Summary

Replikering av bestilt, Nonredundant bibliotek av Pseudomonas aeruginosa belastning PA14 Transposon innsetting mutanter

Published: May 04, 2018
doi:

Summary

Pseudomonas aeruginosa infeksjon forårsaker betydelig sykelighet i sårbare verter. Nonredundant transposon innsetting mutant biblioteket av P. aeruginosa belastning PA14, som PA14NR angir, forenkler analyse av genet funksjonalitet i mange prosesser. Presenteres her er en protokoll for å generere høy kvalitet kopier av PA14NR sette mutant biblioteket.

Abstract

Pseudomonas aeruginosa er en svært genotypically variert og tilpasningsdyktig Gram-negative bakterie allestedsnærværende i menneskelig miljøer. P. aeruginosa er kjøpedyktig danner biofilm, utvikle antibiotikaresistens, produsere virulens faktorer og raskt utvikle seg i løpet av en kronisk infeksjon. Dermed kan P. aeruginosa føre både akutt og kronisk, vanskelig å behandle infeksjoner, noe som resulterer i betydelig sykelighet i enkelte pasientgrupper. P. aeruginosa belastningen PA14 er en menneskelig kliniske isolere med bevarte genomet struktur som infiserer en rekke pattedyr og nonvertebrate verter gjør PA14 en attraktiv belastning for å studere denne patogen. I 2006 ble et nonredundant transposon innsetting mutant bibliotek med 5,459 mutanter tilsvarer 4,596 spådd PA14 gener generert. Siden da har distribusjon av PA14 biblioteket tillatt i samfunnet å forstå funksjonen av enkelte gener og komplekse stier av P. aeruginosa. Vedlikehold av biblioteket integritet gjennom replikeringsprosessen krever riktig håndtering og presis teknikker. Derfor, presenterer dette manuskriptet protokoller som beskriver i detalj trinnene involvert i biblioteket replikering, bibliotek kvalitetskontroll og riktig lagring av personlige mutanter.

Introduction

Pseudomonas aeruginosa er en svært genotypically variert og tilpasningsdyktig Gram-negative bakterie stede i jord, vann, og de fleste mennesker miljøer, samt hud mikroflora. Sammenlignet med mange bakteriell arter, har P. aeruginosa en relativt stor genomet av 5.5-7 Mbp med høye G + C innhold (65-67%). Videre en betydelig andel av sine gener består av metabolske tilpasningsevne og er en del av regulatoriske nettverk, gir stor fleksibilitet som svar på miljøstress1. P. aeruginosa uttrykker en mengde virulens faktorer, utstillinger proclivity å skjemaet biofilm, har muligheten til å koordinere reaksjonene gjennom flere quorum sensing veier og viser en bemerkelsesverdig evne til å utvikle antibiotikaresistens og toleranse2,3,4,5,6,7,8. Disse attributtene presenterer betydelige utfordringer for behandling av infeksjoner forårsaket av P. aeruginosa.

Kronisk P. aeruginosa infeksjoner kan oppstå i mange sykdom stater. Cystisk fibrose (CF), en genetisk sykdom forårsaket av mutasjon av Cystisk fibrose Transmembrane konduktans Regulator (CFTR) genet, resulterer i inspissated, infiserte sekret i luftveiene, progressiv bronkiektasier og til slutt, død fra respirasjonssvikt9. Av voksen alder, er fleste pasienter med CF kronisk infisert med P. aeruginosa, som spiller en nøkkelrolle i sykelighet og dødelighet forbundet med denne sykdommen10. I tillegg er pasienter med alvorlig brenne skader11, tracheostomies12, felles erstatninger13eller iboende katetre14 utsatt for P. aeruginosa infeksjon gjelder bakterier evne til skjemaet biofilm og flukt vert inflammatorisk svar15. Videre skjer kolonisering uten konkurranse etter flere antibiotika resistente eller tolerant innbyggere er valgt gjennom bredspektret, sekvensielle antimikrobielle behandling12,16,17 , 18. bedre forståelse patogenesen av P. aeruginosa vil ha viktige implikasjoner for mange sykdom stater.

Flere P. aeruginosa kliniske isolater, inkludert stammer PAO1, PA103, PA14 og PAK, har blitt grundig studert for å undersøke ulike funksjoner av P. aeruginosa patogenesen. Belastning PA14 er en kliniske isolere som tilhører en av de vanligste klonal grupper verdensomspennende19,20 og har ikke vært mye passaged i laboratoriet. PA14is svært virulente i virveldyr modeller av infeksjon, med en kjent endotoxin profil21, pili struktur22, virusets øyene23, type III sekresjon system (TTSS), cytotoksisitet mot pattedyr celler24 og profiler i antibiotikumet motstand og utholdenhet25. Videre PA14 er også svært virulente i mange vert-patogen modellsystemer, inkludert anlegg blad infiltrasjon modeller26,27,Caenorhabditis elegans infeksjon modeller28, 29, insekt modeller30,31, samt mus lungebetennelse modeller32,33 og solbrenthet modeller34.

Genomet hele mutant biblioteker er samlinger av isogenic mutanter i unødvendige gener som utgjør svært kraftig verktøy for å forstå en organisme biologi ved analyse av gen funksjon i genomisk skala. To nær metning transposon innsetting mutant biblioteker i s. aeruginosa er tilgjengelige for distribusjon. Innsetting nettstedene til transposons er funnet for begge bibliotekene. Disse såkalte nonredundant bibliotekene lette genomet-omfattende studier av bakteriell stammer betydelig reduserer tiden og kostnadene involvert i screening uncharacterized tilfeldig transposon mutanter. P. aeruginosa PAO1 transposon mutant biblioteket bygget i MPAO1 isolere belastning PAO1 bruker transposons erphoA/ hah og erlacZ/ hah er35, kuratert av Manoil lab, University of Washington. Biblioteket består av en sekvens-verifiserte samling av 9,437 transposon mutanter som gir bred genomet dekning og inkluderer to mutanter for de fleste gener36. Informasjon om P. aeruginosa PAO1 transposon mutant biblioteket er tilgjengelig på offentlige, Internett-tilgjengelige Manoil lab nettsted på http://www.gs.washington.edu/labs/manoil/libraryindex.htm. P. aeruginosa belastning PA14 nonredundant transposon innsetting mutant bibliotek (PA14NR sett) i belastning PA14 bruker transposons MAR2xT7 og TnphoA37 er distribuert av Department of Pediatrics ved Massachusetts General Hospital. PA14NR Set består av en samling av mer enn 5800 mutanter med enkelt transposon innsettinger i unødvendige gener37. Detaljer om bygging av PA14NR Set er beskrevet i det offentlige, Internett-tilgjengelige området http://pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/home.cgi?section=NR_LIB, som også inneholder en rekke online søkeverktøy for å forenkle bruken av PA14NR Sett.

Den opprinnelige PA14NR Set består 5,459 mutanter, valgt fra et omfattende bibliotek av ca 34000 tilfeldig transposon innsetting mutanter, som tilsvarer 4,596 spådd PA14 gener som representerer 77% av alle anslåtte PA14 gener37. Siden byggingen av biblioteket i 2006 new mutantene ble lagt, og tiden PA14NR Set inkluderer flere 5800 mutanter38 som representerer ca 4600 PA14 gener. Fleste PA14 transposon mutanter ble generert i vill type bakgrunn37. Detaljer om hvert medlem av mutant biblioteket, inkludert genetisk bakgrunn, er tilgjengelige via søke nettdatabasen, eller ved å laste ned Nonredundant biblioteket regnearket, begge funksjonene som er tilgjengelige på PA14 nettsted (http:// pa14.mgh.Harvard.edu/cgi-bin/pa14/Home.CGI). Fleste av mutanter ble opprettet ved hjelp av MAR2xT7 (MrT7) transposon, med en liten sette laget med TnPhoA (phoA) transposon37. Hver transposon har en antibiotikaresistens kassett, som tillater mutant utvalg gentamicin (MrT7) eller kanamycin (phoA). PA14NR settet av mutanter lagres i sekstitre 96-brønns plater og inneholder to ekstra 96-brønns kontroll platene som består av vill-type PA14 inokulert og uninoculated brønner under Sommer i et forhåndsinnstilt mønster. 96-brønns plate formatet sammen med online søkeverktøyene sterkt forenkler egendefinerte utviklingen av screening analyser det tillate brukernes å lett identifisere tilblivelse tilknyttet mutant fenotyper. Online søkeverktøyene også forenkle søk og valg av flere relevante mutanter kreves for videre studier.

PA14 og PAO1 transposon mutant bibliotekene er svært viktige globale ressurser for det vitenskapelige samfunnet, og de utfyller hverandre i validere funksjonen av ukjent gener og stier av denne bakteriell patogen. Coincidentally, siden byggingen av PAO1 og PA14 transposon mutasjon bibliotekene, har full-genome DNA sekvensering analyse av mange P. aeruginosa isolerer vist at PAO1 og PA14 tilhører forskjellige store subclades av P. aeruginosa phylogeny7,39,40,41. Fordi klinisk P. aeruginosa isolerer finnes distribuert gjennom fylogeni, det faktum at PAO1 og PA14 tilhører forskjellige P. aeruginosa undergrupper øker verdien av to transposon mutasjon bibliotekene for komparative studier.

Publikasjoner som beskriver bygging og screening av bakteriell mutant biblioteker, inkludert P. aeruginosa biblioteker35,er37,42, lett tilgjengelig i litteraturen. Til best av vår kunnskap er ingen publiserte protokoller som beskriver detaljert prosedyrer og teknikker for replikering, vedlikehold og validering av bakteriell mutant biblioteker imidlertid tilgjengelige.

Metodene som er beskrevet i denne publikasjonen beskriver et sett med tre protokoller som forenkler bruk og vedlikehold av PA14NR Set. Første protokollen beskriver replikering av biblioteket som anbefalt til mottakere av PA14NR Set. Andre protokollen inneholder retningslinjer for striper, vokser og lagring av personlige mutanter identifisert ved hjelp av PA14NR Set. Tredje protokollen beskriver kvalitetskontroll teknikker, inkludert PCR forsterkning av fragmenter fra transposon mutanter og påfølgende sekvensering å bekrefte mutant identitet. Dette settet med protokoller kan også tilpasses for replikering og vedlikehold av andre bakterielle mutant biblioteker eller samlinger. Replikering av bakteriell mutant biblioteker eller samlinger er svært anbefales å opprettholde dataintegriteten “master kopi” (originalversjonen mottatt). Replikering av flere kopier av PA14NR Set for rutine laboratoriebruk reduserer sannsynligheten for interwell forurensning av hovedkopien.

Protocol

Advarsel: Bruk standard BSL-2 sikkerhetstiltak ved håndtering av P. aeruginosa, en human patogen. Hvis du er privatperson immunsupprimerte eller har noen medisinsk tilstand som øker din mottakelighet for bakteriell infeksjon, ta spesiell forsiktighet når du arbeider med P. aeruginosa. Konsultere biosikkerhet kontoret i din institusjon og få godkjennelse fra legen din før du arbeider med den PA14 NR satt eller mutant biblioteker av bakteriell patogener. <p class="jove_content" fo:keep-together.w…

Representative Results

Tolv nye kopier av PA14NR Set ble replikert bruker protokollen jeg, og en kvalitetskontroll vurdering av de nye kopiene generert ble utført med protokollen III. PA14NR sette mutant plater med kontroll plater, som består av vill-type PA14 inokulert og uninoculated brønner under Sommer i et forhåndsinnstilt mønster (figur 4A), ble kopiert etter methology beskrevet i protokollen I. kontroll plater…

Discussion

P. aeruginosa PA14NR er en verdifull ressurs for det vitenskapelige samfunnet. Ifølge mars 2017 datasettet fra Clarivate Analytics Essential Science Indicators database, Liberati et al. (2006) 37, som beskriver byggingen av PA14NR Set, er rangert på topp 1% av mikrobiologi publikasjoner. Google Scholar rapporter over 600 siteringer av Liberati et al. (2006) opprinnelige manuskriptet i August 2017. Biblioteket har spilt en viktig rolle i Klargjørende mekanisme…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Lisa Philpotts av MGH Treadwell virtuelle bibliotek for sin veiledning søk i databasen. Dette arbeidet ble støttet av cystisk fibrose Foundation (YONKER16G0 og HURLEY16G0) og NIH NIAID (BPH og ADE: R01 A1095338).

Materials

Materials for Library Replication
Sterile 96-well Tissue-culture treated, case of 50 Corning Life Sciences 353072 via Fisher Scientific
Sterile 96 Well Clear V-Bottom 2000μL Deep Well Plates, case of 25 Corning Life Sciences 3960 via Fisher Scientific
Nunc OmniTray (rectangular plates), case of 60 Thermo Scientific Rochester 242811 via Fisher Scientific
Rectangular Ice Pan, Midi (4L) Corning Life Sciences 432104 via Fisher Scientific
Secure-Gard Cone Mask, case of 300 Cardinal Health AT7509 via Fisher Scientific
AluminaSeal, pack of 100 Diversified Biotech ALUM-100 via Fisher Scientific
Breathe-Easy membrane, pack of 100 Diversified Biotech BEM-1 via Sigma-Aldrich
Sterile, individually wrapped, 50mL Solution Trough/Reagent Reservoir, case of 100 Sorenson S50100 via Westnet Incorporated
Plate roller VWR 60941-118 via VWR
Cryo Laser Labels – CRYOLAZRTAG 2.64" x 0.277", pack of 16 sheets GA International RCL-11T1-WH via Labtag.com (template for printing also available from Labtag.com)
96-well replicator V & P Scientific, Inc. Custom 407C, 3.18mm pin diameter, 57mm long via V & P Scientific, Inc.
Multitron Pro, 3mm Shaking incubator Infors HT l10003P via Infors HT
Picus 12 Channel 50-1200μL Electronic Pipette Sartorius 735491PR via Sartorius
Filter Tips 50-1200μL, pack of 960 Biohit 14-559-512 via Fisher Scientific; use electronic multichannel-compatible tips
Dry Ice User-specific vendor
Materials for Individual Mutant Storage
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-130 via Fisher Scientific
Pipettes (P1000, P200, P20, P2) Gilson F167370 via Gilson
Materials for Quality Control PCR
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-130 via Fisher Scientific
NanoDrop Thermo Scientific ND-2000 via ThermoFisher
PCR Thermocycler
Omnistrips PCR Tubes with domed lids Thermo Scientific AB0404 via Fisher Scientific
ART Barrier low-retention pipette tips (10 uL, 100 uL, 1000 uL) Molecular BioProducts, Inc. Z676543 (10 uL), Z676713 (100 uL), Z676802 (1000 uL) via Sigma-Aldrich
Pipettes (P1000, P200, P20, P2) Gilson F167370 via Gilson
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5mL Fisher Scientific 05-408-130 via Fisher Scientific
MasterPure DNA Purification Kit Epicentre MCD85201 via Epicentre Technologies Corp
GeneRuler 1 kb Plus DNA Ladder, ready-to-use Thermo Scientific SM1333 via ThermoFisher
RediLoad Loading Buffer Invitrogen 750026 via ThermoFisher
Chemicals
Chemicals for Library and Individual Mutant Storage
Glycerol MB Grade, 1L Sigma Aldrich G5516 via Sigma-Aldrich
LB Broth Per 1L dH2O: 10g tryptone, 5g yeast extract, 5g NaCl, 1ml 1N NaOH (Current Protocols in Molecular Biology.  Wiley, 1994.)
Tryptone Sigma Aldrich T7293 via Sigma-Aldrich
Yeast Extract Sigma Aldrich Y1625 via Sigma-Aldrich
Sodium Chloride Sigma Aldrich S7653 via Sigma-Aldrich
Sodium Hydroxide Sigma Aldrich S8045 via Sigma-Aldrich
LB  agar See preparation above, add 15g Bacto Agar
Bacto Agar Sigma Aldrich A5306 via Sigma-Aldrich
Gentamicin sulfate, 10g BioReagent 1405-41-0 via Sigma-Aldrich
Kanamycin sulfate Gibco 11815024 via ThermoFisher
Ethanol, 190 proof Decon 04-355-221 via Fisher Scientific
Chemicals for Quality Control PCR
Primers User-preferred vendor See primers listed in Table 3
Corning cellgro Molecular Biology Grade Water Corning 46000CV via Fisher Scientific
Taq Polymerase Buffer Invitrogen 10342020 via ThermoFisher
Taq DNA Polymerase, recombinant Invitrogen 10342020 via ThermoFisher
dNTPs Invitrogen 10297018 via ThermoFisher
Agarose Sigma A9539 via Sigma-Aldrich

Referencias

  1. Moradali, M. F., Ghods, S., Rehm, B. H. Pseudomonas aeruginosa lifestyle: A paradigm for adaptation, survival, and persistence. Front Cell Infect Microbiol. 7, 39 (2017).
  2. Bleves, S., et al. Protein secretion systems in Pseudomonas aeruginosa: A wealth of pathogenic weapons. Int J Med Microbiol. 300 (8), 534-543 (2010).
  3. Breidenstein, E. B., de la Fuente-Nunez, C., Hancock, R. E. Pseudomonas aeruginosa: all roads lead to resistance. Trends Microbiol. 19 (8), 419-426 (2011).
  4. Flynn, K. M., et al. Evolution of ecological diversity in biofilms of Pseudomonas aeruginosa by altered cyclic diguanylate signaling. J Bacteriol. 198 (19), 2608-2618 (2016).
  5. Hazan, R., Maura, D., Que, Y. A., Rahme, L. G. Assessing Pseudomonas aeruginosa persister/antibiotic tolerant cells. Methods Mol Biol. 1149, 699-707 (2014).
  6. Klockgether, J., et al. Genome diversity of Pseudomonas aeruginosa PAO1 laboratory strains. J Bacteriol. 192 (4), 1113-1121 (2010).
  7. Mathee, K., et al. Dynamics of Pseudomonas aeruginosa genome evolution. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (8), 3100-3105 (2008).
  8. Taylor, P. K., Yeung, A. T., Hancock, R. E. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms: towards the development of novel anti-biofilm therapies. J Biotechnol. 191, 121-130 (2014).
  9. Flume, P. A., Van Devanter, D. R. State of progress in treating cystic fibrosis respiratory disease. BMC Med. 10, 88 (2012).
  10. . Cystic Fibrosis Foundation Patient Registry 2015 Annual Data Report Available from: https://www.cff.org/Our-Research/CF-Patient-Registry/2015-Patient-Registry-Annual-Data-Report.pdf (2016)
  11. Church, D., Elsayed, S., Reid, O., Winston, B., Lindsay, R. Burn wound infections. Clin Microbiol Rev. 19 (2), 403-434 (2006).
  12. Sadikot, R. T., Blackwell, T. S., Christman, J., Prince, A. Pathogen-host interactions in Pseudomonas aeruginosa pneumonia. Am J Respir Crit Care Med. 171 (11), 1209-1223 (2005).
  13. Song, Z., et al. Prosthesis infections after orthopedic joint replacement: the possible role of bacterial biofilms. Orthop Rev (Pavia). 5 (2), 65-71 (2013).
  14. National Nosocomial Infections Surveillance, S. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data summary from January 1992 through June 2004, issued October 2004. Am J Infect Control. 32 (8), 470-485 (2004).
  15. Cohen, T. S., Parker, D., Prince, A. . Pseudomonas aeruginosa Host Immune Evasion. 7, 3-23 (2014).
  16. Fernandes, A., Dias, M. The microbiological profiles of infected prosthetic implants with an emphasis on the organisms which form biofilms. J Clin Diagn Res. 7 (2), 219-223 (2013).
  17. Khosravi, A. D., Ahmadi, F., Salmanzadeh, S., Dashtbozorg, A., Montazeri, E. A. Study of Bacteria Isolated from Orthopedic Implant Infections and their Antimicrobial Susceptibility Pattern. Res J of Microbiol. 4 (4), 6 (2009).
  18. Roemhild, R., Barbosa, C., Beardmore, R. E., Jansen, G., Schulenburg, H. Temporal variation in antibiotic environments slows down resistance evolution in pathogenic Pseudomonas aeruginosa. Evol Appl. 8 (10), 945-955 (2015).
  19. Fischer, S., et al. Intraclonal genome diversity of the major Pseudomonas aeruginosa clones C and PA14. Environ Microbiol Rep. 8 (2), 227-234 (2016).
  20. Wiehlmann, L., et al. Population structure of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (19), 8101-8106 (2007).
  21. Lam, J. S., Taylor, V. L., Islam, S. T., Hao, Y., Kocincova, D. Genetic and functional diversity of Pseudomonas aeruginosa lipopolysaccharide. Front Microbiol. 2, 118 (2011).
  22. Choi, J. Y., et al. Identification of virulence genes in a pathogenic strain of Pseudomonas aeruginosa by representational difference analysis. J Bacteriol. 184 (4), 952-961 (2002).
  23. He, J., et al. The broad host range pathogen Pseudomonas aeruginosa strain PA14 carries two pathogenicity islands harboring plant and animal virulence genes. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (8), 2530-2535 (2004).
  24. Mikkelsen, H., McMullan, R., Filloux, A. The Pseudomonas aeruginosa reference strain PA14 displays increased virulence due to a mutation in ladS. PLoS One. 6 (12), e29113 (2011).
  25. Drenkard, E., Ausubel, F. M. Pseudomonas biofilm formation and antibiotic resistance are linked to phenotypic variation. Nature. 416 (6882), 740-743 (2002).
  26. Rahme, L. G., et al. Common virulence factors for bacterial pathogenicity in plants and animals. Science. 268 (5219), 1899-1902 (1995).
  27. Rahme, L. G., et al. Use of model plant hosts to identify Pseudomonas aeruginosa virulence factors. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (24), 13245-13250 (1997).
  28. Kirienko, N. V., Cezairliyan, B. O., Ausubel, F. M., Powell, J. R. Pseudomonas aeruginosa PA14 pathogenesis in Caenorhabditis elegans. Methods Mol Biol. 1149, 653-669 (2014).
  29. Mahajan-Miklos, S., Tan, M. W., Rahme, L. G., Ausubel, F. M. Molecular mechanisms of bacterial virulence elucidated using a Pseudomonas aeruginosa-Caenorhabditis elegans pathogenesis model. Cell. 96 (1), 47-56 (1999).
  30. Limmer, S., et al. Pseudomonas aeruginosa RhlR is required to neutralize the cellular immune response in a Drosophila melanogaster oral infection model. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (42), 17378-17383 (2011).
  31. Miyata, S., Casey, M., Frank, D. W., Ausubel, F. M., Drenkard, E. Use of the Galleria mellonella caterpillar as a model host to study the role of the type III secretion system in Pseudomonas aeruginosa pathogenesis. Infect Immun. 71 (5), 2404-2413 (2003).
  32. Coleman, F. T., et al. Hypersusceptibility of cystic fibrosis mice to chronic Pseudomonas aeruginosa oropharyngeal colonization and lung infection. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (4), 1949-1954 (2003).
  33. Pazos, M. A., et al. Pseudomonas aeruginosa ExoU augments neutrophil transepithelial migration. PLoS Pathog. 13 (8), e1006548 (2017).
  34. Maura, D., Hazan, R., Kitao, T., Ballok, A. E., Rahme, L. G. Evidence for direct control of virulence and defense gene circuits by the Pseudomonas aeruginosa quorum sensing regulator, MvfR. Sci Rep. 6, 34083 (2016).
  35. Jacobs, M. A., et al. Comprehensive transposon mutant library of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (24), 14339-14344 (2003).
  36. Held, K., Ramage, E., Jacobs, M., Gallagher, L., Manoil, C. Sequence-verified two-allele transposon mutant library for Pseudomonas aeruginosa PAO1. J Bacteriol. 194 (23), 6387-6389 (2012).
  37. Liberati, N. T., et al. An ordered, nonredundant library of Pseudomonas aeruginosa strain PA14 transposon insertion mutants. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (8), 2833-2838 (2006).
  38. Feinbaum, R. L., et al. Genome-wide identification of Pseudomonas aeruginosa virulence-related genes using a Caenorhabditis elegans infection model. PLoS Pathog. 8 (7), e1002813 (2012).
  39. Stewart, L., et al. Draft genomes of 12 host-adapted and environmental isolates of Pseudomonas aeruginosa and their positions in the core genome phylogeny. Pathog Dis. 71 (1), 20-25 (2014).
  40. Thrane, S. W., et al. The widespread multidrug-resistant serotype O12 Pseudomonas aeruginosa clone emerged through concomitant horizontal transfer of serotype antigen and antibiotic resistance gene clusters. MBio. 6 (5), e01396-e01315 (2015).
  41. van Belkum, A., et al. Phylogenetic Distribution of CRISPR-Cas Systems in Antibiotic-Resistant Pseudomonas aeruginosa. MBio. 6 (6), e01796-e01715 (2015).
  42. Lewenza, S., et al. Construction of a mini-Tn5-luxCDABE mutant library in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a tool for identifying differentially regulated genes. Genome Res. 15 (4), 583-589 (2005).
  43. . . Current Protocols in Molecular Biology. , (1994).
  44. Breidenstein, E. B., Khaira, B. K., Wiegand, I., Overhage, J., Hancock, R. E. Complex ciprofloxacin resistome revealed by screening a Pseudomonas aeruginosa mutant library for altered susceptibility. Antimicrob Agents Chemother. 52 (12), 4486-4491 (2008).
  45. Musken, M., Di Fiore, S., Dotsch, A., Fischer, R., Haussler, S. Genetic determinants of Pseudomonas aeruginosa biofilm establishment. Microbiology. 156 (Pt 2), 431-441 (2010).
  46. Schurek, K. N., et al. Novel genetic determinants of low-level aminoglycoside resistance in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother. 52 (12), 4213-4219 (2008).
  47. Oumeraci, T., et al. Comprehensive MALDI-TOF biotyping of the non-redundant Harvard Pseudomonas aeruginosa PA14 transposon insertion mutant library. PLoS One. 10 (2), e0117144 (2015).
  48. Yeung, A. T., et al. Swarming of Pseudomonas aeruginosa is controlled by a broad spectrum of transcriptional regulators, including MetR. J Bacteriol. 191 (18), 5592-5602 (2009).

Play Video

Citar este artículo
Drenkard, E., Hibbler, R. M., Gutu, D. A., Eaton, A. D., Silverio, A. L., Ausubel, F. M., Hurley, B. P., Yonker, L. M. Replication of the Ordered, Nonredundant Library of Pseudomonas aeruginosa strain PA14 Transposon Insertion Mutants. J. Vis. Exp. (135), e57298, doi:10.3791/57298 (2018).

View Video