived C. elegans daf-2 mutants are resistant to bacterial pathogens. Science. 300 (5627), 1921 (2003).
  24. Estes, K. A., Dunbar, T. L., Powell, J. R., Ausubel, F. M., Troemel, E. R. bZIP transcription factor zip-2 mediates an early response to Pseudomonas aeruginosa infection in Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (5), 2153-2158 (2010).
  25. Tjahjono, E., Kirienko, N. V. A conserved mitochondrial surveillance pathway is required for defense against Pseudomonas aeruginosa. PLoS Genetics. 13 (6), e1006876 (2017).
  26. Moy, T. I., et al. Identification of novel antimicrobials using a live-animal infection model. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (27), 10414-10419 (2006).
  27. Henderson, S. T., Bonafe, M., Johnson, T. E. daf-16 protects the nematode Caenorhabditis elegans during food deprivation. The Journals of Gerontology. Series A, Biological Sciences and Medical Sciences. 61 (5), 444-460 (2006).
  28. Beanan, M. J., Strome, S. Characterization of a germ-line proliferation mutation in C. elegans. Development. 116 (3), 755-766 (1992).

Play Video

Citar este artículo
Anderson, Q. L., Revtovich, A. V., Kirienko, N. V. A High-throughput, High-content, Liquid-based C. elegans Pathosystem. J. Vis. Exp. (137), e58068, doi:10.3791/58068 (2018).

View Video