Здесь мы опишем методологию получения чистой популяции человеческих миобластов из мышечной ткани взрослого человека. Эти клетки используются для изучения дифференцировки скелетных мышц in vitro и, в частности, для изучения белков, участвующих в передаче сигналов Ca 2+ .
Спутниковые клетки (SC) представляют собой мышечные стволовые клетки, расположенные между плазматической мембраной мышечных волокон и окружающей базальной пластинкой. Они необходимы для регенерации мышц. При травме, которая часто встречается в скелетных мышцах, активируются СК. Они размножаются как миобласты и дифференцируются для восстановления мышечных повреждений. Среди многих событий, которые происходят во время мышечной дифференциации, цитозольные сигналы Ca 2+ имеют большое значение. Эти сигналы Ca 2+ возникают из-за выделения Ca 2+ из внутренних хранилищ Ca 2+ , а также из Ca 2 + -входа из внеклеточного пространства, в частности, в хранилище Ca 2+, хранящегося в магазине (SOCE). В этой статье описывается методология, используемая для получения чистой популяции миобластов человека из образцов мышц, собранных после ортопедической хирургии. Ткань механически и ферментативно расщепляется, и клетки амплифицируются, а затем сортируются по проточной цитометрии в зависимости от наличия специфическихFic мембранные маркеры. После получения человеческие миобласты расширяются и привержены дифференциации путем удаления факторов роста из культуральной среды. Уровни экспрессии специфических факторов транскрипции и иммунофлуоресценции in vitro используются для оценки процесса миогенной дифференцировки в условиях контроля и после нейтрализации белков, участвующих в передаче сигналов Ca 2+ . Наконец, мы подробно описываем использование Fura-2 в качестве рациометрического зонда Ca 2+, который обеспечивает надежные и воспроизводимые измерения SOCE.
Человеческие скелетные мышцы состоят из групп сократительных, многоядерных мышечных волокон, полученных в результате слияния миогенных клеток-предшественников. Скелетные мышцы способны регенерировать после травмы благодаря наличию SC, стволовых клеток скелетных мышц, расположенных между плазматической мембраной myofibers (сарколеммой) и базальной пластинкой. В неповрежденной мышце SCs в основном присутствуют в спокойном состоянии. В ответ на механические стрессы или травмы SC активируются (миобласты), размножаются и подвергаются либо дифференцировке, либо формируют новые миофибры или самообновление для пополнения пула SC 1 , 2 . На протяжении многих лет были разработаны несколько методов для выделения SC и их потомства, миобластов, из биопсий скелетных мышц. С большим пониманием маркеров клеточной поверхности, экспрессируемых на этих клетках, и методологии сортировки клеток, активированной флуоресценцией (FACS) 3, 4 , 5 , теперь можно выделить чистые популяции миобластов человека из образцов мышц.
Кальциевая сигнализация регулирует развитие скелетных мышц, гомеостаз и регенерацию. В частности, вход Са 2+ , который активируется следующим внутриклеточным истощением магазина, называется SOCE, имеет большое значения 6 для этих процессов. При стимуляции клеток, уровень Са 2+ в эндо / саркоплазматического ретикулума (ER / SR) уменьшается, что , в свою очередь , активирует плазматической мембраны Ca 2+ каналы , которые позволяют вход Ca 2+ для пополнения ER / SR 7. Двумя основными белками, участвующими в СОСЭ, являются белок ERR / SR Ca 2+ -центрирующего стромального взаимодействия 1 (STIM1) и канал Ca 2+ плазматической мембраны Orai1. Скелетные мышцы обильно выражают эти два белка, а также другие белки одних и тех же семейств (STIM2 aNd Orai2-Orai3) 8 , 9 и несколько Ca 2+ -проницаемых каналов карионического (TRPC) транзиторного рецепторного семейства 10 , 11 , 12 , 13 . Ca 2+ через канал SOCE имеет большое значение для мышечного образования / регенерации 14 . Мутации протеинов STIM1 или Orai1 оказывают вредное воздействие на функцию мышц, что в основном ведет к мышечной гипотонии 15 . Модели животных с ухудшением состояния окружающей среды также демонстрируют снижение мышечной массы и силы вместе с повышенной утомляемостью 6 , 16 , 17 . Как уже упоминалось, другие белки STIM и Orai, а также многие каналы TRPC выражены в скелетных мышцах, и их соответствующие роли пока не определены. Сбив dВладеют своим уровнем экспрессии, поэтому можно исследовать их последствия в SOCE и их роли во время дифференциации скелетных мышц человека.
Измерение SOCE может быть выполнено с использованием двух разных подходов: электрофизиологических записей тока и измерений Ca 2+ . Электрофизиология, безусловно, является более прямым методом, поскольку она измеряет текущий интерес и связанную с ним электрофизиологическую подпись. Однако эту технику очень трудно применять к мышечным клеткам, главным образом из-за большого размера мышечных клеток и небольшого размера эндогенного тока СОЭ. Цитозолическое изображение Ca 2+ технически очень доступно, но эта мера более косвенная, так как уровень Ca 2+, измеренный в цитозоле, отражает как вход Ca 2+, так и повторное прокачивание клетки или во внутренних хранилищах.
Методология, которая включает выделение миобластов из мелких кусочков человеческого скеляЭтальной мышцы после ферментативного расщепления, амплификации и FACS объясняется в этой статье. Процесс дифференцировки мышц и протокол иммунофлюоресценции , чтобы следить за экспрессией маркеров дифференцировки с течением времени описаны 18. Наконец, объясняются измерения SOCE и роли различных ионных каналов в передаче сигналов Ca 2+ и дифференцировке скелетных мышц.
Изоляция и культура человеческих миобластов из взрослых скелетных мышц предлагают модель in vitro для изучения дифференциации мышц и регенерации мышц. В этой статье мы предлагаем протокол, позволяющий очищать высокие урожаи человеческих миобластов простым и огран…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Швейцарским национальным научным фондом (грант № 310030-166313), «Фондом Suisse pour la recherche sur les maladies musculaires», «Фондом Марселем Левайаном» и «Фондом за рекреацию ostéo-articulaire».
Ham’s F10 | ThermoFisher Scientific | 31550-023 | |
FCS | ThermoFisher Scientific | 10270-106 | Lot 41G5532K |
BSA | Sigma | O5482 | |
fetuin | Sigma | F3385 | |
EGF | Corning | 354001 | |
Dexamethansone | Sigma | D1756 | |
Insulin | Sigma | I9278 | |
Creatine | Sigma | 27900 | |
Pyruvate | Sigma | P4562 | |
Uridine | Sigma | U3003 | |
Gentamycin | ThermoFisher Scientific | 15710-049 | |
Trypsin-EDTA 0.05% | ThermoFisher Scientific | 25300-062 | |
70 μm cell strainer | Falcon | 352350 | |
40 μm cell strainer | Falcon | 352340 | |
Falcon 50 ml tube | Falcon | 352070 | |
Falcon 15 ml tube | Falcon | 352096 | |
Falcon 5 ml tube (FACS) | Falcon | 352058 | |
Culture medium: OPTI-MEM | ThermoFisher Scientific | 31985-047 | |
Transfectant reagnt: RNAiMax | ThermoFisher Scientific | 1756064 | |
PBS | ThermoFisher Scientific | 14190-094 | |
Mounting medium | Fluka | 10981 | |
Mouse anti-MyHC * | DSHB | MF20 | concentrate |
Mouse anti-myogenin | BD Pharmigen | 556358 | |
Rabbit anti-MEF2 | Santa Cruz Biotech | C-21 | |
Goat anti-mouse Alexa488 | ThermoFisher Scientific | A11029 | |
Goat anti-rabbit Alexa 546 | ThermoFisher Scientific | A11035 | |
Mouse anti human CD56-Alexa488 | BD Pharmingen | 557699 | |
Mouse anti human CD146-PECy7 | BD Pharmingen | 562135 | |
Mouse anti human CD45-PE-CF594 | BD Pharmingen | 562279 | |
Mouse anti human CD34-APC | BD Pharmingen | 345804 | |
Mouse anti human CD144-PE | BD Pharmingen | 560410 | |
Alexa Fluor 488 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 557702 | |
PECy7 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 557872 | |
PE-CF594 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 562292 | |
APC mouse IgG1k | BD Pharmingen | 550854 | |
PE mouse IgG1k | BD Pharmingen | 556650 | |
DAPI | Sigma | D9542 | CAUTION: toxic compound |
Paraformaldehyde | Fluka | 762400 | |
Fura-2 AM | ThermoFisher Scientific | F1201 | |
Pluronic F-127 | ThermoFisher Scientific | P3000MP | |
Thapsigargin | Sigma | T9033 | CAUTION : toxic compound |
Ratio imaging acquisition software: Metafluor 6.3 | Molecular Device | ||
* : MF 20 was deposited to the DSHB by Fischman, D.A. |