Apreensão de electroconvulsive (ECS) é um modelo animal experimental de terapia eletroconvulsiva para depressão grave. ECS globalmente estimula a atividade no hipocampo, levando a sinaptogênese e plasticidade sináptica. Aqui, descrevemos os métodos para a indução de ECS em ratos e para fraccionamento subcelular de seu hipocampo para examinar alterações induzidas pelo ataque em proteínas sinápticas.
Apreensão de electroconvulsive (ECS) é um modelo animal experimental de eletroconvulsoterapia, o tratamento mais eficaz para a depressão severa. ECS induz convulsões tônico-clônica generalizadas com baixa mortalidade e morte neuronal e é um modelo utilizado para droga anti-epiléptica de tela. Aqui, descrevemos um método de indução de ECS em que uma corrente de 55-mA breve é entregue para 0,5 s para macho ratos 200-250 g de peso através de eletrodos de orelha-clip. Tal estimulação bilateral produzida estágio 4-5 convulsões Clônicas que durou cerca de 10 s. Após a cessação da ECS aguda ou crônica, a maioria dos ratos recuperados para ser comportamentalmente indistinguível de sham a ratos “nenhuma apreensão”. Porque ECS globalmente eleva a atividade cerebral, ele também serviu para examinar alterações de atividade-dependente de proteínas sinápticas e seus efeitos na força sináptica, usando vários métodos. Em particular, fraccionamento subcelular da densidade pós-sináptica (PSD) em combinação com mancha ocidental permite a determinação quantitativa da abundância de proteínas sinápticas nesta estrutura sináptica especializada. Em contraste com um método de fracionamento anterior que exige grande quantidade de cérebros de roedores, descrevemos aqui um método de fracionamento de pequena escala para isolar o PSD do hipocampo de rato único, sem centrifugação gradiente de sacarose. Usando esse método, mostramos que a fração isolada do PSD contém proteínas de membrana pós-sináptica, incluindo PSD95, GluN2B e GluA2. Sinaptofisina marcador pré-sináptica e proteínas citoplasmáticas solúveis α-tubulina foram excluídas a fração PSD, demonstrando bem sucedido isolamento do PSD. Além disso, a ECS crônica diminuiu GluN2B expressão no PSD, indicando que o nosso método de fracionamento de PSD em pequena escala pode ser aplicado para detectar as alterações no hipocampo proteínas PSD de um único rato após tratamentos genéticos, farmacológicos ou mecânicos .
Eletroconvulsoterapia tem sido usada para tratar pacientes com distúrbios depressivos major, incluindo depressão severa resistente a medicamentos, depressão bipolar, a doença de Parkinson doenças e esquizofrenia1,2. Esta terapia, convulsão é gerado pelo estímulo eléctrico entregado na cabeça de pacientes anestesiados através de sub-fascial eletrodos1,2,3. Administração repetitiva de ECS tem sido clinicamente benéfica para transtornos depressivos resistentes1,2,3. No entanto, o mecanismo exato subjacentes a eficácia a longo prazo do efeito antidepressivo em humanos permaneceu indescritível. ECS é um modelo animal de eletroconvulsoterapia e é amplamente usado para investigar seu mecanismo terapêutico. Em roedores, ambos ECS aguda e crônico tratamento ECS promovem neurogénese adulta no hipocampo em reorganizar a rede neural4,5, susceptível de contribuir para melhorias na flexibilidade cognitiva. Além disso, elevação global da atividade cerebral por ECS altera a abundância de transcrições, tais como um cérebro derivada neurotrópica fator6e várias proteínas, incluindo metabotrópico glutamato receptor 17 e o N-metil-D-aspartato (NMDA) tipo glutamato receptor subunidades7. Estas mudanças estão envolvidas na mediação a longo prazo modificação do número de sinapse, estrutura e força do hipocampo7,8,9.
Modelos ECS, estimulação elétrica é entregue para roedores via stereotaxically implantados eletrodos, eletrodos corneais ou eletrodos de orelha para evocar as convulsões tônico-clônica generalizada10,11. Estereotáxica implante de eletrodos envolve cirurgia cerebral e exige um tempo significativo para melhorar habilidades cirúrgicas do experimentador para minimizar a lesão. Menos invasivos eletrodos corneais podem causar secura e abrasão corneal e requer anestesia. O uso de eletrodos de orelha-clip ignora essas limitações porque eles podem ser usados em roedores sem cirurgia ou anestesia e causam lesão mínima. De fato, descobrimos que atual entregues ao acordado ratos através de orelha-clip eletrodos confiantemente induz convulsões tônico-clônicas fase 4-5 e altera as proteínas sinápticas em seu hipocampo10.
Para examinar a abundância de ECS-induzida de proteínas sinápticas em regiões específicas do cérebro dos roedores, é importante escolher os métodos experimentais que são mais adequados para a sua detecção e quantificação. Fraccionamento subcelular do cérebro permite o isolamento bruto de proteínas citosólico solúveis; proteínas de membrana; proteínas de organela-limites; e até mesmo proteínas em estruturas subcelulares especiais, tais como o PSD12,13,14. O PSD é um domínio subcellular denso e bem organizado em neurônios no qual proteínas sinápticas são altamente concentradas em e perto da membrana pós-sináptica12,13,15. O isolamento do PSD é útil para o estudo de proteínas sinápticas enriquecido no PSD, desde mudanças dinâmicas na abundância e função de receptores pós-sinápticos glutamato, andaimes proteínas e proteínas de transdução de sinal no PSD12 , 15 , 16 , 17 são correlacionadas com plasticidade sináptica e o synaptopathy observado em várias doenças neurológicas17,18. Um método de fracionamento subcelular anterior usado para purificar o PSD envolveu o isolamento da fração insolúvel em detergente da fracção bruto da membrana do cérebro pela centrifugação diferencial de gradientes de sacarose14, 19. o grande desafio com esse método tradicional é que ele requer grandes quantidades de roedores cérebros14,19. Preparação de 10-20 roedores para isolar a fração do PSD por tratamento exige extensivo custo e investimento de tempo e não é praticamente viável se existem muitos tratamentos.
Para superar este desafio, nós adaptamos um método mais simples que diretamente isola a fração do PSD, sem sacarose centrifugação gradiente20,21e revisto para ser aplicável ao isolamento do PSD do hipocampo de rato único cérebro. Nosso método de fracionamento de PSD em pequena escala produz sobre 30-50 µ g de proteínas PSD de 2 hipocampo, suficiente para o uso em vários ensaios bioquímicos, incluindo imunoprecipitação e mancha ocidental. Mancha ocidental demonstra o sucesso do nosso método para isolar o PSD, revelando o enriquecimento da proteína densidade pós-sináptica 95 (PSD-95) e a exclusão de marcador pré-sináptica Sinaptofisina e proteínas citoplasmáticas solúveis α-tubulina. Nossa indução ECS e métodos de fracionamento de PSD em pequena escala são facilmente adaptáveis para outras regiões do cérebro de roedor e fornecem uma maneira relativamente simples e confiável para avaliar os efeitos da ECS na expressão de proteínas do PSD.
Aqui, descrevemos um método de indução de ECS em ratos que provoca a estimulação global da atividade neuronal em seu hipocampo. ECS é um modelo animal de eletroconvulsoterapia, que clinicamente é usada para tratar transtornos depressivos refratários de drogas em seres humanos1,2,3. Apesar do uso da terapia electroconvulsive para tratar a depressão grave, o mecanismo preciso subjacente permanece obscuro. Porque ECS induz…
The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecer Dr. Eric C. Bolton por nos permitir usar sua centrífuga para fracionamento e Dr. Graham H. Diering no laboratório do Dr. Richard L. Huganir Universidade de John Hopkins, nos fornecer o protocolo de pequena escala para o fraccionamento do PSD.
Spargue-Dawley rat | Charles River Laboratories | ECS supplies | |
A pulse generator | Ugo Bsile, Comerio, Italy | 57800 | ECS supplies |
MilliQ water purifying system | EMD Millipore | Z00Q0VWW | Subcellular fractionation supplies |
Sucrose | Em science | SX 1075-3 | Subcellular fractionation supplies |
Na4O7P2 | SIGMA-ALDRICH | 221368 | Subcellular fractionation supplies |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | SIGMA-ALDRICH | E9884 | Subcellular fractionation supplies |
HEPES | SIGMA-ALDRICH | H0527 | Subcellular fractionation supplies |
Okadaic acid | TOCRIS | 1136 | Subcellular fractionation supplies |
Halt Protease Inhibitor | Thermo Scientific | 78429 | Subcellular fractionation supplies |
NaVO3 | SIGMA-ALDRICH | 72060 | Subcellular fractionation supplies |
EMD Millipore Sterito Sterile Vacuum Bottle-Top Filters | Fisher Scientific | SCGPS05RE | Subcellular fractionation supplies |
Iris Scissors | WPI (World Precision Instruments) | 500216-G | Subcellular fractionation supplies |
30 mm tissue culture dish | Fisher Scientific | 08-772B | Subcellular fractionation supplies |
Glass homogenizer and a Teflon pestle | VWR | 89026-384 | Subcellular fractionation supplies |
1.7 mL microcentrifuge tube | DENVILLE SCIENTIFIC INC. | C2170 (1001002) | Subcellular fractionation supplies |
Sorvall Legend XT/XF Centrifuge | Thermo Fisher | 75004521 | Subcellular fractionation supplies |
Pierce BCA Protein Assay Reagent A, 500 mL | Thermo Fisher | #23228 | Western blot supplies |
Pierce BCA Protein Assay Reagent B, 25 mL | Thermo Fisher | #1859078 | Western blot supplies |
SDS-polyacrylamide gel (SDS-PAGE) | BIO-RAD | #4561086S | Western blot supplies |
Running Buffer | Made in the lab | Western blot supplies. | |
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophorsis Cell for MiniPrecast Gels, 4-gel | BIO-RAD | #1658004 | Western blot supplies |
Polyvinyl difluoride (PVDF) membrane | Milipore | IPVH00010 | Western blot supplies |
Transfer Buffer | Made in the lab | Western blot supplies. | |
Tris-base | Fisher Scientific | BP152-1 | Western blot supplies |
Glycine | Fisher Scientific | BP381-5 | Western blot supplies |
Sodium dodecyl sulfate | SIGMA-ALDRICH | 436143 | Western blot supplies |
Methanol | Fisher Scientific | A454-4 | Western blot supplies |
Triton X-100 | Fisher Scientific | BP151-500 | detergent for PSD isolation |
Mini Trans-Blot Module | BIO-RAD | #1703935 | Western blot supplies |
Nonfat instant dry milk | Great value | Western blot supplies | |
Multi-purposee rotator | Thermo Scientific | Model-2314 | Western blot supplies |
Hyblot CL Autoradiography Film | DENVILLE SCIENTIFIC INC. | E3018 (1001365) | Western blot supplies |
Enhanced chemifluorescence substrate | Thermo Scientific | 32106 | Western blot supplies |
a Konica SRX-101A film processor | KONICA MINOLTA | SRX-101A | Western blot supplies |
Name of Antibody | |||
PSD-95 | Cell Signaling | #2507 | Antibody dilution = 1:500-1000, time = 9 – 12 h, Reaction Temperature = 4 °C, Host Species = Rabbit |
Synaptophysin | Cell Signaling | #4329 | Antibody dilution = 1:500-1000, time = 9 – 12 h, Reaction Temperature = 4 °C, Host Species = Rabbit |
alpha-Tubulin | Santacruz | SC-5286 | Antibody dilution = 1:500-1000, time = 9 – 12 h, Reaction Temperature = 4 °C, Host Species = Mouse |
GluN2B | Neuromab | 75-097 | Antibody dilution = 1:500-1000, time = 9 – 12 h, Reaction Temperature = 4 °C, Host Species = Mouse |
GluA2 | Sigma-aldrich | Sab 4501295 | Antibody dilution = 1:500-1000, time = 9 – 12 h, Reaction Temperature = 4 °C, Host Species = Rabbit |
STEP | Santacruz | SC-23892 | Antibody dilution = 1:200-500, time = 9 – 12 h, Reaction Temperature = 4 °C, Host Species = Mouse |
Peroxidas AffiniPure Donkey Anti-Mouse IgG (H+L) | Jackson ImmunoReserch laboratory | 715-035-150 | Antibody dilution = 1:2000-5000, time = 1 h, Reaction Temperature = RT, Host Species = Donkey |
Peroxidas AffiniPure Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jackson ImmunoReserch laboratory | 711-035-152 | Antibody dilution = 1:2000-5000, time = 1 h, Reaction Temperature = RT, Host Species = Donkey |