Aquí, presentamos pluripotentes humanas protocolos de cultura de la célula de vástago (hPSC), solía diferenciarse hPSCs a CD34+ de progenitores hematopoyéticos. Este método utiliza la manipulación de la fase específica de canónica WNT de señalización especificar las células exclusivamente ya sea definitivo o primitiva hematopoyética programa.
Uno de los objetivos principales para la medicina regenerativa es la generación y mantenimiento de las células madre hematopoyéticas (HSCs) derivado de las células de vástago pluripotent humanas (hPSCs). Hasta hace poco, tratando de distinguir hPSCs en HSCs ha generado predominante progenitores hematopoyéticos que carecen de potencial HSC y en cambio, se asemejan a saco vitelino hematopoyesis. Estos progenitores hematopoyéticos resultantes pueden haber limitado utilidad en vitro modelado enfermedad de varios desordenes hematopoyéticos adultos, particularmente los de los linajes linfoides. Sin embargo, recientemente hemos descrito los métodos para generar progenitores hematopoyéticos definitivos del multilineage Eritro-mielo-linfoide de hPSCs utilizando un protocolo específico de etapa diferenciación dirigida, que esbozamos aquí. A través de la disociación enzimática de hPSCs en recipientes de plástico recubierto por la matriz de membrana basal, se forman cuerpos embryoid (EBs). EBs se distinguen al mesodermo por BMP4 recombinante, que posteriormente se especifica que el programa hematopoyético definitivo por el inhibidor de la GSK3β, CHIR99021. Alternativamente, la hematopoyesis primitiva se especifica por el inhibidor de PORCN, IWP2. La hematopoyesis más es conducida a través de la adición de recombinante VEGF y apoyo citoquinas hematopoyéticas. Los progenitores hematopoyéticos resultantes generados mediante este método tienen el potencial para ser utilizado para la enfermedad y desarrollo modelado, in vitro.
Las células de vástago pluripotent humanas (hPSCs) se definen como englobando células de vástago embrionarias humanas (hESCs) y las células madre humanas pluripotentes inducidas (hiPSCs) y tiene la capacidad única no sólo en auto renovación bajo condiciones de crecimiento apropiado, pero también, la capacidad de diferenciarse en todos los tipos celulares derivados de las tres capas germinales: ectodermo, endodermo y mesodermo1. Debido a estas habilidades, hPSCs sostener la gran promesa para la medicina regenerativa, modelado de enfermedades y terapias basadas en células2. Mientras que varios tipos de células se han diferenciado con éxito de hPSCs, un desafío importante es la especificación en vitro de adulto hPSC-derivó las células madre hematopoyéticas (HSCs) y progenitores hematopoyéticos definitivos.
Una probable barrera para el desarrollo de HSCs humanas de hPSCs es la presencia de múltiples programas hematopoyéticas en el embrión humano3. El primer programa que emerge, denomina “hematopoyesis primitiva”, se origina dentro del tejido del saco vitelino extraembrionarias y mejor se caracteriza por su producción transitoria de progenitores erythroblast (EryP-CFC), macrófagos y megacariocitos. En particular, este programa no da lugar a las HSCs, ni da lugar a progenitores linfoides T y B. Sin embargo, el saco vitelino transitorio dan lugar a progenitores hematopoyéticos definitivas restringidos, como el progenitor mieloide Eritro (EMP4,5,6,7,8) y la eritroide deficiente linfoide cebada multipotent progenitora (LMPP9). Sin embargo, EMPs ni LMPPs son completamente multipotentes, o capaz de engraftment HSC-como en recipientes adultos. En cambio, más adelante en el desarrollo, el programa hematopoyético “definitivo” clásicamente definido se especifica en la región aorta-gónada-mesonefros del embrión adecuado, dando lugar a todos los linajes hematopoyéticos adultos, incluyendo el HSC. La especificación de estas células hematopoyéticas definitivas intra embrionarias ocurre de manera dependiente de la muesca, a través de una transición endotelial hematopoyético de hemogenic endotelio (él)3,10,11 ,12,13,14. Además de capacidad de reconstitución, el potencial del multilineage y muesca-dependencia de estas células pueden utilizarse para distinguir estos progenitores hematopoyéticos definitivos de la EMP y LMPP (revisado en las referencias3,13 ).
Comprender los mecanismos de especificación hematopoyética primitiva y definitiva de hPSCs es probablemente esencial para la producción reproducible de progenitores hematopoyéticos definitivos a través de una variedad de líneas hPSC. Hasta hace poco, hPSC protocolos de diferenciación que podrían separar multipotentes definitivos y primitivos progenitores hematopoyéticos no existían15,16,17,18, 19,20,21,22,23,24,25. Muchos enfoques con suero bovino fetal (FBS) y/o co-cultivo stromal en primer lugar describe el potencial hematopoyético de hPSC diferenciación, con mezclas de primitivo y definitiva hematopoyética potencial15,16, 17,19,22,23,25. Además, muchos protocolos sin suero hematopoyéticos han descrito los requisitos de señal para la especificación del mesodermo del hPSCs que alberga hematopoyética potencial18,20,21, 24. sin embargo, como estos métodos todavía dieron lugar a mezclas heterogéneas de ambos programas, su uso en aplicaciones clínicas y mecanismos del desarrollo de la comprensión puede ser limitada.
Recientemente hemos construido en estos estudios, después de haber descrito los requisitos de señal de la fase específica de ACTIVIN NODAL y WNT de señalización en la especificación hematopoyética primitiva y definitiva del mesodermo derivado hPSC18,26 . El último era particularmente único, como el uso de la manipulación de señales WNT fase específica permite la especificación de exclusivamente primitivo o exclusivamente de progenitores hematopoyéticos definitiva26. Durante la especificación del mesodermo, la inhibición de la señalización de WNT canónico con el inhibidor PORCN IWP2 resultados en la especificación de CD43+ EryP-CFC y progenitores mieloides, con ningún potencial linfoide detectable. En contraste, estimulación de canónica WNT de señalización con el inhibidor de la GSK3β, CHIR99021, durante la misma etapa de diferenciación dio lugar a la ausencia completa de CD43 detectable+ EryP-CFC, mientras que al mismo tiempo conduce a la Especificación de CD34+CD43− . Esta población poseía mieloide, HBG-expresando eritroides y linfoides T potencial. Posteriores análisis identificaron esto como falta de la expresión de su potencial hematopoyético, CD7327,28 y CD18428fue dependiente de la muesca28. Además, sola célula clonales análisis demostraron que estos linajes hematopoyéticos definitivos se pudieran derivar de las células multipotentes28. Tomados juntos, estos estudios indican que etapa específica WNT signaling manipulación puede especificar puros primitivos progenitores hematopoyéticos o multipotentes dependiente de la muesca definitiva de progenitores hematopoyéticos.
Aquí describiremos nuestra estrategia de diferenciación que los rendimientos de progenitores hematopoyéticos exclusivamente primitivo o definitivos, través de la manipulación de la canónica WNT de señalización durante mesodérmico modelando y su linaje hematopoyético posterior ensayos. Este protocolo es de gran valor para los investigadores que están interesados en la producción de progenitores hematopoyéticos ya sea primitivo o definitivas de hPSCs para aplicaciones de la medicina regenerativa.
Este protocolo describe un método rápido, libre de suero, tejido conectador-libre para la diferenciación de progenitores hematopoyéticos ya sea primitivo o definitivos. Mesodérmico especificación de progenitores hematopoyéticos ya sea primitivo o definitivas puede lograrse confiablemente usando nuestro protocolo, que únicamente inhibidores de molécula pequeña de la señalización de WNT canónico. Activación de WNT etapa específica por el inhibidor de GSK3β CHIR9902133 da lugar a meso…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo ha sido apoyado por el Departamento de medicina interna, División de Hematología, Washington University School of Medicine. CD fue apoyado por T32HL007088 de la National Heart, Lung and Blood Institute. CMS fue apoyado por una sociedad americana de Hematología Scholar Award.
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMD) | Corning | 10-016 | |
Fetal Bovine Serum (FBS), ES cell rated | Gemini Bioproducts | 100-500 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Hyclone | SH30396.03 | |
L-glutamine, 200 mM solution | Life Technologies | 25030-081 | |
Penicillin-streptomycin | Life Technologies | 15070-063 | |
0.25% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200056 | |
0.05% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25300054 | |
Gelatin, porcine skin, Type A | Sigma-Aldrich | G1890 | |
Alpha-MEM | Life Technologies | 12000-022 | |
DMEM-F12 | Corning | 10-092-CV | |
Knock-out serum replacement | Life Technologies | 10828028 | "KOSR" |
Non-essential amino acids (NEAA) | Life Technologies | 11140050 | |
b-mercaptoethanol, 55 mM solution | Life Technologies | 21985023 | |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | H1758 | |
Fraction V, Bovine Serum Albumin | Fisher Scientific | BP1605 | |
Ham's F12 | Corning | 10-080 | |
N2 supplement | Life Technologies | 17502048 | |
B27 supplement, no vitamin A | Life Technologies | 12587010 | |
Stempro-34 (SP34) | Life Technologies | 10639011 | "SP34" |
Growth factor reduced Matrigel | Corning | 354230 | "MAT" |
L-absorbic acid | Sigma-Aldrich | A4403 | |
Human serum transferrin | Sigma-Aldrich | 10652202001 | |
Monothioglycerol (MTG) | Sigma-Aldrich | M6145 | |
Collagenase B | Roche | 11088831001 | |
Collagenase II | Life Technologies | 17101015 | |
DNaseI | Calbiochem | 260913 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Life Technologies | 14190144 | |
bFGF | R&D Systems | 233-FB | |
BMP4 | R&D Systems | 314-BP | |
Activin A | R&D Systems | 338-AC | |
VEGF | R&D Systems | 293-VE | |
SCF | R&D Systems | 255-SC | |
IGF-1 | R&D Systems | 291-G1 | |
IL-3 | R&D Systems | 203-IL | |
IL-6 | R&D Systems | 206-IL | |
IL-7 | R&D Systems | 207-IL | |
IL-11 | R&D Systems | 218-1L | |
TPO | R&D Systems | 288-TP | |
EPO | Peprotech | 100-64 | |
Flt-3 ligand (FLT3-L) | R&D Systems | 308-FK | |
CHIR99021 | Tocris | 4423 | |
IWP2 | Tocris | 3533 | |
Angiotensin II | Sigma-Aldrich | A9525 | |
Losartan Potassium | Tocris | 3798 | |
CD4 PerCP Cy5.5 Clone RPA-T4 | BD Biosciences | 560650 | Dilution 1:100; T cell assay |
CD8 PE Clone RPA-T8 | BD Biosciences | 561950 | Dilution 1:10; T cell assay |
CD34 APC Clone 8G12 | BD Biosciences | 340441 | Dilution 1:100; EHT assay |
CD34 PE-Cy7 Clone 8G12 | BD Biosciences | 348801 | Dilution 1:100; Hemogenic endothelium |
CD43 FITC Clone 1G10 | BD Biosciences | 555475 | Dilution 1:10; Hemogenic endothelium |
CD45 APC-Cy7 Clone 2D1 | BD Biosciences | 557833 | Dilution 1:50; T cell assay |
CD45 eFluor450 Clone 2D1 | BD Biosciences | 642284 | Dilution 1:50; EHT assay |
CD56 APC Clone B159 | BD Biosciences | 555518 | Dilution 1:20; T cell assay |
CD73 PE Clone AD2 | BD Biosciences | 550257 | Dilution 1:50; Hemogenic endothelium |
CD184 APC Clone 12G5 | BD Biosciences | 555976 | Dilution 1:50; Hemogenic endothelium |
4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | BD Biosciences | 564907 | Dilution 1:10,000; T cell assay |
OP9 DL4 cells | Holmes, R. and J.C. Zuniga-Pflucker. Cold Spring Harb Protoc, 2009. 2009(2): p. pdb prot5156 | ||
MethoCult H4034 | Stemcell Technologies | 4034 | "MeC" |
Milli-Q water purification system | EMD Millipore | ||
5% CO2 incubator | Set at 37 C | ||
Multigas incubator | Set at 37 C, 5% CO2, 5% O2 | ||
6 well tissue culture plate | Corning | 353046 | |
24 well tissue culture plate | Corning | 353226 | |
6 well low-adherence tissue culture plate | Corning | 3471 | |
24 well low-adherence tissue culture plate | Corning | 3473 | |
35 mm tissue culture dishes | Corning | 353001 | |
Blunt-end needle, 16 gauge | Corning | 305198 | |
3 cc syringes | Corning | 309657 | |
5 mL polypropylene test tube | Corning | 352063 | |
5 mL polystyrene test tube | Corning | 352058 | |
15 mL polypropylene conical | Corning | 430791 | |
50 mL polypropylene conical | Corning | 430921 | |
2 mL serological pipette | Corning | 357507 | |
5 mL serological pipette | Corning | 4487 | |
10 mL serological pipette | Corning | 4488 | |
25 mL serological pipette | Corning | 4489 | |
Cell scrapers | Corning | 353085 | |
2.0 mL cryovials | Corning | 430488 | |
5 mL test tube with 40 µM cell strainer | Corning | 352235 | |
40 µM cell strainer | Corning | 352340 | |
Cell culture centrifuge | |||
Biosafety hood | |||
FACS AriaII or equivalent | |||
LSRii or equivalent | |||
FlowJo software | TreeStar | ||
Water bath | Set at 37 C | ||
0.22 µM filtration system | Corning | ||
Autoclave | |||
4 C refrigerator | |||
-20 C Freezer | |||
-80 C Freezer |