Protein-protein interactions can occur in both the nucleus and the cytoplasm of a cell. To investigate these interactions, traditional co-immunoprecipitation and modern proximity ligation assay are applied. In this study, we compare these two methods to visualize the distribution of NF90-RBM3 interactions in the nucleus and the cytoplasm.
Protein-protein interactions are involved in thousands of cellular processes and occur in distinct spatial context. Traditionally, co-immunoprecipitation is a popular technique to detect protein-protein interactions. Subsequent Western blot analysis is the most common method to visualize co-immunoprecipitated proteins. Recently, the proximity ligation assay has become a powerful tool to visualize protein-protein interactions in situ and provides the possibility to quantify protein-protein interactions by this method. Similar to conventional immunocytochemistry, the proximity ligation assay technique is also based on the accessibility of primary antibodies to the antigens, but in contrast, proximity ligation assay detects protein-protein interactions with a unique technique involving rolling-circle PCR, while conventional immunocytochemistry only shows co-localization of proteins.
Nuclear factor 90 (NF90) and RNA-binding motif protein 3 (RBM3) have been previously demonstrated as interacting partners. They are predominantly localized in the nucleus, but also migrate into the cytoplasm and regulate signaling pathways in the cytoplasmic compartment. Here, we compared NF90-RBM3 interaction in both the nucleus and the cytoplasm by co-immunoprecipitation and proximity ligation assay. In addition, we discussed the advantages and limitations of these two techniques in visualizing protein-protein interactions in respect to spatial distribution and the properties of protein-protein interactions.
Ядерный фактор 90 (NF90) является мульти-изоформы белка с многочисленными функциями , включая ответ на вирусную инфекцию, регуляции интерлейкина-2 после транскрипции и регуляции миРНК биогенеза 1-3. RBM3 представляет собой РНК-связывающий белок, участвует в переводе и микроРНК биогенеза и могут быть вызваны различными стрессорами включая гипотермию и гипоксией 4-6. В последнее время мы нашли NF90 и RBM3 в белковом комплексе 7. Взаимодействие NF90 и RBM3 имеет важное значение для модуляции РНК-как эндоплазматический ретикулум киназы (PERK) активность протеинкиназы в развернутом ответе белка 7. Оба NF90 и RBM3 расположены преимущественно в ядре , но небольшая часть NF90 и челнока RBM3 в цитоплазму и связываются там друг с другом для определенных функций, например , для регулирования Перк активности. Поэтому, важно, чтобы визуализировать распределение NF90-RBM3 взаимодействий в субклеточном отсеке, что может указывать наих различные роли в соответствующем отсеке.
Несколько десятилетий назад, был разработан дрожжи двух гибридных (Y2H) для определения взаимодействия между двумя белками 8. Тем не менее, из-за искусственной конструкции слитых белков, ложноположительных результатов ограничили применение этого метода. В течение долгого времени, со-иммунопреципитации была основным методом для анализа белок-белковых взаимодействий, особенно в условиях эндогенными 9. Для анализа со-иммунопреципитации белкового комплекса, Вестерн-блот является наиболее удобным способом, в то время как масс-спектрометрия используется, когда супер чувствительность и точность желательны. В последние годы, близость Лигирование анализ был разработан в качестве нового способа выявления белок-белковых взаимодействий в обеих клетках и тканях на месте 10,11.
Здесь мы сравнили самый популярный метод совместного иммунопреципитации и относительно новое соседство перевязки метод анализа в захвате NF90-RBM3 взаимодействие в субклеточных фракциях. Мы также обсудили преимущества и недостатки обоих методов.
Есть несколько преимуществ, а также недостатки обоих методов. Будучи относительно новой технологии, очевидное преимущество близости лигирования анализа является возможность выяснить белок-белковых взаимодействий на уровне одной клетки, а не партии разнородных клеток. Изображения с …
The authors have nothing to disclose.
This study was supported by the Swiss National Science Foundation (SNSF, 31003A_163305).
Dulbecco's Modified Eagle’s Medium (DMEM) | Sigma | D6429 | High glucose 4500 mg/L |
Fetal bovine serum (FBS) | Gibco, Thermo Fisher Scientific | 10270106 | |
Penicillin-Streptomycin (PenStrep) | BioConcept | 4-01F00-H | |
NE-PER Nuclear and Cytoplasmic Extraction Reagents | Thermo Fisher Scientific | 78833 | |
1,4-Dithiothreitol (DTT) | Carl Roth | 6908.3 | |
Dynabeads Protein G | Novex, Thermo Fisher Scientific | 10003D | |
DRBP76 (NF90/NF110) antibody | BD Transduction Laboratories | 612154 | use 1:1000 for WB and 1:100 for ICC/PLA |
RBM3 antibody | ProteinTech | 14363-1-AP | use 1:1000 for WB and 1:100 for ICC/PLA |
Lamin A/C antibody | Cell Signaling Technology | #2032 | use 1:1000 for WB |
anti-GAPDH antibody | Abcam | ab8245 | use 1:1000 for WB |
normal rabbit IgG | Santa Cruz | sc-2027 | |
anti-rabbit IgG, HRP-lined secodary antiboy | Cell Signaling Technology | #7074 | use 1:5000 for WB |
anti-mouse HRP secondary antibody | Carl Roth | 4759.1 | use 1:5000 for WB |
Clarity Western ECL Blotting Substrate | Bio-Rad | #1705060 | |
NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris Gel | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP0321BOX | |
NuPAGE LDS Sample Buffer (4x) | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP0007 | |
1,4-Dithiothreitol (DTT) | CarlRoth | 6908.1 | |
NuPAGE MES SDS Running Buffer (20x) | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP0002 | |
NuPAGE Transfer Buffer (20x) | Novex, Thermo Fisher Scientific | NP00061 | |
Amersham Hypond P 0.2 PVDF membrane | GE Healthcare Life Sciences | 10600021 | |
Super RX X-ray film | Fujifilm | 4741029230 | |
Poly-D-Lysine 8 Well Culture Slide | Corning BioCoat | 354632 | |
Paraformaldehyde (PFA) | Sigma | P6148 | |
Normal goat serum (NGS) | Gibco, Thermo Fisher Scientific | PCN5000 | |
Goat anti-mouse IgG (H+L Antibody), Alexa Fluor 488 conjugate | Thermo Fisher Scientific | A-11001 | |
Goat anti-rabbit IgG (H+L Antibody), Alexa Fluor 568 conjugate | Thermo Fisher Scientific | A-11011 | |
4′, 6-Diamidin-2-phenylindol (DAPI) | Sigma | D9542 | |
Duolink PLA probe Anti-mouse PLUS | Sigma | DUO92001 | |
Duolink PLA probe Anti-rabbit MINUS | Sigma | DUO92005 | |
Duolink Detection Reagents Red | Sigma | DUO92008 | |
Duolink Wash Buffers Fluorescence | Sigma | DUO82049 | |
Duolink Mounting Medium with DAPI | Sigma | DUO82040 | |
Mowiol 4-88 | Sigma | 81381 | |
Microscope | Olympus | AX-70 | |
CCD camera | SPOT | Insight 2MP Firewire | |
X-ray film | Fujifilm | Super RX | |
Film processing machine | Fujifilm | FPM-100A |