Здесь представлены подробные протоколы для культивирования 32D/G-CSF-R клеточная линия murine миелоидного прекурсоров, вирусных инфекций и проведение анализов пролиферации и дифференцировки. Эта линия клетки подходит для изучения развития миелоидных клеток и роль генов интерес к росту миелоидных клеток и нейтрофильных дифференциации.
Понимание гемопоэтических стволовых и прогениторных клеток биологии имеет важные последствия для регенеративной медицины и лечения гематологических патологий. Несмотря на наиболее актуальные данные, которые могут быть приобретены с использованием модели в естественных условиях или первичных культур низкая обилие гемопоэтических стволовых и прогениторных клеток значительно ограничивает круг подходящих методов для их расследования. Таким образом использование клеточных линий позволяет достаточно производства биологического материала для выполнения показы или анализов, которые требуют числа крупных клеток. Здесь мы представляем, подробное описание, индикация и интерпретации пролиферации и дифференцировки анализов, которые используются для исследования процессов в myelopoiesis и нейтрофильных дифференциации. Эти эксперименты используют 32D G-CSF-реляционный cytokine зависимых murine миелоидного клеток линии, которая обладает способностью размножаться в присутствии Ил-3 и дифференцировать в G-CSF. Мы предлагаем оптимизированный протоколы для обработки клеток 32D/G-CSF-R и обсудить основные недостатки и недостатки, которые могли бы скомпрометировать описанных анализов и ожидаемые результаты. Кроме того эта статья содержит протоколы для производства лентивирусные и антиретровирусного лечения, титрование и трансдукция 32D/G-CSF-R клеток. Мы демонстрируем, что генетические манипуляции этих клеток могут быть использованы для успешного выполнения функциональных и молекулярные исследования, которые могут дополнять результаты, полученные с основной гемопоэтических стволовых и прогениторных клеток или модели в естественных условиях .
Гемопоэтических стволовых и прогениторных населения поставляет в организм с большим диапазоном зрелых клеток, включая клетки миелоидного lineage (нейтрофилов, эозинофилов, базофилов и моноцитов). Процесс, который управляет производства миелоидных клеток от гемопоэтических стволовых клеток известен как myelopoiesis, и надлежащего производства зрелой миелоидных клеток в ответ на меняющиеся требования является необходимым условием для надлежащего решения проблем организма с стресса условия, такие как инфекции и потери крови. Недостаточное производство зрелых миелоидных клеток может привести к неспособности устранить патогенов, свертываемость крови, снижение и других угрожающих жизни условиях1,2. Кроме того изменения в развитии миелоидного линии также могут быть связаны с гемобластозами, например, острый миелоидный лейкоз (ОМЛ)3. Изменения в myelopoiesis может произойти из-за различных причин, таких, как дефекты в ячейке поверхности рецепторы4изменены выражения факторов транскрипции5, нарушениями сигнальные пути6, мутации, что приводит к формированию / Активация онкогенов7или инактивации генов усмирителя тумора8.
Различные методы были разработаны для изучения миелоидного развития и оценить воздействие конкретных генетических изменений в этот процесс. Общие подходы, используемые для изучения myelopoiesis связаны главные ячейки и трансгенных мышей. Хотя эти модели позволяют приобретение биологически соответствующих данных, они имеют определенные ограничения. Использование начальной клеток встречает ограниченное количество клеток и ограниченного периода культуры, сужение возможностей для изменения экспрессии генов и последующие биологические или биохимический анализ. Трансгенных мышей являются дорогостоящими и требуют разумную степень биологического обоснования. Кроме того работа с моделями в vivo добавляет степень сложности в понимании роли ген интереса в данном процессе. Таким образом необходимы альтернативные подходы, чтобы обойти эти ограничения. Линии клетки имеют неоспоримые преимущества: (1) они обладают потенциалом неограниченное распространение, что позволяет генерировать достаточно материала для биохимических и биологических исследований, (2) они чувствительны к генетической манипуляции (нокдаун, нокаут, Гиперэкспрессия), (3) стоимость сравнительно низка, и (4) они позволяют степень биологического упрощение в некоторых экспериментальных подходов.
Родительский Ил-3 (интерлейкинов-3) зависимых 32D клеточная линия была учреждена в 1983 году Greenberger и его коллеги инфекции клеток костного мозга от мышей C3H/HeJ друг мышиных лейкемии Вирус9. Несколько 19 d клоны были описаны в литературе: cl-239, cl-310и11cl-10. 36 d cl-3 клетки были продемонстрированы размножаться в ил-3 и пройти нейтрофильных дифференциация по обращению с гранулоцитов колонии стимуляции фактор (Г-КСФ)10. Напротив 27 d cl-10 клеток, будучи зависимой Ил-3, первоначально не были дифференциации в ответ на лечение Г-КСФ. В 1995 году группа д-р Иво Touw retrovirally преобразованы 30 d cl-10 клеток с дикого типа и мутантов формы рецептора Г-КСФ (G-CSF-R), с тем чтобы определить функционально важных регионах этот рецептор11. Это исследование привело к генерации клеток 32D/G-CSF-R, которые аналогичным образом зависят Ил-3, но в пределах 6-10 дней после замены Ил-3 с G-CSF, клетки перестают размножаться и необратимо дифференцироваться в Зрелые нейтрофилы. Эти свойства делают 30 d cl-3 и упрощенные модели клетки 32D/G-CSF-R мышиных нейтрофильных дифференциации, которая может быть модулированные два четко определенных роста и дифференциации факторов – Ил-3 и G-CSF. В течение последних десятилетий несколько групп использовали 32D/G-CSF-R клетки для изучения роли конкретных генов в распространение и дифференцировку миелоидных клеток в культуре12,13,14,15 , 16и для изучения Г-КСФ, сигнализируя17,18. Важно отметить, что результаты, полученные с помощью этой линии клетки коррелирует с данных, полученных с первичные элементы и трансгенных мышей16,19,,2021. Следовательно мы считаем, что 32D/G-CSF-R клетки, будучи широко используется и устоявшиеся модели, представляют собой ценный системы для изучения миелоидного дифференциация, которая может использоваться параллельно с другими подходами, рассмотреть этот вопрос.
Здесь является представил подробные протоколы, описывающие обработку 32D/G-CSF-R клеточной линии, которой расширения покрытия, дифференциация и оценки распространения и дифференциации этих клеток. Подробная информация для генетической модификации 32D/G-CSF-R клеток, либо ретровирусных или лентивирусные трансдукции, а также протоколы для титрования вирус предоставляются. Кроме того предоставляются несколько представительных результаты, которые демонстрируют возможности применения клеток 32D/G-CSF-R.
Выбор экспериментальной модели является одним из основных вопросов в области научных исследований. Хотя считается, что основной клетки животных и человека производят наиболее биологически соответствующих данных, эти модели может включать этические проблемы и часто связаны с дорогим…
The authors have nothing to disclose.
Авторы благодарят профессор Рууд Delwel и профессор Иво Touw за предоставленную нам с линией клеток 32D/G-CSF-R и профессор Даниэль G. Tenen за предоставление нам с линией клеток Bosc23. Эта работа была поддержана грантов грант агентства Чешской Республики (GACR 15-03796S и GACR 17-02177S) для ма-J, поддержки от Института молекулярной генетики Чешской академии наук (РВО 68378050) ма-j, Стипендия Великобритании GA (проект № 341015) от Карлова университета в Праге МК, и Стипендия Великобритании GA (проект № 1278217) от Карлова университета в Праге, PD.
RPMI 1640 powder medium | Merck, Kenilworth, NJ, USA | T 121-10 | without NaHCO3, with L-glutamine |
DMEM | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA | 15028 | |
Opti-MEM I Reduced Serum Medium | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA | 31985-047 | L-Glutamine, Phenol Red |
Fetal bovine serum (FBS) | PAA Laboratories (GE Healthcare,Chicago, IL, USA) | MT35011CV | For differentiation of 32D/G-CSF-R cells |
Fetal bovine serum (FBS) | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA | 10270 | Used for culturing HEK293T, NIH3T3, BOSC23 cells |
Penicillin | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | P3032 | |
Streptomycin | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | S9137 | Streptomycin sulfate salt powder |
Gentamicin | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | G1914 | |
murine IL-3 | PeproTech, Rocky Hill, NJ, USA | 213-13 | |
human G-CSF | PeproTech, Rocky Hill, NJ, USA | 300-23 | |
Polyethylenimine | Polyscience, Warrington, PA, USA | 23966 | Linear, MW 25,000 (PEI 25000) |
Polybrene | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | H9268 | |
Trypsin | VWR Chemicals, Radnor, PA, USA | 0458 | |
EDTA | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | E5134 | |
Crystal violet | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | C0775 | |
Trypan blue | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | T6146 | |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich (Merck, Kenilworth, NJ, USA) | D2650 | |
May-Grünwald Giemsa | DiaPath, Martinengo, BG, Italy | 10802 |