Summary

Différenciation des chondrocytes provenant des cellules souches pluripotentes induites par le sang périphérique dérivé du sang

Published: July 18, 2017
doi:

Summary

Nous présentons un protocole pour générer une lignée chondrogénique à partir de sang périphérique humain (PB) via des cellules souches pluripotentes induites (iPSC) en utilisant une méthode sans intégration, qui comprend la formation de corps embryoïde (EB), l'expansion des cellules fibroblastiques et l'induction chondrogénique.

Abstract

Dans cette étude, nous avons utilisé des cellules sanguines périphériques (PBC) comme cellules de semences pour produire des chondrocytes via des cellules souches pluripotentes induites (iPSC) dans une méthode sans intégration. Après la formation de corps embryoïdaux (EB) et l'expansion des cellules fibroblastiques, les iPSC sont induits pour la différenciation chondrogénique pendant 21 jours dans des conditions exemptes de sérum et exemptes de xénon. Après l'induction des chondrocytes, les phénotypes des cellules sont évalués par des analyses morphologiques, immunohistochimiques et biochimiques, ainsi que par l'examen quantitatif en PCR en temps réel des marqueurs de différenciation chondrogénique. Les granulés chondrogénés présentent une coloration au bleu alcien positive et au bleu de toluidine. L'immunohistochimie de la coloration au collagène II et X est également positive. La teneur en glycosaminoglycanes sulfatés (sGAG) et les marqueurs de différenciation chondrogénique COLLAGEN 2 ( COL2 ), COLLAGEN 10 ( COL10 ), SOX9 et AGGRECAN sont significativement régulés à la hausseGranulés rogéniques par rapport aux hiPSC et aux cellules fibroblastiques. Ces résultats suggèrent que les PBC peuvent être utilisés comme cellules de graines pour générer des iPSC pour la réparation du cartilage, ce qui est spécifique au patient et rentable.

Introduction

Le tissu cartilagineux a une très faible capacité d'auto-réparation et de régénération. Diverses interventions chirurgicales et traitements biologiques sont utilisés pour restaurer le cartilage et la fonction articulaire, avec des résultats insatisfaisants. Le développement récent de la technologie des cellules souches peut changer l'ensemble du champ de réparation du cartilage 1 . Diverses cellules souches ont été étudiées comme cellules de semences, mais les cellules souches pluripotentes induites par l'homme (hiPSC) semblent être le choix le plus prometteur, car elles peuvent fournir de nombreux types de cellules spécifiques du patient sans provoquer de réactions de rejet 2 . En outre, ils peuvent surmonter la nature proliférante limitée des cellules adultes et maintenir leur auto-renouvellement et leurs capacités pluripotentes. En outre, le ciblage des gènes peut être utilisé pour changer le génotype pour obtenir des types spécifiques de chondrocytes.

Les fibroblastes ont été largement utilisés pour générer des iPSC car leurs potentiels de reprogrammation ont également été bien étudiés.Cependant, il reste encore des limites qui doivent être surmontées, telles que la biopsie douloureuse des patients et la nécessité d' une expansion in vitro des fibroblastes, ce qui peut entraîner des mutations génétiques 3 . Récemment, les PBC ont été jugés avantageux pour la reprogrammation 4 ; De plus, ils étaient couramment utilisés et stockés abondamment. Il est possible qu'ils puissent réorienter l'étude de la peau. Cependant, selon le meilleur de notre connaissance, il existe peu de rapports sur la reprogrammation du PBC suivi d'une différenciation en chondrocytes.

Dans l'étude actuelle, nous utilisons les PBC comme source alternative en les reprogrammes dans les iPSC, puis en différenciant les iPSC dans la lignée chondrogénique à travers un système de culture de pastilles afin d'imiter la formation de chondrocytes.

Protocol

Le protocole pour la génération de hiPSC des PBC peut être trouvé dans notre étude précédente 5 . L'étude a été approuvée par le Conseil d'examen institutionnel de notre institution. 1. Formation du corps embryoïde (EB) Faire 50 mL de milieu HiPSC: Milieu Eagle modifié modifié par Dulbecco (DMEM) additionné de 15% de remplissage sérique knockout (KSR), 5% de sérum bovin fœtal (FBS), 1 × acides aminés non essentiels, 2-mercaptoét…

Representative Results

Différenciation chondrogénique des hiPSC: Le milieu de formation de EB et le milieu de culture basal ont été utilisés pour différencier les hiPSC dans la lignée de mésenchyme. Une méthode de culture multi-étapes a été utilisée ( figure 1 ). Tout d'abord, les hiPSC ont été spontanément différenciés via la formation d'EB pendant 10 jours (D10, Figure 2A</s…

Discussion

Ici, nous fournissons un protocole pour générer des chondrocytes de PBC via iPSC. Étant donné que les PBC sont plus fréquents et largement utilisés dans le domaine clinique, ils sont présentés comme une alternative potentielle pour la reprogrammation. Dans cette étude, des vecteurs épisomaux (EV) ont été utilisés pour reprogrammer les PBC dans les iPSC, suivant la méthode établie par Zhang et al. 11 . Cette approche sans intégration n'implique pas l'intégration d…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs souhaitent remercier Xiaobin Zhang pour son plasmide. Nous remercions également Shaorong Gao et Qianfei Wang pour leur aide aimable pendant l'expérience. Cette étude est soutenue par la National Natural Science Foundation of China (No.81101346, 81271963, 81100331), le projet de talent de haut niveau de Beijing 215 (n ° 2014-3-025) et le fonds de l'hôpital Chao-Yang de Beijing (non . CYXX-2017-01) et l'Association pour la promotion de l'innovation des jeunes de l'Académie chinoise des sciences (YL).

Materials

Knockout DMEM Invitrogen 10829018 Basal medium used for hiPSC culture and EB formation medium
Knockout Serum Replacement (KSR) Invitrogen 10828028 A more defined, FBS-free medium supplement used for hiPSC culture and EB formation medium
Fetal bovine serum (FBS) Hyclone sh30070.03 Used for hiPSC culture and EB formation medium,offers excellent value for cell culture
Nonessential amino acids Chemicon TMS-001-C Used as a growth supplement in all the cell culture medium, to increase cell growth and viability
L-glutamine Invitrogen 35050061 An amino acid required for cell culture
Basic fibroblast growth factor (bFGF) Peprotech 100-18B A cytokine used for sustaining the pluripotency and self-renewal of hiPSCs
Dispase Invitrogen 17105041 Used for hiPSC dissociation for subculture
DMEM Gibco C11960 Basal medium used for MSC culture medium
0.1% gelatin Millipore ES-006-B Used for cell attachment onto the dishes
0.25% trypsin/EDTA Gibco 25200072 Used for cell dissociation
DPBS Gibco 14190250 A balanced salt solution used for cell wash or reagent preparing
β-mercaptoethanol invitrogen 21985023 Used as a growth supplement in all the cell culture medium.
ITS invitrogen 41400045 Insulin, Transferrin, Selenium Solution.Used for chondrogenic differentiation.
Ascorbic acid Sigma 4403 Known as vitamin C. It helps in active growth and has antioxidant property.
Sodium pyruvate Gibco 11360070 Added to cell culture medium as an energy source in addition to glucose.
Transforming growth factor-beta 1 Peprotech AF-100-21C A cytokine that regulate cell proliferation, growth and chondrogenic differentiation.
Rabbit polyclonal antibodies against Collagen II Abcam ab34712 This antibody reacts with Type II collagens,which is specific for cartilaginous tissues.
Mouse monoclonal antibodies to Collagen X Abcam ab49945 This antibody reacts with Type X collagen,which is a product of hyperthrophic chondrotocytes.
Permount Fisher Scientific SP15-100 For mounting and long-term storage of slides
Toluidine blue Sigma 89640 Used for proteoglycans detection.
Alcian blue Amresco #0298 Used for glucosaminoglycans detection.
Papain Sigma P4762-25MG Used to digest chondrogenic pellets.
Dimethylmethylene blue Sigma 341088-1G Used to quantitate glycosaminoglyans
Chondroitin sulfate sodium salt from shark cartilage Sigma C4384-250MG Used to draw the standard curve for sGAG content measurement.
Qubit dsDNA HS assay kit Invitrogen Q32851 (100) Used to determine DNA content
TRIzol Invitrogen 15596018 Used for RNA isolation from cells
Reverse Transcriptase System Promega A3500 Used to convert RNA into cDNA
SYBR FAST qPCR kit Master Mix Kapa KK4601 Used for Real-time PCR

Referencias

  1. Diekman, B. O., et al. Cartilage tissue engineering using differentiated and purified induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109 (47), 19172-19177 (2012).
  2. Park, I. H., et al. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134 (5), 877-886 (2008).
  3. Loh, Y. H., et al. Generation of induced pluripotent stem cells from human blood. Blood. 113 (22), 5476-5479 (2009).
  4. Zhang, X. B. Cellular reprogramming of human peripheral blood cells. Genomics Proteomics Bioinformatics. 11 (5), 264-274 (2013).
  5. Li, Y., et al. Reprogramming of blood cells into induced pluripotent stem cells as a new cell source for cartilage repair. Stem Cell Res Ther. 7 (31), (2016).
  6. Canene-Adams, K. Preparation of formalin-fixed paraffin-embedded tissue for immunohistochemistry. Methods Enzymol. 533, 225-233 (2013).
  7. Solchaga, L. A., Penick, K. J., Welter, J. F. Chondrogenic differentiation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells: tips and tricks. Methods Mol Biol. 698, 253-278 (2011).
  8. Oldershaw, R. A., et al. Directed differentiation of human embryonic stem cells toward chondrocytes. Nat Biotechnol. 28 (11), 1187-1194 (2010).
  9. Monje, L., Varayoud, J., Luque, E. H., Ramos, J. G. Neonatal exposure to bisphenol A modifies the abundance of estrogen receptor alpha transcripts with alternative 5′-untranslated regions in the female rat preoptic area. J Endocrinol. 194 (1), 201-212 (2007).
  10. Teramura, T., et al. Induction of mesenchymal progenitor cells with chondrogenic property from mouse-induced pluripotent stem cells. Cell Reprogram. 12 (3), 249-261 (2010).
  11. Su, R. J., et al. Efficient generation of integration-free ips cells from human adult peripheral blood using BCL-XL together with Yamanaka factors. PLoS One. 8 (5), e64496 (2013).
  12. Carey, B. W., et al. Reprogramming factor stoichiometry influences the epigenetic state and biological properties of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 9 (6), 588-598 (2011).
  13. Okita, K., et al. An efficient nonviral method to generate integration-free human-induced pluripotent stem cells from cord blood and peripheral blood cells. Stem Cells. 31 (3), 458-466 (2013).
  14. Staerk, J., et al. Reprogramming of human peripheral blood cells to induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 7 (1), 20-24 (2010).
  15. Qu, C., et al. Chondrogenic differentiation of human pluripotent stem cells in chondrocyte co-culture. Int J Biochem Cell Biol. 45 (8), 1802-1812 (2013).
  16. Guzzo, R. M., Gibson, J., Xu, R. H., Lee, F. Y., Drissi, H. Efficient differentiation of human iPSC-derived mesenchymal stem cells to chondroprogenitor cells. J Cell Biochem. 114 (2), 480-490 (2013).
  17. Koyama, N., et al. Human induced pluripotent stem cells differentiated into chondrogenic lineage via generation of mesenchymal progenitor cells. Stem Cells Dev. 22 (1), 102-113 (2013).
  18. Liu, X., et al. Role of insulin-transferrin-selenium in auricular chondrocyte proliferation and engineered cartilage formation in vitro. Int J Mol Sci. 15 (1), 1525-1537 (2014).
  19. Guzzo, R. M., Scanlon, V., Sanjay, A., Xu, R. H., Drissi, H. Establishment of human cell type-specific iPS cells with enhanced chondrogenic potential. Stem Cell Rev. 10 (6), 820-829 (2014).
  20. Goepfert, C., Slobodianski, A., Schilling, A. F., Adamietz, P., Portner, R. Cartilage engineering from mesenchymal stem cells. Adv Biochem Eng Biotechnol. 123, 163-200 (2010).
  21. Ingber, D. E., et al. Tissue engineering and developmental biology: going biomimetic. Tissue Eng. 12 (12), 3265-3283 (2006).
  22. Yoshida, Y., Yamanaka, S. Recent stem cell advances: induced pluripotent stem cells for disease modeling and stem cell-based regeneration. Circulation. 122 (1), 80-87 (2010).

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Citar este artículo
Li, Y., Hai, Y., Chen, J., Liu, T. Differentiating Chondrocytes from Peripheral Blood-derived Human Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (125), e55722, doi:10.3791/55722 (2017).

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