Summary

Dobbelt-strenget RNA Oral leveringsmetoder til at fremkalde RNA-interferens i Phloem og plante-sap-fodring Hemipteran insekter

Published: May 04, 2018
doi:

Summary

Denne artikel viser romanen teknikker udviklet til oral levering af dobbelt-strenget RNA (dsRNA) gennem de kardiovaskulære væv af planter til RNA-interferens (RNAi) i phloem sap fodring insekter.

Abstract

Phloem og plante sap fodring insekter invadere integriteten af afgrøder og frugter til at hente næringsstoffer, i at beskadige fødevareafgrøder. Hemipteran insekter tegner sig for en antallet af økonomisk betydelig skadegørere på planter, der forårsager skader på afgrøder ved at fodre på phloem sap. Brun marmorated stank bug (BMSB), Halyomorpha halys (tæger: Pentatomidae) og den asiatiske citrus psyllid (AVS), Diaphorina citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) er hemipteran skadedyr indført i Nordamerika, hvor de er en invasiv landbrugs skadedyr af høj værdi speciale, træk, og korte afgrøder og citrusfrugter samt en gene skadedyr, når de samlede indendørs. Insekticidresistens hos mange arter har ført til udviklingen af alternative metoder til pest forvaltningsstrategier. Dobbelt-strenget RNA (dsRNA)-medieret RNA-interferens (RNAi) er en genhæmning mekanisme for funktionelle genomisk undersøgelser, der har potentielle anvendelsesmuligheder som et værktøj til styring af skadedyr. Eksogent syntetiserede dsRNA eller små interfererende RNA (siRNA) kan udløse højeffektive genhæmning gennem nedbrydningen af endogene RNA, som er homolog til der præsenteres. Effektiv og miljømæssig anvendelse af RNAi som Molekylær biopesticider for biocontrol af hemipteran insekter kræver i vivo levering af dsRNAs gennem fodring. Her vi vise metoder til levering af dsRNA til insekter: Ilægning af dsRNA i grønne bønner ved nedsænkning, og absorbere af gen-specifikke dsRNA med oral levering gennem indtagelse. Vi har også skitseret ikke-transgene planter levering metoder ved hjælp af Blandtegning sprays, roden gennembløde, trunk injektioner samt ler granulat, som kan være afgørende for vedvarende frigivelse af dsRNA. Effektiv levering af oralt indtaget dsRNA blev bekræftet som en effektiv dosis til at fremkalde et betydeligt fald i udtryk for målrettede gener, som unge hormon syre O-methyltransferase (JHAMT) og vitellogeninproduktion (Vg). Disse innovative metoder repræsenterer strategier for levering af dsRNA til brug i plantebeskyttelsesmidler og overvinde miljømæssige udfordringer for Plantebeskyttelse og skadedyr.

Introduction

Hemipteran insekter omfatter nogle af de mest økonomisk betydningsfulde skadedyr af agriculturebecause af deres evne til nå forhøjede befolkningstilvækst og sprede sygdomme i planter. BMSB, H. halys Stål, er en invasiv skadedyr, der indførtes ved et uheld i den vestlige halvkugle i Allentown, Pennsylvania fra Asien (Kina, Taiwan, Korea og Japan) med den første observation rapporteret i 19961. Siden introduktionen, BMSB er blevet opdaget i 43 stater, med de højeste populationer i Midtatlanten (DE, MD, PA, NJ, VA, og WV) samt i Canada og Europa, og repræsenterer en potentiel trussel mod landbrug2. Som en polyphagous pest, kan BMSB tilskynde til skader på ca. 300 identificerede plante værter herunder høj værdi afgrøder såsom æbler, druer, prydplanter, frøafgrøder, sojabønner og majs. Skader skyldes primært skyldes tilstanden af fodring, kendt som lacerate og flush, hvor dyret gennemborer vært afgrøde med sit nål-lignende stylet til at få adgang til næringsstofferne fra kardiovaskulære væv2,3. BMSB er også en indendørs skadedyr, som de kan finde residence i levende områder såsom skoler og huse i løbet af efteråret-vinter2. Kemikalier og aeroallergens udgivet af BMSB blev rapporteret til ulovlig allergisk reaktion i frugt afgrøde arbejdstagere. BMSB kan også bidrage til allergisk sygdom fører til kontakteksem, konjunktivitis og rhinitis i følsomme individer4,5. En anden hemipteran insekt, ACP, D. citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae), er et alvorligt skadedyr af citrusfrugter og transmitterer phloem-limited bakterier (blev Liberibacter asiaticus) forårsager Huanglongbing (HLB), bedre kendt som citrus grønnere sygdom6,7. HLB blev først rapporteret fra det sydlige Kina og har spredt sig til 40 forskellige asiatiske, Afrika, Oceanien, syd- og nordamerikanske lande7. Citrus grønnere er et verdensomspændende problem med truende økonomiske og finansielle tab som følge af citrusfrugter tab; forvaltningen af AVS-anses derfor, af allerstørste betydning for forebyggelse og bekæmpelse af HLB.

Foranstaltninger til effektiv bekæmpelse af disse skadedyr normalt kræver anvendelse af kemiske pesticider, der er relativt korte levede. Kemiske insekticid kontrolstrategier ofte mangler sikkert miljøforvaltning strategier eller faldet modtagelighed af pesticid modstand i pest populationer8,9. Derfor, biologisk bekæmpelse af skadedyr med molekylær biopesticider er en potentiel alternativ, men dets brug forbliver globalt beskedent, og forskellige arter af parasitoider (f.eks. Trisolcus japonicus) kan også være effektive som naturlige biologiske kontrol. RNAi er en potentiel emerging teknologi til styring af invasive skadedyr med molekylær biopesticider10. RNAi er en godt beskrevet gen reguleringsmekanisme, der letter effektiv posttranskriptionelle genhæmning af endogene samt invaderer dsRNAs i en sekvens-specifikke måde, der i sidste ende fører til regulering af genekspression på mRNA niveau11,12. Kort, når eksogene dsRNA er internaliseret i en celle, det er forarbejdet til siRNAs af et medlem af bidentate nukleasen RNase III superfamilien, kaldet Dicer, som er evolutionært bevaret i worms, fluer, planter, svampe og pattedyr13, 14 , 15. disse 21-25 nukleotid siRNA dobbelthuse er derefter afvikles og integreret i RNA-induceret silencing complex (RISC) som guide RNA’er. Dette RISC-RNA kompleks tillader Watson-Crick base parring til den supplerende målrette mRNA; Dette fører i sidste ende til spaltning af Argonaute proteinet, en multi-domæne protein som indeholder et RNase H-lignende domæne, som nedbryder den tilsvarende mRNA og reducerer protein oversættelse, hvilket førte til posttranskriptionelle genhæmning16 , 17 , 18.

RNAi for Plantebeskyttelse og skadedyr kræver indførelse af dsRNA i vivo til tavshed gen af interesse, hvorved aktivering siRNA pathway. Forskellige metoder, der har været brugt i dsRNA levering til insekter og insekt celler til at fremkalde systemisk RNAi omfatter fodring10,19, iblødsætning20,21, mikroinjektion22, luftfartsselskaber som Liposomer 23, og andre teknikker24. RNAi blev først demonstreret i Caenorhabditis elegans til tavshed unc-22 genekspression af brand og Mello25, efterfulgt af knockdown i udtryk for de frizzled gener i Drosophila melanogaster26. Indledende funktionelle studier udnyttet mikroinjektion for at levere dsRNA i insekter, som Apis mellifera22,27, Acyrthosiphon pisum28, Blattella germanica29, H. halys30, og Lepidoptera insekter (gennemgået af Terenius et al. 31). mikroinjektion er fordelagtigt at levere en nøjagtig og præcis dosis til webstedet af interesse i insektet. Omend sådanne septisk punkteringer kan fremkalde udtryk for immun relaterede gener på grund af traumer32, derfor udelukke dets praktiske i landbruget biopesticider udvikling.

En anden metode i levere dsRNA i vivo er ved opblødning, som indebærer indtagelse eller absorption af dsRNA ved inddragelse af dyr eller celler generelt i ekstracellulær medium indeholdende dsRNA. Iblødsætning har været anvendt til effektivt fremkalde RNAi i Drosophila S2 vævskultur celler til at hæmme Downstream-af-Raf1 (DSOR1) mitogen-aktiveret protein kinase kinase (MAPKK)20samt i C. elegans til tavshed i pos-1 gen33. Men dsRNA leveres ved hjælp af iblødsætning er mindre effektiv til at fremkalde RNAi sammenlignet med mikroinjektion20. RNAi medieret tavshed i en chewing insekt blev første gang vist i vestlige majs-rodorm (VIF) (Diabrotica virgifera virgifera) ved infusion af dsRNA i en kunstig agar kost10. Tidligere rapporter har opsummeret metoder til at levere dsRNA infunderes i naturlig kost specifikke for leddyr34. Disse leveringsmetoder blev yderligere fast besluttet på at være forholdsvis effektiv til kunstige midler til levering; som sagen om tsetsefluen (Glossina morsitans morsitans), hvor lig knockdown af en immun-relaterede gen blev observeret, da dsRNA blev leveret enten gennem blod måltid eller microinjected35. Ligeledes levering af dsRNA gennem dråberne i lys brun æble moth (Epiphyas postvittana)36, diamondback moth (Plutella xylostella) larver37, såvel som honning bier38,39 induceret effektiv RNAi. Mest effektive RNAi eksperimenter i hemipteran har udnyttet injektion af dsRNA40 , fordi oral levering af dsRNA i hemipteran insekter er vanskelig, da det skal være leveret gennem anlægget vært kardiovaskulære væv. Effektiv RNAi blev også observeret i AVS-landene og glasagtig-vinget skarpskytte leafhopper (GWSS), Homalodisca vitripennis: dsRNA blev leveret gennem citrus og vinstokke, der havde absorberet dsRNA i kardiovaskulære væv gennem rod gennembløde, bladgødning sprøjtemidler, trunk injektioner eller absorption af stiklinger41,42,43,44,45,46. Dette resulterede også i det første patent for dsRNA mod AVS-landene (2016, os 20170211082 A1). Levering af siRNA og dsRNA ved hjælp af luftfartsselskaber som nanopartikler og Liposomer bibringer stabilitet, og stigninger i leverede dsRNA effektivitet er hurtigt på vej23,47,48,49 ,50. En ny klasse af nanopartikler-baserede levering køretøjer til nukleinsyrer for in vitro- og i vivo der blev opsummeret specielt til terapeutiske applikationer kan give enorme potentiale som egnet levering vektorer51. Nanopartikler som fremføringsmiddel for dsRNA kan have ulemper herunder opløselighed, hydrophobicity eller begrænset bioakkumulering52, men en egnet polymer medvirken levering kan opveje disse ulemper. Udvikling og anvendelse af selvstændige levere nukleotider også nye kaldet ‘antisense oligonukleotider’, som er enkelt strandede RNA/DNA dobbelthuse46.

Vitellogenesen i leddyr er en nøglen proces kontrol reproduktion og reguleret af juvenile hormon (JH) eller ecdysone, som er de vigtigste induktorer af Vg syntese af kropsfedt; Vg tages i sidste ende op af den udvikle oocyt via Vg receptor medieret endocytose53. VG er en gruppe af polypeptider syntetiseret extraovarially, som er afgørende for udviklingen af store æg æggeblomme protein, vitellin54,55, og derfor er det vigtigt i reproduktion og aldring56. VG har været succesfuldt tavshed i nematoder57 samt i honningbi (Apis mellifera) hvor RNAi medieret nedbrydning af Vg blev observeret i voksne og æg22. RNAi medieret posttranskriptionelle genhæmning af Vg blev testet, fordi man troede dens udtynding ville føre til en observerbar fænotypiske effekt som nedsat fertilitet og frugtbarhed, potentielt støtte i BMSB kontrol. JHAMT genet, der koder til S-adenosyl-L-methionin (SAM)-afhængige JH syre O-methyltransferase, katalyserer det sidste trin af JH biosyntese pathway58. I denne vej farnesyl omdannes pyrofosfat (FPP) sekventielt fra farnesol, at farnesoic syre efterfulgt af konvertering af methyl farnesoate til JH af JHAMT. Denne vej er bevaret i insekter og leddyr specielt til forvandling, en proces, der reguleres udviklingshæmmede af hormoner59,60,61. I B. morityder JHAMT genekspression og JH biosyntetiske aktivitet i Corpora allata på, at det transkriptionel undertrykkelse af JHAMT -genet er afgørende for opsigelse af JH biosyntesen58. Derfor, JHAMT og Vg generne blev udvalgt til målrettede nedbrydningen ved hjælp af RNAi. RNAi blev også testet i citrus træer for kontrol af AVS- og GWSS. Citrus træer blev behandlet med dsRNA gennem rod gennembløde, dæmme op for hanen (trunk injektioner), samt blade spray med dsRNAs mod insekt specifikke arginin kinase (AK) udskrifter42,44. Den topikal applikation af dsRNA blev registreret over baldakinen af citrus træer, der angiver effektiv levering gennem planter kardiovaskulære væv, og resulterede i øget dødelighed i AVS-landene og GWSS41,42, 45.

I den aktuelle undersøgelse, har vi identificeret en naturlig kost leveringsmetode for behandlinger som dsRNA. Dette nyudviklede teknik blev senere brugt til silencing JHAMT og Vg mRNA ved hjælp af genet specifikke dsRNAs i BMSB nymfer som vist tidligere62. Disse nye levering protokoller demonstreret her erstatter konventionelle RNA leveringssystemer, der bruger aktuelt sprays eller microinjections. Grøntsager og frugter, stilken tap, jord drenching og ler absorptionsmidler i kan bruges til levering af dsRNA, som er afgørende for den fortsatte udvikling af biopesticide pest og patogen ledelse.

Protocol

1. BMSB opdræt Bageste BMSB insekter som standard lab praksis og tidligere beskrevne63. Hæve ACP (D. citri) insekter på Citrus macrophylla i et drivhus (22 ° C) og naturligt lys. Brug adult AVS, på ca. 5-7 dage post eclosion. 2. udvælgelse af genet regioner og In Vitro syntese af dsRNA Vælg gener bestemt til BMSB fra tidligere udgivne transkriptom profiler32. Sikre re…

Representative Results

Vegetabilske medieret dsRNA levering gennem fodring i BMSB 4th instar nymfer blev testet for udvikling af molekylære biopesticider ved hjælp af RNAi for invasive skadedyr. BMSBs foder ved hjælp af deres nål-lignende stylets af en mekanisme, der er kendt som lacerate og skyl, som forårsager betydelig skade på afgrøder. Slank økologisk grønne bønner, P. vulgaris L., blev brugt til at teste, hvis næringsstoffer eller dsRNA kunne leveres i vivo til BMSB…

Discussion

RNAi har vist sig for at være et vigtigt redskab til at udforske gen biologiske funktion og regulering, med stort potentiale til at blive udnyttet til styring af skadedyr19,68,69,70, 71. design og valget af en passende molekylærgenetisk for genhæmning i en given insektarter og metode til levering af den tilsvarende dsRNA(s) til insekt er begge af allerstø…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne parlamentsarbejdet Donald Weber og Megan Herlihy (USDA, ARS Beltsville, MD) for at give BMSB og HB for eksperimenter og vedligeholde kolonier; og Maria T. Gonzalez Salvador P. Lopez (USDA, ARS, og Fort Pierce, FL), og Jackie L. Metz (University of Florida, Fort Pierce, FL) for kolonien vedligeholdelse, forberedelse af prøver og analyser.

Materials

BMSB (H. halys) insects  USDA
ACP (D. citri) insects  USDA
organic green beans N/A
Citrus plants USDA
sodium hypochlorite solution J.T. Baker
green food coloring  McCormick & Co., Inc
Thermo Forma chambers  Thermo Fisher Scientific
Magenta vessel (Culture) Sigma
Primers  IDT DNA
SensiMix SYBR Bioline
qPCR ABI 7500 Applied Biosystems 
Spray bottle N/A
Parafilm American Can Company
TaKaRa Ex Taq Clontech
QIAquick Qiagen

Referencias

  1. Hoebeke, E. R., Carter, M. E. . Halyomorpha halys (Stǻl)(Heteroptera: Pentatomidae): a polyphagous plant pest from Asia newly detected in North America. , (2003).
  2. Leskey, T. C., Hamilton, G. C., et al. Pest Status of the Brown Marmorated Stink Bug, Halyomorpha Halys in the USA. Outlooks on Pest Management. 23 (5), 218-226 (2012).
  3. Peiffer, M., Felton, G. W. Insights into the Saliva of the Brown Marmorated Stink Bug Halyomorpha halys (Hemiptera: Pentatomidae). PloS one. 9 (2), e88483 (2014).
  4. Anderson, B. E., Miller, J. J., Adams, D. R. Irritant contact dermatitis to the brown marmorated stink bug, Halyomorpha halys. Dermatitis : contact, atopic, occupational, drug. 23 (4), 170-172 (2012).
  5. Mertz, T. L., Jacobs, S. B., Craig, T. J., Ishmael, F. T. The brown marmorated stinkbug as a new aeroallergen. The Journal of allergy and clinical immunology. 130 (4), 999-1001 (2012).
  6. McClean, A. P. D., Schwarz, R. E. Greening or blotchy-mottle disease of citrus. Phytophylactica. 2 (3), 177-194 (2012).
  7. Bové, J. M. Huanglongbing: a destructive, newly-emerging, century-old disease of citrus. Journal of Plant Pathology. 88 (1), 7-37 (2006).
  8. Kuhar, T., Morrison, R., Leskey, T., Aigner, J. . Integrated pest management for brown marmorated stink bug in vegetables. , (2016).
  9. Tiwari, S., Mann, R. S., Rogers, M. E., Stelinski, L. L. Insecticide resistance in field populations of Asian citrus psyllid in Florida. Pest management science. 67 (10), 1258-1268 (2011).
  10. Baum, J. A., Bogaert, T., et al. Control of coleopteran insect pests through RNA interference. Nature Biotechnology. 25 (11), 1322-1326 (2007).
  11. Hannon, G. J. RNA interference. Nature. 418 (6894), 244-251 (2002).
  12. Mello, C. C., Conte, D. Revealing the world of RNA interference. Nature. 431 (7006), 338-342 (2004).
  13. Macrae, I. J., Zhou, K., et al. Structural basis for double-stranded RNA processing by Dicer. Science(New York, N.Y.). 311 (5758), 195-198 (2006).
  14. Bernstein, E., Caudy, A. A., Hammond, S. M., Hannon, G. J. Role for a bidentate ribonuclease in the initiation step of RNA interference. Nature. 409 (6818), 363-366 (2001).
  15. Ketting, R. F., Fischer, S. E., Bernstein, E., Sijen, T., Hannon, G. J., Plasterk, R. H. Dicer functions in RNA interference and in synthesis of small RNA involved in developmental timing in C. elegans. Genes & development. 15 (20), 2654-2659 (2001).
  16. Agrawal, N., Dasaradhi, P. V. N., Mohmmed, A., Malhotra, P., Bhatnagar, R. K., Mukherjee, S. K. RNA interference: biology, mechanism, and applications. Microbiology and molecular biology reviews : MMBR. 67 (4), 657-685 (2003).
  17. Martinez, J., Patkaniowska, A., Urlaub, H., Lührmann, R., Tuschl, T. Single-stranded antisense siRNAs guide target RNA cleavage in RNAi. Cell. 110 (5), 563-574 (2002).
  18. Bartel, D. P. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell. 116 (2), 281-297 (2004).
  19. Timmons, L., Fire, A. Specific interference by ingested dsRNA. Nature. 395 (6705), 854 (1998).
  20. Clemens, J. C., Worby, C. A., et al. Use of double-stranded RNA interference in Drosophila cell lines to dissect signal transduction pathways. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (12), 6499-6503 (2000).
  21. Saleh, M. C., van Rij, R. P., et al. The endocytic pathway mediates cell entry of dsRNA to induce RNAi silencing. Nature cell biology. 8 (8), 793-802 (2006).
  22. Amdam, G. V., Simões, Z. L. P., Guidugli, K. R., Norberg, K., Omholt, S. W. Disruption of vitellogenin gene function in adult honeybees by intra-abdominal injection of double-stranded RNA. BMC biotechnology. 3, 1 (2003).
  23. Whyard, S., Singh, A. D., Wong, S. Ingested double-stranded RNAs can act as species-specific insecticides. Insect biochemistry and molecular biology. 39 (11), 824-832 (2009).
  24. Huvenne, H., Smagghe, G. Mechanisms of dsRNA uptake in insects and potential of RNAi for pest control: a review. Journal of Insect Physiology. 56 (3), 227-235 (2010).
  25. Fire, A., Xu, S., Montgomery, M. K., Kostas, S. A., Driver, S. E., Mello, C. C. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391 (6669), 806-811 (1998).
  26. Kennerdell, J. R., Carthew, R. W. Use of dsRNA-mediated genetic interference to demonstrate that frizzled and frizzled 2 act in the wingless pathway. Cell. 95 (7), 1017-1026 (1998).
  27. Gatehouse, H. S., Gatehouse, L. N., Malone, L. A. Amylase activity in honey bee hypopharyngeal glands reduced by RNA interference. Journal of Apicultural. , (2004).
  28. Jaubert-Possamai, S., Le Trionnaire, G., Bonhomme, J., Christophides, G. K., Rispe, C., Tagu, D. Gene knockdown by RNAi in the pea aphid Acyrthosiphon pisum. BMC biotechnology. 7, 63 (2007).
  29. Martín, D., Maestro, O., Cruz, J., Mané-Padrós, D., Bellés, X. RNAi studies reveal a conserved role for RXR in molting in the cockroach Blattella germanica. Journal of Insect Physiology. 52 (4), 410-416 (2006).
  30. Bansal, R., Mittapelly, P., Chen, Y., Mamidala, P., Zhao, C., Michel, A. Quantitative RT-PCR Gene Evaluation and RNA Interference in the Brown Marmorated Stink Bug. PloS one. 11 (5), e0152730 (2016).
  31. Terenius, O., Papanicolaou, A., et al. RNA interference in Lepidoptera: an overview of successful and unsuccessful studies and implications for experimental design. Journal of Insect Physiology. 57 (2), 231-245 (2011).
  32. Sparks, M. E., Shelby, K. S., Kuhar, D., Gundersen-Rindal, D. E. Transcriptome of the Invasive Brown Marmorated Stink Bug, Halyomorpha halys (Stål) (Heteroptera: Pentatomidae). PloS one. 9 (11), e111646 (2014).
  33. Tabara, H., Grishok, A., Mello, C. C. RNAi in C. elegans: soaking in the genome sequence. Science (New York, N.Y.). 282 (5388), 430-431 (1998).
  34. Baum, J. A., Roberts, J. K. Chapter Five – Progress Towards RNAi-Mediated Insect Pest Management. Insect Midgut and Insecticidal Proteins. 47, 249-295 (2014).
  35. Walshe, D. P., Lehane, S. M., Lehane, M. J., Haines, L. R. Prolonged gene knockdown in the tsetse fly Glossina by feeding double stranded RNA. Insect Molecular Biology. 18 (1), 11-19 (2009).
  36. Turner, C. T., Davy, M. W., MacDiarmid, R. M., Plummer, K. M., Birch, N. P., Newcomb, R. D. RNA interference in the light brown apple moth, Epiphyas postvittana (Walker) induced by double-stranded RNA feeding. Insect Molecular Biology. 15 (3), 383-391 (2006).
  37. Bautista, M. A. M., Miyata, T., Miura, K., Tanaka, T. RNA interference-mediated knockdown of a cytochrome P450, CYP6BG1, from the diamondback moth, Plutella xylostella, reduces larval resistance to permethrin. Insect biochemistry and molecular biology. 39 (1), 38-46 (2009).
  38. Maori, E., Paldi, N., et al. IAPV, a bee-affecting virus associated with Colony Collapse Disorder can be silenced by dsRNA ingestion. Insect Molecular Biology. 18 (1), 55-60 (2009).
  39. Hunter, W., Ellis, J., Hayes, J., Westervelt, D., Glick, E. Large-scale field application of RNAi technology reducing Israeli acute paralysis virus disease in honey bees (Apis mellifera, Hymenoptera: Apidae). PLoS Pathogens. 6 (12), e1001160 (2010).
  40. Christiaens, O., Smagghe, G. The challenge of RNAi-mediated control of hemipterans. Current Opinion in Insect Science. 6, 15-21 (2014).
  41. Hunter, W. B., Hail, D., Tipping, C., Paldi, N. RNA interference to reduce sharpshooters, the glassy-winged sharpshooter, and the Asian citrus psyllid. Symposium. , 24-27 (2010).
  42. Hunter, W. B., Glick, E., Paldi, N., Bextine, B. R. Advances in RNA interference: dsRNA treatment in trees and grapevines for insect pest suppression. Southwestern Entomologist. , (2012).
  43. Hail, D. A., Dowd, S., Hunter, W. H., Bextine, B. R. Investigating the transcriptome of the potato psyllid (Bactericera cockerelli): toward an RNAi based management strategy. , 183-186 (2010).
  44. de Andrade, E. C., Hunter, W. B. RNA Interference-Natural Gene-Based Technology for Highly Specific Pest Control (HiSPeC). RNA INTERFERENCE. , (2016).
  45. Taning, C. N. T., Andrade, E. C., Hunter, W. B., Christiaens, O., Smagghe, G. Asian Citrus Psyllid RNAi Pathway – RNAi evidence. Scientific reports. 6, 38082 (2016).
  46. Andrade, E. C., Hunter, W. B. RNAi feeding bioassay: development of a non-transgenic approach to control Asian citrus psyllid and other hemipterans. Entomologia Experimentalis et Applicata. 162 (3), 389-396 (2017).
  47. Joga, M. R., Zotti, M. J., Smagghe, G., Christiaens, O. RNAi Efficiency, Systemic Properties, and Novel Delivery Methods for Pest Insect Control: What We Know So Far. Frontiers in physiology. 7, 553 (2016).
  48. Zhang, X., Zhang, J., Zhu, K. Y. Chitosan/double-stranded RNA nanoparticle-mediated RNA interference to silence chitin synthase genes through larval feeding in the African malaria mosquito (Anopheles gambiae). Insect Molecular Biology. 19 (5), 683-693 (2010).
  49. Li-Byarlay, H., Li, Y., et al. RNA interference knockdown of DNA methyl-transferase 3 affects gene alternative splicing in the honey bee. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (31), 12750-12755 (2013).
  50. Das, S., Debnath, N., Cui, Y., Unrine, J., Palli, S. R. Chitosan, Carbon Quantum Dot, and Silica Nanoparticle Mediated dsRNA Delivery for Gene Silencing in Aedes aegypti: A Comparative Analysis. ACS applied materials & interfaces. 7 (35), 19530-19535 (2015).
  51. Nimesh, S. Recent patents in siRNA delivery employing nanoparticles as delivery vectors. Recent patents on DNA & gene sequences. 6 (2), 91-97 (2012).
  52. Draz, M. S., Fang, B. A., et al. Nanoparticle-mediated systemic delivery of siRNA for treatment of cancers and viral infections. Theranostics. 4 (9), 872-892 (2014).
  53. Swevers, L., Raikhel, A. S., Sappington, T. W. Vitellogenesis and post-vitellogenic maturation of the insect ovarian follicle. Comprehensive. , (2005).
  54. Tufail, M., Takeda, M. Molecular characteristics of insect vitellogenins. Journal of Insect Physiology. 54 (12), 1447-1458 (2008).
  55. Hagedorn, H. H., Kunkel, J. G. Vitellogenin and vitellin in insects. Annual review of entomology. , (1979).
  56. Brandt, B. W., Zwaan, B. J., Beekman, M. Shuttling between species for pathways of lifespan regulation: a central role for the vitellogenin gene family?. Bioessays. , (2005).
  57. Murphy, C. T., McCarroll, S. A., et al. Genes that act downstream of DAF-16 to influence the lifespan of Caenorhabditis elegans. Nature. 424 (6946), 277-283 (2003).
  58. Shinoda, T., Itoyama, K. Juvenile hormone acid methyltransferase: a key regulatory enzyme for insect metamorphosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (21), 11986-11991 (2003).
  59. Bellés, X. Beyond Drosophila: RNAi in vivo and functional genomics in insects. Annual review of entomology. 55, 111-128 (2010).
  60. Nouzova, M., Edwards, M. J., Mayoral, J. G., Noriega, F. G. A coordinated expression of biosynthetic enzymes controls the flux of juvenile hormone precursors in the corpora allata of mosquitoes. Insect biochemistry and molecular biology. 41 (9), 660-669 (2011).
  61. Huang, J., Marchal, E., Hult, E. F., Tobe, S. S. Characterization of the juvenile hormone pathway in the viviparous cockroach, Diploptera punctata. PloS one. 10 (2), e0117291 (2015).
  62. Ghosh, S. K. B., Hunter, W. B., Park, A. L., Gundersen-Rindal, D. E. Double strand RNA delivery system for plant-sap-feeding insects. PloS one. 12 (2), e0171861 (2017).
  63. Khrimian, A., Zhang, A., et al. Discovery of the aggregation pheromone of the brown marmorated stink bug (Halyomorpha halys) through the creation of stereoisomeric libraries of 1-bisabolen-3-ols. Journal of natural products. 77 (7), 1708-1717 (2014).
  64. Hall, D. G., Richardson, M. L., El-Desouky, A., Halbert, S. E. Asian citrus psyllid, Diaphorina citri, vector of citrus huanglongbing disease. Entomologia Experimentalis et Applicata. 146 (2), 207-223 (2012).
  65. Murphy, K. A., Tabuloc, C. A., Cervantes, K. R., Chiu, J. C. Ingestion of genetically modified yeast symbiont reduces fitness of an insect pest via RNA interference. Scientific reports. 6, 22587 (2016).
  66. San Miguel, ., K, J. G., Scott, The next generation of insecticides: dsRNA is stable as a foliar-applied insecticide. Pest management science. 72 (4), 801-809 (2016).
  67. Li, H., Guan, R., Guo, H., Miao, X. New insights into an RNAi approach for plant defence against piercing-sucking and stem-borer insect pests. Plant, cell & environment. 38 (11), 2277-2285 (2015).
  68. Hull, D., Timmons, L. Methods for delivery of double-stranded RNA into Caenorhabditis elegans. Methods in molecular biology (Clifton, N.J.). 265, 23-58 (2004).
  69. Timmons, L., Court, D. L., Fire, A. Ingestion of bacterially expressed dsRNAs can produce specific and potent genetic interference in Caenorhabditis elegans. Gene. 263 (1-2), 103-112 (2001).
  70. Burand, J. P., Hunter, W. B. RNAi: future in insect management. Journal of Invertebrate Pathology. 112 Suppl, S68-S74 (2013).
  71. Rodrigues, T. B., Figueira, A. . Management of Insect Pest by RNAi-A New Tool for Crop Protection. , (2016).
  72. Baumann, A. M. T., Bakkers, M. J. G., et al. 9-O-Acetylation of sialic acids is catalysed by CASD1 via a covalent acetyl-enzyme intermediate. Nature communications. 6, 7673 (2015).
  73. Araujo, R. N., Santos, A., Pinto, F. S., Gontijo, N. F., Lehane, M. J., Pereira, M. H. RNA interference of the salivary gland nitrophorin 2 in the triatomine bug Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduviidae) by dsRNA ingestion or injection. Insect biochemistry and molecular biology. 36 (9), 683-693 (2006).
  74. Wuriyanghan, H., Rosa, C., Falk, B. W. Oral Delivery of Double-Stranded RNAs and siRNAs Induces RNAi Effects in the Potato/Tomato Psyllid, Bactericerca cockerelli. PloS one. 6 (11), e27736 (2011).
  75. Kamath, R. S., Ahringer, J. Genome-wide RNAi screening in Caenorhabditis elegans. Methods (San Diego, Calif). 30 (4), 313-321 (2003).
  76. Yu, N., Christiaens, O., et al. Delivery of dsRNA for RNAi in insects: an overview and future directions). Insect Science. , (2012).
  77. Allen, M. L., Walker, W. B. Saliva of Lygus lineolaris digests double stranded ribonucleic acids. Journal of Insect Physiology. 58 (3), 391-396 (2012).
  78. Wynant, N., Santos, D., Verdonck, R., Spit, J., Van Wielendaele, P., Vanden Broeck, J. Identification, functional characterization and phylogenetic analysis of double stranded RNA degrading enzymes present in the gut of the desert locust, Schistocerca gregaria. Insect biochemistry and molecular biology. 46, 1-8 (2014).
  79. Ghosh, S. K. B., Gundersen-Rindal, D. E. Double strand RNA-mediated RNA interference through feeding in larval gypsy moth, Lymantria dispar (Lepidoptera: Erebidae). European Journal of Entomology. 114, 170-178 (2017).
  80. Baigude, H., Rana, T. M. Delivery of therapeutic RNAi by nanovehicles. Chembiochem : a European journal of chemical biology. 10 (15), 2449-2454 (2009).
  81. Mitter, N., Worrall, E. A., et al. Clay nanosheets for topical delivery of RNAi for sustained protection against plant viruses. Nature plants. 3, 16207 (2017).
  82. Dubelman, S., Fischer, J., et al. Environmental fate of double-stranded RNA in agricultural soils. PloS one. 9 (3), e93155 (2014).
  83. Kola, V. S. R., Renuka, P., Madhav, M. S., Mangrauthia, S. K. Key enzymes and proteins of crop insects as candidate for RNAi based gene silencing. Frontiers in physiology. 6, 119 (2015).
check_url/es/57390?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Ghosh, S. K. B., Hunter, W. B., Park, A. L., Gundersen-Rindal, D. E. Double-stranded RNA Oral Delivery Methods to Induce RNA Interference in Phloem and Plant-sap-feeding Hemipteran Insects. J. Vis. Exp. (135), e57390, doi:10.3791/57390 (2018).

View Video