Summary

大鼠慢性经颅电刺激及 Intracortical 记录

Published: May 11, 2018
doi:

Summary

本详细的协议描述经颅刺激电极在颞骨上的放置, 以研究经颅电刺激在自由运动大鼠中的短期和远期效果。

Abstract

经颅电刺激 (工商业污水附加费) 是一种强有力的和相对简单的方法来弥漫影响大脑活动, 无论是随机或以闭环事件触发方式。尽管许多研究集中在健康和病理脑中的附加费可能带来的好处和副作用, 但对于刺激的作用机制仍然存在许多基本的开放性问题。因此, 显然需要一种稳健和可重复的方法来检测啮齿动物的急性和慢性附加费的影响。工商业污水附加费可以与常规的行为, 电生理和成像技术结合, 以调查神经网络在体内。经颅内刺激电极的植入不会对实验设计施加额外的限制, 同时它提供了一种多功能的、灵活的工具来操纵大脑活动。在这里, 我们提供了一个详细的, 循序渐进的协议, 以制造和植入经颅刺激电极, 以影响大脑活动在一个世俗的约束方式, 几个月。

Introduction

经颅电刺激 (工商业污水附加费) 是一种有价值的方法, 以影响大脑活动的世俗约束方式。根据刺激电极的大小和位置, 附加费会影响大的脑容量和 entrain 神经元的数量弥漫1,2,3。经颅直接电流刺激已经医学上批准的治疗主要抑郁障碍4,5, 和许多研究的重点是显示经颅刺激的认知效果的人6,7. 此外, 据报, 有关工商业污水附加费在控制癫痫发作的潜力方面有很有希望的结果89

尽管进行了深入的研究, 但对于详细的操作机制、潜在的副作用以及应用此方法101112的长期结果, 仍然存在许多公开的问题。因此, 有一个健壮的, 可重现的协议, 以研究附加费的影响, 在动物模型是至关重要的。鉴于许多疾病 (例如、抑郁症、癫痫和精神分裂症) 只能在清醒的动物中进行广泛的调查, 这些病症的性质通常需要长期治疗, 我们为慢性大鼠经颅电极植入术。这里提出的方法可以用于行为研究, 也可以结合记录电极植入 (, 电线, 硅胶探头, juxtacellular 电极) 或与慢性颅窗的电生理实验和影像学研究, 分别。根据实验设计, 刺激的时间可以是随机的或事件触发特定的行为线索, 或特定的大脑状态 (癫痫发作, θ振荡) 的电生理标志8,11,13

值得一提的是, 与目前使用的人类方法相比, 这是使用电极放置在皮肤上, 在这里我们显示一种方法, 采用皮下植入在颞骨表面, 因为老鼠勉强容忍任何放置在他们的皮肤上, 这是容易接近使用他们的爪子。

根据置换、还原和细化的原则, 由于植入的慢性性质, 这种方法有助于减少动物数量, 因为每种动物可以在不同的实验条件下进行几个月的招募, 允许使用更少的动物来测试各种假说。

在本研究中, 我们提供了一个详细的, 循序渐进的协议, 经颅刺激电极制造 (图 1A-B), 并证明这些电极慢性植入六月大的颞骨雄性长埃文斯鼠。

Protocol

此处描述的所有方法均符合欧洲共同体理事会 (86/609 ECC) 的指示, 并已获得阿尔贝圣捷尔吉-Györgyi 医学和药物中心的动物研究伦理委员会批准。塞格德 (XIV/218/2016)。 1. 刺激电极的制作 要制作一个刺激电极, 切下六10厘米长的微型挂钩线, 在一端卸下2厘米的包覆, 另一端为1厘米。 将两根电缆拧在一起, 并在较短的去皮侧焊接。 获取带 SOT-353 盒的任何集成电…

Representative Results

慢性刺激电极 (图 1B) 的植入可与记录电极的附加植入 (图 1C-d) 结合使用。这种设置适合于形成按需记录和刺激系统来干扰特定的脑活动。在这里, 我们提出了一个闭环癫痫检测和干预系统的代表性结果, 适用于长埃文斯大鼠表达自发性癫痫 (图 2A)9。这种菌株是已知的短束和?…

Discussion

该协议最关键的步骤是在骨骼表面上粘附电极包。在封堵不当的情况下, 电极与骨之间形成间隙, 二次瘢痕组织可发育成间隙, 降低刺激质量。在粘附在包裹的步骤中, 骨表面必须是完全干燥的, 在遇到电极不稳定的情况下, 必须将其移除并用新的包替换, 以获得最佳效果。

这种方法的局限性是, 由于手术后皮肤没有完全闭合, 感染的风险相对较高。术后护理在头 4-5 天的恢复期间…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了 EU-FP7-ERC-2013-Starting 赠款 (337075 号) 的支持, 匈牙利科学院的 “动量” 计划 (LP2013-62) 和 GINOP-2.3. 2-15-2016-00018 赠款。我们感谢 Máté Kozák 记录的刺激和记录电极和 Mihály Vöröslakos 在协议设计期间卓有成效的讨论。

Materials

Cyanoacrylate liquid Henkel Loctite 401
Cyanoacrylate gel Henkel Loctite 454
Wire for stimulation electrodes Phoenix Wire Inc. 36744MHW – PTFE Microminiature Hook-Up Wire
Board spacer E-tec Interconnect SP1-020-S378/01-55
Connector E-tec Interconnect P2510I-02
Tape packaging for stimulation electrodes Nexperia 74HC1G00GW Tape packaging of any integrated circuit with SOT-353 case can be used
Grip Cement Industrial Grade Caulk Dentsply 675571 (powder) 675572 (solvent)
Electroconductive gel Rextra ECG Gel
Recording electrode wire California Fine Wire Co. .002 (50 micron) Tungsten 99.95% (CFW Material #: 100-211), HMl-Natural, cut to 3.0 inch pieces, Round, Cut length piece wire
Ultrafine scissors Hammacher Instrumente Stainless HSB 544-09
Stainless steel tube Vita Needle Company 29 RW, 304SS Tubing, T.I.G. Welded and Plug
High speed rotary saw Dremel Model # 395
Rotary saw holder Dremel Model # 220
Rotary saw cut-off wheel Dremel Model # 409
Ocular sticks Lohmann-Rauscher Pro-ophta Ocular Sticks
Wet disinfectant Egis Betadine
Dry disinfectant Wagner Pharma Reseptyl-urea
Drilling machine NSK-Nakanishi United Kingdom Vmax35RV Pack
Anchoring screws Antrin Miniature Specialties, Inc. 000-120×1/16 SL BIND MS SS

Referencias

  1. Ozen, S., et al. Transcranial electric stimulation entrains cortical neuronal populations in rats. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 30 (34), 11476-11485 (2010).
  2. Ali, M. M., Sellers, K. K., Frohlich, F. Transcranial alternating current stimulation modulates large-scale cortical network activity by network resonance. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 33 (27), 11262-11275 (2013).
  3. Helfrich, R. F., et al. Entrainment of brain oscillations by transcranial alternating current stimulation. Current biology : CB. 24 (3), 333-339 (2014).
  4. Bikson, M., et al. Transcranial direct current stimulation for major depression: a general system for quantifying transcranial electrotherapy dosage. Current treatment options in neurology. 10 (5), 377-385 (2008).
  5. Lefaucheur, J. P., et al. Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS). Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).
  6. Kuo, M. F., Nitsche, M. A. Effects of transcranial electrical stimulation on cognition. Clinical EEG and neuroscience. 43 (3), 192-199 (2012).
  7. Sandrini, M., Fertonani, A., Cohen, L. G., Miniussi, C. Double dissociation of working memory load effects induced by bilateral parietal modulation. Neuropsychologia. 50 (3), 396-402 (2012).
  8. Berenyi, A., Belluscio, M., Mao, D., Buzsaki, G. Closed-loop control of epilepsy by transcranial electrical stimulation. Science. 337 (6095), 735-737 (2012).
  9. Kozak, G., Berenyi, A. Sustained efficacy of closed loop electrical stimulation for long-term treatment of absence epilepsy in rats. Scientific reports. 7 (1), 6300 (2017).
  10. Fertonani, A., Ferrari, C., Miniussi, C. What do you feel if I apply transcranial electric stimulation? Safety, sensations and secondary induced effects. Clinical neurophysiology : official journal of the International Federation of Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2181-2188 (2015).
  11. Marshall, L., Binder, S. Contribution of transcranial oscillatory stimulation to research on neural networks: an emphasis on hippocampo-neocortical rhythms. Frontiers in human neuroscience. 7, 614 (2013).
  12. Reato, D., Rahman, A., Bikson, M., Parra, L. C. Effects of weak transcranial alternating current stimulation on brain activity-a review of known mechanisms from animal studies. Frontiers in human neuroscience. 7, 687 (2013).
  13. Thut, G., Miniussi, C. New insights into rhythmic brain activity from TMS-EEG studies. Trends in cognitive sciences. 13 (4), 182-189 (2009).
  14. Gage, G. J., et al. Surgical implantation of chronic neural electrodes for recording single unit activity and electrocorticographic signals. Journal of visualized experiments : JoVE. (60), (2012).
  15. Vandecasteele, M., et al. Large-scale recording of neurons by movable silicon probes in behaving rodents. Journal of visualized experiments : JoVE. (61), e3568 (2012).
  16. Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Dudek, F. E. Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System. Journal of visualized experiments : JoVE. (101), e52554 (2015).
  17. Ung, K., Arenkiel, B. R. Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue. Journal of visualized experiments : JoVE. (68), e50004 (2012).
  18. Mostany, R., Portera-Cailliau, C. A craniotomy surgery procedure for chronic brain imaging. Journal of visualized experiments : JoVE. (12), (2008).
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Kozák, G., Földi, T., Berényi, A. Chronic Transcranial Electrical Stimulation and Intracortical Recording in Rats. J. Vis. Exp. (135), e56669, doi:10.3791/56669 (2018).

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