Summary

تحليل مشيه الحركية الطائرة السهمي في الفئران C57BL/6 تعرض إلى MOG35-55 التي يسببها التجريبية النخاع المناعة الذاتية

Published: November 04, 2017
doi:

Summary

تحليل مشيه الحركية في الطائرة السهمي تعطي معلومات دقيقة جداً حول كيف يتم تنفيذ الحركة. يصف لنا تطبيق هذه التقنيات على تحديد العجز مشيه للفئران التي تتعرض للمناعة الذاتية بوساطة demyelination. كما يمكن استخدام هذه الأساليب لوصف العجز مشيه لنماذج الماوس أخرى تتميز بضعف الحركة.

Abstract

كثيرا ما استخدمت تحليل مشيه الحركية في الطائرة السهمي لتوصيف حالات العجز الحركي في التصلب المتعدد (MS). يصف لنا تطبيق هذه التقنيات على تحديد العجز مشيه في نموذج الفأر من مرض التصلب العصبي المتعدد، المعروفة باسم النخاع الذاتية التجريبية (ع). يتم تقييم العجز الشلل والحركية في الفئران التي تعرضت إلى ع عادة استخدام مقياس التهديف سريرية. ومع ذلك، هذا المقياس غلة البيانات الترتيبية فقط أن يقدم القليل من المعلومات حول الطبيعة الدقيقة لحالات العجز الحركي. وقسمت أيضا شدة المرض إي بأداء روتارود، الذي يوفر قدرا من التنسيق الحركي العام. على النقيض من ذلك، تحليل مشيه الحركية من أطرافهم هند في الطائرة السهمي يولد معلومات دقيقة جداً عن كيفية حركة البصر. لتنفيذ هذا الإجراء، يتم وضع علامات عاكسة على أطرافهم هند للكشف عن الحركة المشتركة بينما ماوس يسير في حلقة مفرغة. الحركة تحليل البرمجيات المستخدمة لقياس حركة علامات أثناء المشي. معلمات مشيه الحركية ثم مستمدة من البيانات الناتجة. وتبين لنا كيف يمكن استخدام هذه المعلمات مشيه لقياس حركات البصر من مفاصل الورك والركبة والكاحل في ع. يمكن استخدام هذه التقنيات لتحسين فهم آليات المرض وتحديد علاج محتمل لمرض التصلب العصبي المتعدد واضطرابات الأعصاب الأخرى التي تعوق التنقل.

Introduction

مشيه عبارة عن سلسلة من الحركات المتكررة للأطراف المستخدمة لتحقيق الحركة. مشيه يتكون من دورات الخطوة التي تنقسم إلى مرحلتين: المرحلة موقفا، وعندما تتحرك القدم إلى الوراء على الأرض لدفع يرسل الجسم؛ وفي مرحلة سوينغ، حيث القدم الخروج الأرض وتتحرك إلى الأمام. اضطرابات مشيه سمات مميزة للعديد من اضطرابات الأعصاب، مثل إصابات النخاع الشوكي (علوم) والتصلب المتعدد (MS)، والتصلب العضلي الجانبي (المرض)، ومرض باركنسون (PD) والسكتة الدماغية؛ نماذج القوارض الإكلينيكية لهذه الاضطرابات غالباً الخص بهم العاهات مشيه كل منها1. وكانت آليات المراقبة الأساسية للحركة في الفئران دراسة مكثفة2،3. بالإضافة إلى ذلك، هناك نماذج الماوس للعديد من الاضطرابات العصبية البشرية4. ولذلك هو تحليل مشيه في الفئران نهج جذابة لقياس جوانب متعددة من العجز الحركي التي يعرف يرتبط التشريحية. دراسة مشيه في نماذج الفأر قد ثاقبة لاثيل قواعد العجز الحركي في اضطرابات الأعصاب، وتمكين تحديد العلاجات المحتملة.

وتشمل بعض التقنيات التي استخدمت لقياس مشيه في القوارض التفتيش البصري (مثلاً، باسو الماوس مقياس5 وفتح مجال الاختبار6) وتحليل مشيه من الطائرة البطني7. في الآونة الأخيرة، أساليب لقياس الكينماتيكا السهمي الطائرة حركات اللكتات اكتسبت شعبية نظراً لأنها توفر مزيد من المعلومات حول تنفيذ الحركة، وهي بالتالي أكثر حساسية للتغييرات الطفيفة في مشيه8، 9 , 10 , 11-التقنيات الحركية المتقدمة لدراسة حركة اللكتات في الطائرة السهمي بينما كان يسير في حلقة مفرغة9،12 وقد درست على نطاق واسع في سياق الخيال، المرض، الإصابات الرضية القشرية، والسكتة الدماغية، و مرض هنتنغتون8،9،10،11،،من1314،،من1516. وفي المقابل، شهدت هذه التقنيات استخدام محدود في دراسة حالات العجز الحركي لنماذج الماوس من التصلب المتعدد17.

النخاع الذاتية التجريبية (إي) هو النموذج الأكثر استخداماً الماوس من مرض التصلب العصبي المتعدد18. طريقتين الرئيسي لتحريض ع عن طريق التطعيم الإيجابي أو السلبي. وفي EAE نشطة، يتم تحصين الفئران مع المستضدات المايلين وتسبب neuroinflammation تي الخلية بوساطة أوتورياكتيفي وديميليناتيون في الحبل الشوكي والمخيخ. من ناحية أخرى، هو فعل EAE السلبي، نقل الخلايا أوتورياكتيفي تي من ماوس مع EAE النشطة ل ماوس السذاجة19. كما هو موضح في مكان آخر، سير المرض وأمراض الأعصاب تتأثر مستضد الجهاز العصبي المركزي (CNS) وضغط الماوس20،21،،من2223،24 ،25. في التجارب إي، وهي حقن الفئران التحكم الكامل فروند الشعبية adjuvant (CFA) دون مستضد المايلين. EAE تتميز بترتيب تصاعدي الشلل الذي يبدأ مع ضعف الذيل، ويمكن أن تنطوي على الأمامية، أسفر عن ترنح والشلل الذي أصاب20. نحن اتسمت مؤخرا تغييرات مشيه في الفئران C57Bl/6 تعرض لبروتين سكري oligodendrocyte المايلين 35-55 (35-55من موج)-التي يسببها ع. وقد أظهرت هذه الدراسات تحليل مشيه أن تكون متفوقة من التحليل السلوكي الكلاسيكي للانحرافات عن حركة الكاحل طبيعية عالية ترتبط بدرجة فقدان هذه المسألة الأبيض في الحبل الشوكي القطني من الفئران ع26. على النقيض من ذلك، قوة العلاقة بين فقدان هذه المسألة الأبيض واثنين الأخرى السلوكية التدابير التقليدية (التهديف السريرية وروتارود) كان أضعف بكثير26.

يصف لنا هنا في استخدام تحليل مشيه الحركية للكشف عن العجز في الحركة في الطائرة السهمي من الفئران ع المشي في حلقة مفرغة. وضعت خمس علامات عاكسة اللكتات تحديد حركة الورك والركبة، والمفاصل الكاحل في تسجيلات الفيديو عالية السرعة. برمجيات تحليل الحركة استخدمت لاستخراج البيانات الحركية عن الرحلات المشتركة. وتناقش جدوى هذه التقنيات لقياس العجز حركة لنموذج35-55 موج EAE. هذه التقنيات تنطبق أيضا على دراسة العجز مشيه في نماذج أخرى الماوس من اضطرابات الأعصاب.

Protocol

هذا البروتوكول وفقا “المجلس الكندي” المبادئ التوجيهية “رعاية الحيوان”، ووافقت عليه “لجنة جامعة دالهوزي” على “الحيوانات المختبرية”. 1-“بناء علامات عاكسة”: استخدام لكمه ثقب اليد، لكمه العدد المطلوب من دوائر صغيرة من ورقة العاكسة. ويتطلب كل الحيوانات 5 علامات لتسجيل واحد؛ ا…

Representative Results

ويمثل الشكل 1 تمثيل تخطيطي للإجراءات المستخدمة لتحليل مشيه الحركية. أولاً، تعكس علامات مصنوعة ووضعها على ماوس عند 5 نقاط تشريحية. ثم يتم تسجيل مشيه بينما الماوس يسير في حلقة مفرغة. الحركة تحليل البرمجيات المستخدمة لاستخراج البيانات الحركية للتحليل اللاحق. <s…

Discussion

في الفئران مع ع، هي التهديف السريرية الطريقتين الأكثر شيوعاً لقياس العجز الحركي وتقع الكمون من27،روتارود28. هذه التقنيات على قيود عدة. سجل السريرية محدودة على الرغم من ملاءمة والمستخدمة على نطاق واسع، التي تسفر عن بيانات المستوى الترتيبي فقط، مما يعني أن حج?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نود أن نعترف شدراوي Sid لمساعدته التقنية مع التصوير. وكان هذا العمل مدعومة بتمويل من جمعية مرض التصلب العصبي المتعدد من كندا (EGID 2983).

Materials

Camera Nikon Nikon D750 Used to film the video
Reflective tape B&L Engineering MKR-Tape-2
Fine scissors Fine Science Tools 15023-10
Forceps Fine Science Tools 11252-20
Glue gun Craftsmart E231647
scalpel handle #4 Roboz R5-9884
Scalpel Blade No.10 Feather 2020-12
C57BL/6 mice Charles River Laboratories
Anesthetic machine EZ Anesthesia EZ-AF9000 Auto Flow System
Recirculating water heating blanket Androit HTP-1500
topical eye lubricant Refresh DIN00210889
Shaver Oster 78997-010
High speed camera Fastec Fastec IL3-100
High power light Smith Victor Corporation Model 700 SG (600 Watt quartz light, 120 Volts)
Light Stand Promaster LS1
Treadmill Custom built at the Zoological Institute, University of Cologne
Microsoft Excel 2016 Microsoft Version 2016
KinemaJ Nicolas Stifani This is a script generated for use with ImageJ
KinemaR Nicolas Stifani This is a script generated for use with Rstudio
Vicon Motus Vicon Motus Version 9.00
GraphPad Prism GraphPad Version 6.00

Referencias

  1. Giladi, N., Horak, F. B., Hausdorff, J. M. Classification of gait disturbances: distinguishing between continuous and episodic changes. Mov Disord. 28 (11), 1469-1473 (2013).
  2. Kiehn, O. Decoding the organization of spinal circuits that control locomotion. Nat Rev Neurosci. 17 (4), 224-238 (2016).
  3. Akay, T., Tourtellotte, W. G., Arber, S., Jessell, T. M. Degradation of mouse locomotor pattern in the absence of proprioceptive sensory feedback. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (47), 16877-16882 (2014).
  4. Hafezparast, M., Ahmad-Annuar, A., Wood, N. W., Tabrizi, S. J., Fisher, E. M. Mouse models for neurological disease. Lancet Neurol. 1 (4), 215-224 (2002).
  5. Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. J Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
  6. Tatem, K. S., et al. Behavioral and locomotor measurements using an open field activity monitoring system for skeletal muscle diseases. J Vis Exp. (91), e51785 (2014).
  7. Hetze, S., Romer, C., Teufelhart, C., Meisel, A., Engel, O. Gait analysis as a method for assessing neurological outcome in a mouse model of stroke. J Neurosci Methods. 206 (1), 7-14 (2012).
  8. Preisig, D. F., et al. High-speed video gait analysis reveals early and characteristic locomotor phenotypes in mouse models of neurodegenerative movement disorders. Behav Brain Res. 311, 340-353 (2016).
  9. Leblond, H., L’Esperance, M., Orsal, D., Rossignol, S. Treadmill locomotion in the intact and spinal mouse. J Neurosci. 23 (36), 11411-11419 (2003).
  10. Ueno, M., Yamashita, T. Kinematic analyses reveal impaired locomotion following injury of the motor cortex in mice. Exp Neurol. 230 (2), 280-290 (2011).
  11. Zorner, B., et al. Profiling locomotor recovery: comprehensive quantification of impairments after CNS damage in rodents. Nat Methods. 7 (9), 701-708 (2010).
  12. Pearson, K. G., Acharya, H., Fouad, K. A new electrode configuration for recording electromyographic activity in behaving mice. J Neurosci Methods. 148 (1), 36-42 (2005).
  13. Balkaya, M., Krober, J. M., Rex, A., Endres, M. Assessing post-stroke behavior in mouse models of focal ischemia. J Cereb Blood Flow Metab. 33 (3), 330-338 (2013).
  14. Akay, T. Long-term measurement of muscle denervation and locomotor behavior in individual wild-type and ALS model mice. J Neurophysiol. 111 (3), 694-703 (2014).
  15. Taylor, T. N., Greene, J. G., Miller, G. W. Behavioral phenotyping of mouse models of Parkinson’s disease. Behav Brain Res. 211 (1), 1-10 (2010).
  16. Chen, K., et al. Differential Histopathological and Behavioral Outcomes Eight Weeks after Rat Spinal Cord Injury by Contusion, Dislocation, and Distraction Mechanisms. J Neurotrauma. 33 (18), 1667-1684 (2016).
  17. de Bruin, N. M., et al. Multiple rodent models and behavioral measures reveal unexpected responses to FTY720 and DMF in experimental autoimmune encephalomyelitis. Behav Brain Res. 300, 160-174 (2016).
  18. Steinman, L., Zamvil, S. S. How to successfully apply animal studies in experimental allergic encephalomyelitis to research on multiple sclerosis. Ann Neurol. 60 (1), 12-21 (2006).
  19. Emerson, M. R., Gallagher, R. J., Marquis, J. G., LeVine, S. M. Enhancing the ability of experimental autoimmune encephalomyelitis to serve as a more rigorous model of multiple sclerosis through refinement of the experimental design. Comp Med. 59 (2), 112-128 (2009).
  20. Bittner, S., Afzali, A. M., Wiendl, H., Meuth, S. G. Myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 mice. J Vis Exp. (86), (2014).
  21. Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Induction and clinical scoring of chronic-relapsing experimental autoimmune encephalomyelitis. J Vis Exp. (5), e224 (2007).
  22. Barthelmes, J., et al. Induction of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis in Mice and Evaluation of the Disease-dependent Distribution of Immune Cells in Various Tissues. J Vis Exp. (111), (2016).
  23. Shaw, M. K., Zhao, X. Q., Tse, H. Y. Overcoming unresponsiveness in experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) resistant mouse strains by adoptive transfer and antigenic challenge. J Vis Exp. (62), e3778 (2012).
  24. Stromnes, I. M., Goverman, J. M. Passive induction of experimental allergic encephalomyelitis. Nat Protoc. 1 (4), 1952-1960 (2006).
  25. Stromnes, I. M., Goverman, J. M. Active induction of experimental allergic encephalomyelitis. Nat Protoc. 1 (4), 1810-1819 (2006).
  26. Fiander, M. D., Stifani, N., Nichols, M., Akay, T., Robertson, G. S. Kinematic gait parameters are highly sensitive measures of motor deficits and spinal cord injury in mice subjected to experimental autoimmune encephalomyelitis. Behav Brain Res. 317, 95-108 (2017).
  27. Jones, M. V., et al. Behavioral and pathological outcomes in MOG 35-55 experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 199 (1-2), 83-93 (2008).
  28. van den Berg, R., Laman, J. D., van Meurs, M., Hintzen, R. Q., Hoogenraad, C. C. Rotarod motor performance and advanced spinal cord lesion image analysis refine assessment of neurodegeneration in experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neurosci Methods. 262, 66-76 (2016).
  29. Sasaki, M., Lankford, K. L., Brown, R. J., Ruddle, N. H., Kocsis, J. D. Focal experimental autoimmune encephalomyelitis in the Lewis rat induced by immunization with myelin oligodendrocyte glycoprotein and intraspinal injection of vascular endothelial growth factor. Glia. 58 (13), 1523-1531 (2010).
  30. Merkler, D., Ernsting, T., Kerschensteiner, M., Bruck, W., Stadelmann, C. A new focal EAE model of cortical demyelination: multiple sclerosis-like lesions with rapid resolution of inflammation and extensive remyelination. Brain. 129 (Pt 8), 1972-1983 (2006).
  31. Franco-Pons, N., Torrente, M., Colomina, M. T., Vilella, E. Behavioral deficits in the cuprizone-induced murine model of demyelination/remyelination. Toxicol Lett. 169 (3), 205-213 (2007).
  32. Goldberg, N. R., Hampton, T., McCue, S., Kale, A., Meshul, C. K. Profiling changes in gait dynamics resulting from progressive 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine-induced nigrostriatal lesioning. J Neurosci Res. 89 (10), 1698-1706 (2011).
check_url/es/56032?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Fiander, M. D., Chedrawe, M. A., Lamport, A., Akay, T., Robertson, G. S. Sagittal Plane Kinematic Gait Analysis in C57BL/6 Mice Subjected to MOG35-55 Induced Experimental Autoimmune Encephalomyelitis. J. Vis. Exp. (129), e56032, doi:10.3791/56032 (2017).

View Video