Мы представляем метод количественного определения фенотипов роста отдельных дрожжевых клеток при их превращении в колонии на твердой среде с использованием временной микроскопии, называемой одноклеточной удвоенной оценкой живых массивов дрожжей (ODELAY). Неоднородность гетерогенности генетически идентичных клеток, растущих в колонии, может быть непосредственно обнаружена и количественно определена.
Фенотипы роста микроорганизмов являются ярким показателем их генетической пригодности и могут быть разделены на 3 режима роста: лаг-фаза, логарифмическая фаза и стационарная фаза. Каждая фаза роста может выявить различные аспекты фитнеса, связанные с различными экологическими и генетическими условиями. Высоких и количественных измерений всех трех фаз роста, как правило, трудно получить. Здесь мы приводим подробный метод охарактеризовать все 3 фазы роста на твердых средах, используя анализ, называемый одноклеточным удвоением оценки живых массивов дрожжей (ODELAY). ODELAY количественно оценивает фенотипы роста отдельных клеток, растущих в колонии на твердых средах, с использованием временной микроскопии. Этот метод может непосредственно наблюдать гетерогенность популяции с каждым параметром роста в генетически идентичных клетках, растущих в колонии. Эта гетерогенность населения предлагает уникальную перспективу для понимания генетической и эпигенетической регуляции, а также ответы наГенетических и экологических возмущений. В то время как метод ODELAY продемонстрирован с использованием дрожжей, его можно использовать на любом микроорганизме, образующем колония, который видим с помощью микроскопии с помощью яркого поля.
Фенотипы роста микроорганизмов являются сильным показателем их генетической пригодности для данного состояния окружающей среды. Рост классически разделяется на 3 разных режима роста: лаг-фаза, логарифмическая фаза и рост стационарной фазы 1 . Каждая фаза роста может выявлять различные аспекты фитнеса, которые зависят от различных экологических и генетических условий. Например, время запаздывания или время, которое организм проводит в лаг-фазе до начала экспоненциального роста, могут указывать на способность организма реагировать на измененные условия окружающей среды 2 . Удвоение времени при логарифмическом росте, наиболее распространенной метрике клеточной пригодности, показывает общую эффективность способности организма делиться за счет метаболизма и использования экологических материалов для репликации. Стационарная фаза, где рост после логарифмической фазы быстро снижается, является еще одним показателем пригодности, который является регулярнымВ качестве конечной точки роста в анализах роста дрожжей на основе пятен.
В настоящее время доступно несколько анализов роста дрожжей и рассматриваются стандартные методы оценки фенотипов роста дрожжей 3 , 4 , 5 . Эти анализы в основном основаны на методах выращивания дрожжей либо на твердых, либо в жидких средах. На твердых средах анализы колонии колоний переносят небольшое количество клеток на твердый агар с помощью штифта, и клеткам дрожжей дают возможность расти в течение определенного периода времени. Затем отображаются колонии и их размеры сравниваются в терминальной конечной точке 6 . Эти анализы колонии колонии оказались надежными и масштабируемыми для создания геномных экранов. Совсем недавно в эти анализы были включены периодические изображения с использованием плоских сканеров и камер с одним объективом Reflex (SLR) для регистрации роста колонии с течением времени 7 , 8, 9 . Тем не менее, разрешение этих устройств не позволяет им обнаруживать отдельные клетки, и, таким образом, эти тесты колониального колонии непосредственно не наблюдают время запаздывания и не могут наблюдать изменения между отдельными клетками, которые растут в колонии.
Анализы роста на основе жидкости также использовались для выполнения экранов 3 генома. Сочетание анализа роста жидкости с временной микроскопией выявило гетерогенность популяции в период удвоения генетически идентичных отдельных клеток, что дает важную перспективу для понимания генетической регуляции и адаптации к окружающей среде. Однако этот анализ не измеряет другие аспекты роста, такие как время запаздывания и пропускная способность 10 . Здесь мы представляем метод охарактеризовать все три фазы роста колониеобразующих микроорганизмов на твердых средах с использованием анализа, который мы называем ODELAY 11 . ODELAY состоит из utiliZing с высокой пропускной способностью для записи изображений одиночных клеток, растущих в колонии на твердых средах. Эта популяция отдельных клеток, растущих в колониях, выявляет гетерогенность популяции, которая не обнаруживается другими менее чувствительными измерениями, такими как оценка конечной точки. Мы демонстрируем метод на дрожжах, но ODELAY может применяться к любому организму, который проявляет контраст в яркой полевой микроскопии.
Анализ ODELAY имеет несколько критических точек для обеспечения воспроизводимых и надежных фенотипических измерений. Первым критическим моментом является последовательная подготовка культур дрожжей. Необходимо принять меры для сбора дрожжевых клеток от логарифмического роста. Если культуры насыщаются, то их гетерогенность будет увеличиваться, что может привести к запутанности гетерогенности, вызванной генетическими или экологическими ( например, источниками углерода) 11 . Вторая критическая точка – это последовательная подготовка СМИ. В общем случае необходимо создать большой объем 10X-носителя для хранения, а затем использовать с течением времени для минимизации пакетных эффектов. Формулирование среды по массе, когда это возможно, помогает улучшить консистенцию среды во времени, обеспечивая тщательный мониторинг плотности агара и общего содержания воды в агарозе. Третья критическая точка заключается в минимизации или устранении какой-либо механической деформации агарозы менядиаметр Механическая деформация среды чаще всего происходит при отделении агарозы от стеклянных слайдов. Как и во многих лабораторных методах, для освоения этого шага требуется практика.
Изменение времени запаздывания, как показано на рисунке 4 , часто связано с одним из трех факторов: механической деформацией агарозной среды, изменением толщины формованного агара или неустойчивым источником света. Если агарозная среда изменяется по Z-высоте по пятнистой решетке, изменение высоты может нарушить диапазон процедуры автоматической фокусировки, в результате чего начальные изображения будут слегка не в фокусе. По этой причине проверьте высоту фокуса в нескольких точках в центре и по краям пятнистого массива, чтобы убедиться, что процедура автофокусировки имеет достаточный Z-диапазон для нахождения фокуса. При необходимости используйте панель автофокусировки, чтобы увеличить диапазон фокусировки и увеличить количество шагов фокусировки.
Третьим возможным условиемИон, который может привести к плохой фокусировке, – это неустойчивый или мерцающий источник света, который может нарушить расчетную оценку фокуса для определенной Z-высоты. Вольфрамовые галогенные лампы обычно мерцают задолго до выгорания лампочек. Эффект плохого фокуса наблюдается в одном примере, где кривые роста опускаются между первым и вторым временными точками ( рис. 5А ), в то время как соседнее пятно не имеет такого же падения ( рис. 5В ). В этом случае ухудшение состояния фокуса было облегчено за счет замены источника галогенных ламп вольфрама.
На практике авторы обнаружили, что для уменьшения мерцания ламп накаливания вольфрамовых ламп мощностью 100 Вт лампочки необходимо заменять каждые 500 ч или примерно каждые 2 месяца, когда микроскопы находятся в тяжелом состоянии. Чтобы избежать проблем с фокусом от мерцающей лампы, часто заменяйте источник галогенных ламп вольфрама или замените галогенную лампу диодным источником света.Пример набора данных, который показывает низкое изменение времени удвоения, а также более равномерное время задержки, показано на рисунке 6 . Этот набор данных был сделан с диодным осветителем, который обеспечивает более стабильное освещение во времени при выполнении автофокуса.
Хотя многие из упомянутых здесь пунктов для оптимизации подготовки средств массовой информации могут показаться очевидными, в литературе экраны большого масштаба не очень хорошо копируются друг с другом 8 , 11 . Поэтому мы тщательно описали подготовку культур и агарозных сред, чтобы можно было генерировать более воспроизводимые фенотипические экраны.
Анализ ODELAY в настоящее время ограничен пропускной способностью по сравнению с анализами на основе пиннинга, такими как синтетические генетические матрицы или анализ Scan-O-Matic. Хотя эти методы увеличивают количество измеряемых штаммов, им не хватает способности разрешать отдельные клетки aСледовательно, не может измерять гетерогенность популяции, которую мы наблюдаем в рамках клональных штаммов дрожжей. Происхождение этой гетерогенности населения в настоящее время не понимается, но слияние технологий и вычислений, как показано здесь, дает возможность объективно решать основные клеточные механизмы 12 .
Авторы хотели бы отметить, что ODELAY в настоящее время оптимизирован только для конкретного типа микроскопа и типа кузова. Изменение ODELAY для других систем микроскопа является прямым, но потребует знания API 13 с открытым исходным кодом. Тем не менее, как API, так и сценарии ODELAY записываются так, что они легко адаптируются к различным системам и экспериментальным анализам.
В то время как ODELAY был первоначально разработан для дрожжей, мы смогли использовать его без модификации, чтобы наблюдать рост Mycobacterium smegmatis . Наблюдение других колониеобразующих микроорганизмовВозможно с изменением исходного кода 11 . В общем, ODELAY – это мощный и гибкий инструмент для сравнения микроорганизмов, выращенных в различных условиях окружающей среды и генетических возмущениях.
The authors have nothing to disclose.
Авторы подтверждают поддержку этой работы грантами U54 RR022220 и P50 GM076547 на JDA из Национальных институтов здравоохранения США. FDM является докторантом с канадскими институтами исследований в области здравоохранения. Мы также благодарим Люксембургский центр системной биомедицины и Университет Люксембурга за поддержку.
Agarose UltraPure | ThermoFisher | 16500500 | Gel Temp 36C, Gel Strength (1%) 1.2g/sq cm |
Yeast Extract Peptone (YEP) | Fisher Scientific | BP1422-2 | |
Complete Suplement Mixture (CSM) | Fisher Scientific | MP114560222 | |
Polyethylene Glycol 3350 (av. mol. wt. 3000-3700) | SigmaAldrich | P2906 | |
Yeast Strain BY4741 | ThermoFisher | 95400.BY4741 | |
Yeast Strain BY4742 | ThermoFisher | 95400.BY4742 | |
50mL Falcon tubes | Corning | 430291 | 1 case |
15mL Falcon tubes | Corning | 352096 | |
2 x 3 inch 1.0mm thick slides 1/2 gross | VWR | 48382-179 | |
96 well plate flat bottom | Corning | 353072 | |
Hydra liquid handleing robot | Thermo | 1096-DT-100 | |
Hamilton Microlab Star Liquid Handleing Robot | Hamilton | ||
hydra 100 mL tips Extended Length DARTS | Thermo | 5527 | |
Synergy H4 Plate Reader | Biotek | H4MLFAD | |
Leica DMI6000 B Microscope | Leica | ||
Leica 10X/0.3NA objective | Leica | 11506289 | |
Hamamatsu ORCA Flash 4.0 Camera | Hamamatsu | C11440-22CU | |
MATLAB with image processing tool box | Mathworks | ||
MicroManager | Open Imaging | https://micro-manager.org/ | |
ODELAY Microscope Control (MATLAB scripts and GUI) | www.aitchisonlab.comODELAY for Matlab scripts and software | ||
ODELAY Microscope Chamber | www.aitchisonlab.comODELAY for Mechanincal Drawings | ||
ODELAY Agar Molds | www.aitchisonlab.comODELAY for mold drawings |