Summary

Produktion og administration af terapeutiske mesenchymstamceller / Stromal Cell (MSC) Spheroids Primed i 3-D kulturer Under Xeno-frie betingelser

Published: March 18, 2017
doi:

Summary

The therapeutic potential of mesenchymal stem/stromal cells (MSCs) is well-documented, however the best method of preparing the cells for patients remains controversial. Herein, we communicate protocols to efficiently generate and administer therapeutic spherical aggregates or ‘spheroids’ of MSCs primed under xeno-free conditions for experimental and clinical applications.

Abstract

Mesenkymale stamceller / stromale celler (MSC) lover godt i bioteknologi og regenerativ medicin. MSC'er kan isoleres fra flere voksne væv via deres stærke tilslutning til vævsdyrkningsplastic og derefter yderligere ekspanderes in vitro, mest almindeligt ved hjælp af føtalt bovint serum (FBS). Da FBS kan forårsage MSC'er bliver immunogene, dets tilstedeværelse i MSC-kulturer begrænser både kliniske og eksperimentelle anvendelser af cellerne. Derfor beskæftiger undersøgelser kemisk definerede xeno-fri (XF) medier for MSC kulturer er yderst værdifuld. Mange gavnlige virkninger af MSC'er er blevet tilskrevet deres evne til at regulere inflammation og immunitet, hovedsagelig gennem sekretion af immunmodulerende faktorer såsom tumornekrosefaktor-stimuleret gen 6 (TSG6) og prostaglandin E2 (PGE2). Men MSC kræver aktivering for at producere disse faktorer og da effekten af ​​MSC er ofte forbigående, har stor interesse opstået for at finde måder af præ-aktivering cellerne prior deres anvendelse, og dermed fjerne latenstiden for aktivering in vivo. Her præsenterer vi protokoller til effektivt aktivere eller prime MSC i tre-dimensionelle (3D) kulturer under kemisk definerede XF forhold og til at administrere disse præ-aktiverede MSC'er in vivo. Konkret har vi først beskrive metoder til at generere sfæriske MSC mikro-væv eller "sphæroider« i hængende dråber bruger XF mellemstore og vise, hvordan de kugler og konditioneret medium (CM) kan høstes til forskellige applikationer. For det andet beskriver vi genekspression skærme og in vitro funktionelle assays til hurtigt at vurdere niveauet af MSC aktivering i sfæroider, understreger den antiinflammatoriske og anti-cancer potentiale af cellerne. Tredje beskriver vi en hidtil ukendt fremgangsmåde til at injicere intakte MSC sfæroider i musen peritoneale hulrum til in vivo-effektivitet test. Samlet set protokollerne heri overvinde store udfordringer for at opnå præ-aktiverede MSC'er under kemisk defineret XF conbetingelser og giver et fleksibelt system til at administrere MSC sfæroider for behandlinger.

Introduction

Mesenkymale stamceller / stromaceller (MSC'er) har vist stort potentiale for forskellige regenerativ medicin tilgange. MSC'er blev indledningsvis isoleret som et stromal bestanddel af knoglemarv, men er siden blevet opnået fra talrige andre voksne væv, herunder fedtvæv 1, 2, 3. Interessant, den vigtigste isoleringsmetode omfavner den bemærkelsesværdige egenskab af MSC'er til at klæbe fast på vævskulturplast i nærværelse af føtalt bovint serum (FBS). Mens dette traditionelle isolation teknik tillader nem og hurtig ekspansion af MSC'er i todimensionale (2D) kultur, er det også meget kunstige og ignorerer betydningen af det native tredimensionale (3D) miljø, der fører til potentielle tab af vigtige cellulære karakteristika 4, 5 6. Derfor studiet af MSC'er i 3D-kulturer, somer mere fysiologisk end traditionelle 2D kulturer, er opstået i søgning efter "tabte / formindsket" MSC egenskaber. Endvidere har stor interesse steget til identificere xeno-fri (XF) kemisk definerede betingelser for MSC kultur og aktivering, og således gøre cellerne mere medgørlige til kliniske anvendelser.

Mange undersøgelser er blevet offentliggjort viser 3D-kultur af MSC'er både biomaterialer og som sfæriske aggregater eller sphæroider. MSC'er i biomaterialer blev oprindeligt udviklet til væv tekniske tiltag til at erstatte beskadigede væv med celle-seedede stilladser, mens kugleformede kulturer af MSC'er ses som en måde at forstå MSC adfærd in vivo efter administration af cellerne for behandlinger i prækliniske eller kliniske forsøg 4, 5, 7. Interessant, MSC danner sfæroider spontant, når tilslutning til vævskultur plast er ikke tilladt8, 9, 10. Traditionelt blev celle aggregering lettes ved spinner kolbe metoder eller flydende overlay teknikker, metoder oprindeligt anvendt i cancer biologi i bestræbelserne på at forsøge at efterligne tumor mikromiljø. For nylig er yderligere fremgangsmåder dukket at demonstrere celleaggregering i dyrkningsskåle præ-overtrukket med specifikke kemikalier for at forhindre celle-til-plast vedhæftning 4, 5, 6. En af de enkleste og mest økonomiske metoder til at generere MSC sfæroider er at kulturen dem i hængende dråber, en teknik, der ofte blev anvendt til fremstilling embryoide legemer fra embryonale stamceller. Med hængende dråbe dyrkningsteknik, er cellevedhæftning til vævsdyrkningsplastic forhindres ved at suspendere cellerne i en dråbe medium på undersiden af ​​en vævskulturskål låg og tillader tyngdekraften til at lette celle AGGREGation i spidsen af ​​dråben. Sfæroiden størrelse kan let manipuleres ved at ændre cellekoncentration eller drop volumen, hvilket gør hængende dråbe kulturer særlig let at kontrollere.

Tidlige undersøgelser af 3D kultur af MSC'er demonstrerede radikale forskelle i karakteristika for cellerne i 3D sammenlignet med deres 2D modstykker 6, 8, 9. Samtidig, rapporter vist, at de gavnlige virkninger af MSC'er in vivo påberåbes deres evne til at blive aktiveret af mikro-miljømæssige påvirkninger, og som svar, til at producere anti-inflammatoriske og immunmodulerende faktorer 11. Interessant, mange af disse faktorer, såsom prostaglandin E2 (PGE2), tumornekrosefaktor-stimuleret gen 6 (TSG6), og hepatocytvækstfaktor (HGF) blev produceret i meget større mængder af MSC sfæroider end traditionelle 2D MSC'er baner vejen for den ide omved hjælp af 3D-kulturer for at aktivere cellerne 8, 12, 13. Desuden genaktivering i 3D-kulturer syntes at rekapitulere mekanismer, i det mindste delvist, af celleaktivering efter injektion i mus 12. Ved at aktivere MSC'er forud for deres anvendelse i eksperimenter, kan virkningerne af cellerne blive forlænget og mere fremtrædende som den traditionelle MSC effekt in vivo ofte er forsinket og forbigående, og kan beskrives som "hit og køre". I løbet af de sidste mange år har vigtige funktionelle undersøgelser under anvendelse af MSC sfæroider vist, at de kan undertrykke inflammatoriske responser og modulerer immunitet in vivo ved at påvirke effektorceller såsom makrofager, dendritiske celler, neutrofiler, og T-celler gør sfæroider en attraktiv form for primede MSC'er 2 3. Desuden produktion af anti-cancer molekyler, såsom interleukin-24 (IL-24) og tumornekrosefaktor-relateret apoptoseinducerende ligand (TRAIL), forhøjes i 3D kulturer af MSC'er i forhold til monolag MSC'er, et fænomen, der kan udnyttes til målrettede behandlinger mod kræft 8, 10, 14.

Som den traditionelle MSC kultur ikke blot krævede anvendelse af vævskultur plast, men også FBS, til en anden hurdle gøre MSC sfæroider mere medgørlige til klinisk anvendelse skulle overvindes. For at løse dette hurdle, vi for nylig viste dannelse af MSC spheroids under specifikke kemisk definerede XF forhold og konstateret, at de resulterende MSC sfæroiderne blev aktiveret til at producere de samme anti-inflammatoriske og anti-cancer molekyler som sfæroiderne genereret i forhold med FBS 14. Her er disse resultater præsenteres i flere detaljerede protokoller, der viser dannelsen af ​​præ-aktiverede MSC'er i 3D kulturer bruger XFmedier. Desuden er protokoller præsenteret som beskriver effektive måder til at vurdere aktivering niveauer af MSC'erne i forhold til deres anti-inflammatoriske, immunmodulerende og anti-cancer effekt, sammen med en praktisk metode til at levere de intakte sfæroider i mus.

Protocol

1. MSC Isolering og Udvidelse Opnå tidlige passage MSC fra center for udarbejdelse og distribution af voksne stamceller ( http://medicine.tamhsc.edu/irm/msc-distribution.html~~number=plural ) 15 som frosne hætteglas. Alternativt isolere MSC fra knoglemarvsaspirater efter en rutinemæssig protokol 14 og gemme så frosne hætteglas. Forbered komplet dyrkningsmedium (CCM)…

Representative Results

I den nuværende arbejde, blev hængende dråbe kulturer ansat til at generere kompakte sfæriske mikro-væv eller "sphæroider" af aktiverede MSC under XF betingelser. Det undersøgte køreplan i Figur 1 viser, at MSC opfordres til selv at samle ind sphæroider når suspenderet i hængende dråber i 72 timer, hvorefter sfæroiderne eller CM fyldt med kugle-afledte terapeutiske faktorer, kan opsamles og potentielt udnyttes i både forskning og kliniske anvendel…

Discussion

Den optimale MSC til brug i nogle forskning og kliniske anvendelser bør være meget aktiveres for at maksimere deres fordel, og fortrinsvis udarbejdet under kemisk definerede XF betingelser for at minimere levering af potentielle antigener fra xenogene mellemstore komponenter såsom FBS. I de protokoller, der er beskrevet her, har vi vist metoder til 1) aktivere MSC'er i 3D kultur ved dannelse af sfæroider, 2) opnå 3D-aktivering af MSC under XF betingelser, 3) vurdere aktivering niveauer af kugleformede MSC i for…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded in part by grant P40RR17447 from the National Institute of Health and award RP150637 from the Cancer Prevention and Research Institute of Texas. We would like to thank Dr. Darwin J. Prockop for his support on the project.

Materials

MEM-α (minimal essential medium alpha) ThermoFisher/Gibco 12561049; 12561056; 12561072 minimal essential medium for preparation of MSC growth medium (CCM)
FBS (fetal bovine serum), premium select Atlanta Biologicals S11595; S11510; S11550; S11595-24 component of complete culture media for all types of cells
L-glutamine ThermoFisher/Gibco 25030081; 25030149; 25030164 component of complete culture media for all types of cells
Penicillin/Streptomycin ThermoFisher/Gibco 15070063 component of complete culture media for all types of cells
Sterilization Filter Units, 0.22 µm PES membrane MilliporeSigma SCGPU01RE; SCGPU02RE; SCGPU05RE; SCGPU10RE; SCGPU11RE media sterilization
150 mm cell culture dish Nunc D8554 SIGMA cell culture
Thermo Forma water-jacketed CO2 humidified incubator Thermo Fisher Model 3110 incubation of cultured cells
Early passage MCSs Center for the preparation and Distribution of Adult Stem Cells at The Texas A&M Health Science Center College of Medicine Institute for Regenerative Medicine at Scott & White NA preparation of 2D and 3D cultures of MSCs
water bath VWR 89501-468 warming media to 37 °C
Pipettes Eppendorf 492000904 manual liquid handling
Pipete-Aid Drummond Scientific Company 4-000-300 handling sereological pipetes
Costar sterile serological pipet (5, 10, 25 and 50 ml) Corning 4487; 4101; 4251; 4490 liquid handling
PBS (phosphate buffered saline), pH 7.4 ThermoFisher/Gibco 10010023; 10010072; 10010031; 10010049 cell culture processing
0.25% trypsin/EDTA solution ThermoFisher/Gibco 25200056; 25200072; 25200114 lifting adherent cells and dispersing cell aggregates
15 ml conical tube Corning/BD Falcon 352097 cell centrifugation
50 ml conical tube Corning/BD Falcon 352098 cell centrifugation
Eppendor refrigerated centrifuge Eppendorf/Fisher Scientific Model 5810R cell centrifugation
hemocytometer Fisher Scientific 26716 cell counting
trypan blue Sigma-Aldrich T8154 SIGMA dead cell exclusion during cell counting in hemacytometer
Defined xenofree MSC medium-1 (XFM-1) ThermoFisher/Gibco A1067501 Xeno-free media specifically formulated for the growth and expansion of human mesenchymal stem cells
Defined xenofree MSC medium-2 (XFM-2) Stem Cell Technologies 5420 Defined, xeno-free medium for human mesenchymal stem cells
HSA (Human serum albumin) Gemini 800-120 Component of xeno-free MSC media
rHSA (recombinant Human serum albumin) Sigma-Aldrich A9731 SIGMA Component of xeno-free MSC media
8-channel pipette, 10 – 100 µL Eppendorf 022453904 preparation of hanging drops
Total RNA isolation Mini Kit Qiagen 74104 Total RNA extraction
Qiashredder Qiagen 79654 Sample homogenization prior to total RNA extraction
RNAse-free DNase Set  Qiagen 79254 On-column DNA elimination during total RNA extraction
β-mercaptoethanol  Sigma-Aldrich M6250 ALDRICH inhibition of RNAses in RLT buffer
Vortex VWR 97043-562 mixing sample
Spectrophotometer Biorad NA RNA concentration and quality
High capacity cDNA Reverse Transcription Kit ThermoFisher/Applied Biosystems 4368814 transcription of total RNA into cDNA
Gene Expression Assays ThermoFisher/Applied Biosystems varies primer/probe combination for real-time PCR
Fast Universal PCR Master Mix ThermoFisher/Applied Biosystems 4352042; 4364103; 4366073; 4367846 master mix for real-time PCR reaction
Real-time PCR system (ABI Prism 7900 HT Sequence Detection System) ABI Prizm NA real-time PCR
1.5 ml centrifuge tube Eppendorf 22364111 cell centrifugation, sample collection and storage
(-80°C) freezer Thermo Fisher Model Thermo Forma 8695 sample storage
PGE2 (Prostaglandin E2) ELISA Kit R&D Systems KGE004B estimation of cytokine concentration in the sample
DMEM (Dulbecco’s modified Eagle medium) ThermoFisher/Gibco 10566-016; 10566-024;10566-032 macrophage culture media
J774 mouse macrophages ATCC TIB-67 mouse macrophage cell line
12-well plate Corning 3513 in-vitro macrophage stimulation
LPS (lipopolysaccharide) Sigma-aldrich L4130 in vitro macrophage stimulation
Mouse TNF-a ELISA kit R&D Systems MTA00B estimation of cytokine concentration in the sample
Mouse IL-10 (interleukin 10) ELISA kit R&D Systems M1000B estimation of cytokine concentration in the sample
RPMI-1640 medium ThermoFisher/Gibco 11875-085 splenocyte culture media
BALB/c mice The Jackson Laboratory 651 in vivo spheroid delivery; splenocyte preparation
Anti-Mouse CD3e Functional Grade Purified eBioscience 145-2C11 In vitro splenocyte stimulation
70 μm strainer  Corning 352350 Splenocyte preparation
Red blood cell lysis solution (1x) Affymetrix eBioscience 00-4333 removal of red blood cells during splenocyte isolation
Mouse IFN-y (interferon gamma) ELISA kit R&D Systems MIF 00 estimation of cytokine concentration in the sample
LNCaP prostate cancer cells  ATCC CRL-1740 study the effect of 3D MSCs on cancer cell lines in vitro
DNA-based cell proliferation assay kit ThermoFisher C7026 cell number measurement based on DNA content
NaCl Sigma-Aldrich S5150 component of lysis reagent
EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) ThermoFisher FERR1021 calcium chelator, component of lysis reagent
Rnase A Qiagen 19101 RNA degradation for measurement of DNA
Filter-based multi-mode microplate reader BMG Technology NA Microplate assays (ELISA, cell quantification, e.t.c.)
HBSS (Hanks balanced salt solution), no calcium, no magnesium, no phenol red ThermoFisher/Gibco 14175079 resupsension of MSC spheroids prior to in vivo injections
Isoflurane MWI Vet Supply 502017 Anesthesia for in vivo injections
Oxygen, compressed gas Praxair NA For use with isoflurane
Thermo Forma BSL-2 cabinet Thermo Fisher Model 1385 Sterile cell culture
Safety I.V. catheter/needle stiletto, 20G, 1 inch Terumo SR*FNP2025 Delivery of shperoids into peritoneal cavity
Sterile micropipette tips Eppendorf varies liquid/cells handling

Referencias

  1. Keating, A. Mesenchymal stromal cells: New directions. Cell Stem Cell. 10 (6), 709-716 (2012).
  2. English, K., Wood, K. J. Mesenchymal stromal cells in transplantation rejection and tolerance. Cold Spring Harb Perspect.Med. 3 (5), a015560 (2013).
  3. Le Blanc, K., Mougiakakos, D. Multipotent mesenchymal stromal cells and the innate immune system. Nat.Rev.Immunol. 12 (5), 383-396 (2012).
  4. Follin, B., Juhl, M., Cohen, S., Perdersen, A. E., Kastrup, J., Ekblond, A. Increased Paracrine Immunomodulatory Potential of Mesenchymal Stromal Cells in Three-Dimensional Culture. Tissue Eng.Part B.Rev. , (2016).
  5. Cesarz, Z., Tamama, K. Spheroid Culture of Mesenchymal Stem Cells. Stem Cells Int. , 9176357 (2016).
  6. Achilli, T. M., Meyer, J., Morgan, J. R. Advances in the formation, use and understanding of multi-cellular spheroids. Expert Opin.Biol. Ther. 12 (10), 1347-1360 (2012).
  7. Sart, S., Tsai, A. C., Li, Y., Ma, T. Three-dimensional aggregates of mesenchymal stem cells: cellular mechanisms, biological properties, and applications. Tissue Eng.Part B.Rev. 20 (5), 365-380 (2014).
  8. Bartosh, T. J., et al. Aggregation of human mesenchymal stromal cells (MSCs) into 3D spheroids enhances their antiinflammatory properties. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 107 (31), 13724-13729 (2010).
  9. Potapova, I. A., et al. Mesenchymal stem cells support migration, extracellular matrix invasion, proliferation, and survival of endothelial cells in vitro. Stem Cells. 25 (7), 1761-1768 (2007).
  10. Frith, J. E., Thomson, B., Genever, P. G. Dynamic three-dimensional culture methods enhance mesenchymal stem cell properties and increase therapeutic potential. Tissue Eng.Part C.Methods. 16 (4), 735-749 (2010).
  11. Lee, R. H., et al. Intravenous hMSCs Improve Myocardial Infarction in Mice because Cells Embolized in Lung Are Activated to Secrete the Anti-inflammatory Protein TSG-6. Cell Stem Cell. 5 (1), 54-63 (2009).
  12. Bartosh, T. J., Ylostalo, J. H., Bazhanov, N., Kuhlman, J., Prockop, D. J. Dynamic compaction of human mesenchymal stem/precursor cells into spheres self-activates caspase-dependent il1 signaling to enhance secretion of modulators of inflammation and immunity (PGE2, TSG6, and STC1). Stem Cells. 31 (11), 2443-2456 (2013).
  13. Ylostalo, J. H., Bartosh, T. J., Coble, K., Prockop, D. J. Human mesenchymal stem/stromal cells cultured as spheroids are self-activated to produce prostaglandin E2 that directs stimulated macrophages into an anti-inflammatory phenotype. Stem Cells. 30 (10), 2283-2296 (2012).
  14. Ylostalo, J. H., Bartosh, T. J., Tiblow, A., Prockop, D. J. Unique characteristics of human mesenchymal stromal/progenitor cells pre-activated in 3-dimensional cultures under different conditions. Cytotherapy. 16 (11), 1486-1500 (2014).
  15. Pittenger, M. F., et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 284 (5411), 143-147 (1999).
  16. Uccelli, A., Moretta, L., Pistoia, V. Mesenchymal stem cells in health and disease. Nat.Rev.Immunol. 8 (9), 726-736 (2008).
  17. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
  18. Fontaine, M. J., Shih, H., Schafer, R., Pittenger, M. F. Unraveling the Mesenchymal Stromal Cells’ Paracrine Immunomodulatory Effects. Transfus.Med.Rev. 30 (1), 37-43 (2016).
  19. Nemeth, K., et al. Bone marrow stromal cells attenuate sepsis via prostaglandin E(2)-dependent reprogramming of host macrophages to increase their interleukin-10 production. Nat.Med. 15 (1), 42-49 (2009).
  20. Prockop, D. J. Concise review: two negative feedback loops place mesenchymal stem/stromal cells at the center of early regulators of inflammation. Stem Cells. 31 (10), 2042-2046 (2013).
  21. Krampera, M. Mesenchymal stromal cell ‘licensing’: a multistep process. Leukemia. 25 (9), 1408-1414 (2011).
  22. Saleh, F. A., Genever, P. G. Turning round: multipotent stromal cells, a three-dimensional revolution?. Cytotherapy. 13 (8), 903-912 (2011).
  23. Tsai, A. C., Liu, Y., Yuan, X., Ma, T. Compaction, fusion, and functional activation of three-dimensional human mesenchymal stem cell aggregate. Tissue Eng.Part A. 21 (9-10), 1705-1719 (2015).
  24. Yeh, H. Y., Liu, B. H., Hsu, S. H. The calcium-dependent regulation of spheroid formation and cardiomyogenic differentiation for MSCs on chitosan membranes. Biomaterials. 33 (35), 8943-8954 (2012).
  25. Lee, E. J., et al. Spherical bullet formation via E-cadherin promotes therapeutic potency of mesenchymal stem cells derived from human umbilical cord blood for myocardial infarction. Mol.Ther. 20 (7), 1424-1433 (2012).

Play Video

Citar este artículo
Ylostalo, J. H., Bazhanov, N., Mohammadipoor, A., Bartosh, T. J. Production and Administration of Therapeutic Mesenchymal Stem/Stromal Cell (MSC) Spheroids Primed in 3-D Cultures Under Xeno-free Conditions. J. Vis. Exp. (121), e55126, doi:10.3791/55126 (2017).

View Video