Summary

Efficiënte Differentiatie van pluripotente stamcellen tot NKX6-1<sup> +</sup> Pancreatic Progenitors

Published: March 07, 2017
doi:

Summary

Hier beschrijven we een 4-traps protocol om menselijke embryonale stamcellen te differentiëren naar NKX6-1 + alvleesklier voorlopercellen in vitro. Dit protocol kan worden toegepast op een verscheidenheid van humane pluripotente stamcellijnen.

Abstract

Pluripotente stamcellen hebben het vermogen om zichzelf te vernieuwen en te differentiëren naar meerdere lijnen, waardoor ze een aantrekkelijk bron voor het genereren van pancreatische voorlopercellen die kunnen worden gebruikt voor de studie en de verwachte behandeling van diabetes. Dit artikel schetst een viertraps differentiatie protocol ontwikkeld om pancreas stamcellen uit menselijke embryonale stamcellen (hESC 's) te genereren. Dit protocol kan worden toegepast op verschillende humane pluripotente stamcellen (HPSC) lijnen. De aanpak van de pancreas voorlopercellen te genereren is om hESCs om nauwkeurig te modelleren belangrijke stadia van ontwikkeling van de alvleesklier te onderscheiden. Dit begint met de inductie van de definitieve endoderm, hetgeen wordt bereikt door de cellen te kweken in aanwezigheid van activine A, basische fibroblastgroeifactor (bFGF) en CHIR990210. Verdere differentiatie en patroonvorming met fibroblast groeifactor 10 (FGF10) en Dorsomorphin genereert cellen die lijkt op de achterste voordarm. De toevoeging van Retinzuur, NOGGIN, SANT-1 en FGF10 onderscheidt achterste voordarm cellen in cellen kenmerk van de alvleesklier endoderm. Tenslotte is de combinatie van epidermale groeifactor (EGF), nicotinamide en NOGGIN leidt tot efficiënte productie van Pdx1 + / + cellen NKX6-1. Flowcytometrie wordt uitgevoerd om de expressie van specifieke markers te bevestigen op cruciale fasen van ontwikkeling van de alvleesklier. De Pdx1 + / + NKX6-1 pancreatische voorlopercellen aan het einde van trap 4 kunnen genereren rijpe β cellen na transplantatie in immunodeficiënte muizen en kunnen verder worden gedifferentieerd tot insuline producerende cellen in vitro te genereren. Zo is de efficiënte productie van Pdx1 + / + NKX6-1 pancreatische voorlopercellen, zoals aangetoond in dit protocol, is van groot belang omdat het een platform voor humane pancreatische ontwikkeling worden bestudeerd in vitro en een bron van cellen met de potentie om te differentiëren β cellen die kunnen eventually worden gebruikt voor de behandeling van diabetes.

Introduction

De prevalentie van diabetes neemt toe en volgens de Canadese Diabetes Association, wordt geschat dat meer dan 11 miljoen mensen in Canada zijn diabetes of prediabetes, met 5-10% van deze individuen met type 1 diabetes (type 1 diabetes) 1. T1D een auto-immuunziekte die wordt veroorzaakt door de vernietiging van de insulineproducerende β cellen die zich binnen de eilandjes van Langerhans. Op dit moment, mensen die leven met T1D vereisen exogene bronnen van insuline 2. Ondanks de vooruitgang in insulinetherapie, T1D patiënten nog steeds een moeilijke tijd reguleren van hun bloedsuikerspiegel en blijven zowel hypo- en hyperglycemie lijden. Een veelbelovende vorm van behandeling te herstellen normoglycemia in T1D is het gebruik van menselijke embryonale stamcellen (hESCs), die kan worden gebruikt voor een onbeperkte hoeveelheid insulineproducerende β-cellen zowel in vivo als in vitro genereren 3, <sup class = "xref"> 4, 5, 6, 7. Differentiatie hESCs aan P-achtige cellen kan het mogelijk maken om diabetes te bestuderen in vitro, waardoor de identificatie van nieuwe therapeutische doelen voor type 2 diabetes en zorgen cellen voor transplantatie in patiënten T1D.

De meest succesvolle poging tot het genereren insulineproducerende cellen van hESCs in vitro is de embryonale events tijdens ontwikkeling van de alvleesklier 4, 5 recapituleren. Dit omvat de manipulatie van verschillende signaalwegen nauwkeurig modelleren belangrijke fasen van de ontwikkeling van de alvleesklier. Pancreatische ontwikkeling begint bij de inductie van de definitieve endoderm, die wordt gekenmerkt door de expressie van CXCR4 en CD117 (c-KIT) 8, 9. Nauwkeurige regeling van Definitive endoderm organisatie is nodig voor de vorming van de darm buis, die vervolgens ondergaat anterior naar posterior en ventrale patroonvorming dorsale. De dorsale en ventrale alvleesklier knoppen komen uit het gebied van de achterste voordarm dat de pancreas en duodenale homeobox gen (Pdx1), die noodzakelijk zijn voor ontwikkeling van de alvleesklier 10 is uitdrukt. De dorsale en ventrale knoppen zekering aan de alvleesklier, die vervolgens ondergaat uitgebreide epitheliale verbouwing en uitbreiding 11 te vormen. Betrokkenheid bij de endocriene en exocriene lineage vergezeld door het genereren van multipotente progenitorcellen (MPL) dat expressie onder meer de transcriptiefactoren Pdx1, Nkx6.1 es Ptf1a 12, 13. Mediterrane partnerlanden die endocriene en ductale cellen zullen worden blijven Nkx6-1 te drukken terwijl het verminderen van Ptf1a expressie. In tegenstelling tot deze, zal exocriene lineage cellen verliezen expression van Nkx6-1 es Ptf1a expressie 12 te handhaven.

De transcriptiefactor Nkx6-1 een sleutelrol in pancreatische ontwikkeling, met name tijdens de differentiatie van endocriene voorlopercellen cellen P. Zoals eerder beschreven, deletie van Nkx6-1 leidt tot verminderde vorming van β cellen gedurende ontwikkeling van de alvleesklier 14. Derhalve genereren insulineproducerende β-cellen zowel in vitro es in vivo is een efficiënte inductie van Nkx6-1.

We hebben onlangs een protocol om efficiënt te genereren Pdx1 + / NKX6-1 + alvleesklier voorlopercellen uit hPSCs ontwikkeld. Deze HPSC-afgeleide pancreas voorlopercellen te genereren rijpe β cellen na transplantatie in immunodeficiënte muizen 3. De differentiatie protocol kan worden verdeeld in 4 fasen karakteristiek: 1) definitieve endoderm inductie, 2) achterste voordarm patroonvorming 3) pancreas specificatie en 4) NKX6-1 inductie. Hier hebben wij een gedetailleerde beschrijving van elke stap van de gerichte differentiatie.

Protocol

1. Voorbereiding van de Solutions en Media OPMERKING: Bereid alle media voor celkweek in een steriele omgeving. Media worden gemaakt en direct gebruikt. Reagens details vindt u in de Materials tabel. differentiatie Media Bereid Day 0 Differentiatie Media: RPMI Medium met 1% glutamine, 2 uM CHIR 99.021, 100 ng / ml activine A, 10 4 M MTG. Bereid Dag 1-2 Differentiatie Media: RPMI medium met 1% glutamine, 100 ng / ml ac…

Representative Results

Efficiënte productie van pancreatische voorlopercellen berust op de juiste groei en behoud van gedifferentieerde cellen, gevolgd door de juiste toevoeging van bepaalde signaalmoleculen tijdens de differentiatie protocol, zoals in het schema in figuur 1A. Op dag 0, moet ongedifferentieerde cellen 80-95% confluent en kolonies moeten gedefinieerde randen (figuur 1A) hebben. Tijdens fase 1, zullen de media waarschijnlijk verschijnen bewolkt sinds celdood is…

Discussion

Met succes het genereren van NKX6-1 + alvleesklier voorlopers van hPSCs in vitro is gebaseerd op het gebruik van hoge kwaliteit culturen van hPSCs en regisseerde differentiatie met betrekking tot de nauwkeurige regeling van specifieke signaalwegen die sleutel ontwikkelingsstadia regeren tijdens de ontwikkeling van de alvleesklier. Hoewel dit protocol kan worden gebruikt om robuuste expressie van NKX6-1 induceren in een verscheidenheid van HPSC lijnen eerder aangetoond 3 voor e…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit manuscript werd ondersteund door financiering uit de Toronto General en West Foundation en de Banting en Best Diabetes Centre-University Health Network Graduate Award.

Materials

Media and cytokines
1-Thioglycerol (MTG) Sigma M6145
Activin A R&D 338-AC/CF 
Ascorbic Acid Sigma A4544
B-27 Supplement Life Technologies 12587-010 
BD Cytofix/Cytoperm Buffer BD Bioscience 554722
BD Perm/Wash buffer, 1x BD Bioscience 554723
bFGF R&D 233-FB
CHIR990210 Tocris 4423a
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Life Technologies 11995
DNase I VWR 80510-412 
Dorsomorphin Sigma P5499
EGF R&D 236-EG
Fetal Bovine Serum (FBS) Wisent 88150
FGF10 R&D 345-FG
Gelatin from porcine skin Sigma G1890
Glutamine Life Technologies 25030
Nicotinamide Sigma NO636
NOGGIN R&D 3344-NG
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15070-063
Retinoic acid Sigma R2625
RPMI Medium 1640 Life Technologies 11875
SANT-1 Tocris 1974
TrypLE Express Enzyme (1x), phenol red Life Technologies 12605-010
Name Company Catalogue Number Comments
Antibodies for flow cytometry (working dilutions)
CD117 PE (1:100) Life Technologies CD11705
CXCR4 APC (1:50) BD  Bioscience 551966
Donkey Anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 647 conjugate (1:400) Life Technologies A-31571
Donkey Anti-Goat IgG (H+L), Alexa Fluor 488 (1:400)  Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc. 705-546-147
Isotype Control Mouse IgG  Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc.  015-000-003
Isotype Control Goat IgG R&D   AB-108-C
NKX6-1 (1:2000) DSHB F55A10
PDX1 (1:100) R&D AF2419

Referencias

  1. Cogger, K., Nostro, M. C. Recent advances in cell replacement therapies for the treatment of type 1 diabetes. Endocrinology. 156 (1), 8-15 (2015).
  2. Nostro, M. C., et al. Efficient generation of NKX6-1+ pancreatic progenitors from multiple human pluripotent stem cell lines. Stem Cell Reports. 4 (4), 591-604 (2015).
  3. Pagliuca, F. W., et al. Generation of Functional Human Pancreatic beta Cells In Vitro. Cell. 159 (2), 428-439 (2014).
  4. Rezania, A., et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nat Biotechnol. , (2014).
  5. Kroon, E., et al. Pancreatic endoderm derived from human embryonic stem cells generates glucose-responsive insulin-secreting cells in vivo. Nat Biotechnol. 26 (4), 443-452 (2008).
  6. Rezania, A., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors into functional islets capable of treating pre-existing diabetes in mice. Diabetes. 61 (8), 2016-2029 (2012).
  7. D’Amour, K. A., et al. Efficient differentiation of human embryonic stem cells to definitive endoderm. Nat Biotechnol. 23 (12), 1534-1541 (2005).
  8. Gouon-Evans, V., et al. BMP-4 is required for hepatic specification of mouse embryonic stem cell-derived definitive endoderm. Nat Biotechnol. 24 (11), 1402-1411 (2006).
  9. Jonsson, J., Carlsson, L., Edlund, T., Edlund, H. Insulin-promoter-factor 1 is required for pancreas development in mice. Nature. 371 (6498), 606-609 (1994).
  10. Pan, F. C., Wright, C. Pancreas organogenesis: from bud to plexus to gland. Dev Dyn. 240 (3), 530-565 (2011).
  11. Schaffer, A. E., Freude, K. K., Nelson, S. B., Sander, M. Nkx6 transcription factors and Ptf1a function as antagonistic lineage determinants in multipotent pancreatic progenitors. Dev Cell. 18 (6), 1022-1029 (2010).
  12. Zhou, Q., et al. A multipotent progenitor domain guides pancreatic organogenesis. Dev Cell. 13 (1), 103-114 (2007).
  13. Sander, M., et al. Homeobox gene Nkx6.1 lies downstream of Nkx2.2 in the major pathway of beta-cell formation in the pancreas. Development. 127 (24), 5533-5540 (2000).
  14. Sharow, K. A., Temkin, B., Asson-Batres, M. A. Retinoic acid stability in stem cell cultures. Int J Dev Biol. 56 (4), 273-278 (2012).
  15. Korytnikov, R., Nostro, M. C. Generation of polyhormonal and multipotent pancreatic progenitor lineages from human pluripotent stem cells. Methods. , 56-64 (2016).
  16. Baumgarth, N., Roederer, M. A practical approach to multicolor flow cytometry for immunophenotyping. J Immunol Methods. 243 (1-2), 77-97 (2000).
  17. Nostro, M. C., et al. Stage-specific signaling through TGFbeta family members and WNT regulates patterning and pancreatic specification of human pluripotent stem cells. Development. 138 (5), 861-871 (2011).
  18. Schulz, T. C., et al. A scalable system for production of functional pancreatic progenitors from human embryonic stem cells. PLoS One. 7 (5), e37004 (2012).

Play Video

Citar este artículo
McGaugh, E. C., Nostro, M. C. Efficient Differentiation of Pluripotent Stem Cells to NKX6-1+ Pancreatic Progenitors. J. Vis. Exp. (121), e55265, doi:10.3791/55265 (2017).

View Video