Summary

Ingeniør Kunstige Faktorer å Spesifikt Manipulere alternativ spleising i humane celler

Published: April 26, 2017
doi:

Summary

Denne rapporten beskriver en bioengineeringsmetode for å designe og konstruere nye kunstige spleisningsfaktorer (ASFs) som spesifikt modulerer spleising av målgener i pattedyrceller. Denne metoden kan utvides ytterligere til å konstruere ulike kunstige faktorer for å manipulere andre aspekter av RNA-metabolisme.

Abstract

Behandlingen av de fleste eukaryote RNAer medieres av RNA-bindingsproteiner (RBPs) med modulære konfigurasjoner, inkludert en RNA-gjenkjenningsmodul, som spesifikt binder pre-mRNA-målet og et effektor-domene. Tidligere har vi benyttet den unike RNA-bindingsmodusen til PUF-domenet i humant Pumilio 1 for å generere et programmerbart RNA-bindingsstall, som ble brukt til å konstruere forskjellige kunstige RBP for å manipulere RNA-metabolisme. Her beskrives en detaljert protokoll for å konstruere Engineered Splicing Factors (ESFs) som er spesielt designet for å modulere den alternative spleising av målgener. Protokollen inkluderer hvordan man skal designe og konstruere et tilpasset PUF-stillas for et bestemt RNA-mål, hvordan man konstruerer et ESF-ekspresjonsplasmid ved å kombinere et designer-PUF-domene og et effektor-domene, og hvordan man bruker ESF til å manipulere spleising av målgener. I de representative resultatene av denne metoden har vi også beskrevet de felles analyseneAv ESF-aktiviteter ved hjelp av splitsingsreportere, anvendelsen av ESF i dyrkede humane celler, og den påfølgende effekten av spleising endringer. Ved å følge de detaljerte protokollene i denne rapporten, er det mulig å designe og generere ESFer for regulering av ulike typer Alternative Splicing (AS), og gi en ny strategi for å studere spleisregulering og funksjonen til forskjellige spleisisoformer. Videre kan forskere ved å kombinere forskjellige funksjonelle domener med et designet PUF-domene konstruere kunstige faktorer som målretter mot bestemte RNAer for å manipulere ulike trinn i RNA-behandling.

Introduction

De fleste humane gener undergå alternativ spleising (AS) for å produsere flere isoformer med forskjellige aktiviteter, som i stor grad har økt kompleksiteten koding av genomet 1, 2. AS gir er en hovedmekanisme for å regulere gen-funksjon, og det er strengt regulert ved forskjellige baner i forskjellige cellulære og utviklingsstadier 3, 4. Fordi spleising misregulation er en vanlig årsak til human sykdom 5, 6, 7, 8, rettet spleising regulering blir et attraktivt terapeutisk rute.

I henhold til en forenklet modell av spleising regulering, AS er i hovedsak kontrollert av spleising Regulatory cis -Elements (SRE) i pre-mRNA som fungerer som spleise forsterkere eller dempere av alternative eksoner. thEse SREs rekrutterer spesifikt ulike transaktive proteinfaktorer ( dvs. spleisefaktorer) som fremmer eller undertrykker spleisereaksjonen 3 , 9 . De fleste transaktive spleisefaktorer har separate sekvensspesifikke RNA-bindende domener for å gjenkjenne deres mål og effektor-domener for å kontrollere spleising. De mest kjente eksemplene er medlemmene av den serine / argininrike (SR) proteinfamilien som inneholder N-terminale RNA-anerkjennelsesmotiver (RRMs), som binder exoniske spleiseforsterkere og C-terminale RS-domener, som fremmer exon-inklusjon 10 . Omvendt binder hnRNP A1 til exonic splice-silencers gjennom RRM-domenene og hemmer ekson-inkludering gjennom et C-terminalt glycinrikt domene 11 . Ved hjelp av slike modulære konfigurasjoner bør forskere kunne konstruere kunstige spleisningsfaktorer ved å kombinere et bestemt RNA-Binding Domain (RBD) med forskjellig effekttor domener som aktiverer eller hemmer spleising.

Nøkkelen av en slik konstruksjon er å bruke en RBD som gjenkjenner gitt mål med programmerbar RNA-bindende spesifisitet, som er analog med den DNA-bindende modusen for den TALE-domenet. Men de fleste naturlige spleise faktorer inneholder RRM eller K Homologi (KH) domener, som gjenkjenner korte RNA-elementer med svak affinitet og således mangler en prediktiv RNA-proteingjenkjennings "kode" 12. Den RBD av PUF vendende proteiner (dvs. PUF domene) har et unikt gjenkjennings RNA-modus, noe som tillater den nye utformingen av PUF domener til spesifikt å gjenkjenne forskjellige RNA er rettet mot 13, 14. Kanonisk PUF domene inneholder åtte gjentagelser av tre a-helikser, som hver gjenkjenner en enkelt base i et 8-nt RNA target. Sidekjedene til aminosyrene i visse posisjoner av de nest α-heliks skjema spesifikke hydrogenbindinger med Watson-Crick kant av tHan RNA base, som bestemmer den RNA bindende spesifisitet av hver repetisjon ( figur 1A ). Koden for RNA-base-anerkjennelse av PUF-gjenta er overraskende enkel ( figur 1A ), slik at generering av PUF-domener som gjenkjenner en mulig 8-basekombinasjon (gjennomgått av Wei og Wang 15 ).

Dette modulære designprinsippet tillater generering av en Engineered Splicing Factor (ESF) som består av et tilpasset PUF-domene og et splicing-modulasjonsdomene ( dvs. et SR-domene eller et Gly-rikt domene). Disse ESFene kan fungere som enten spleiseaktivatorer eller som inhibitorer for å kontrollere ulike typer spleisehendelser, og de har vist seg nyttige som verktøy for å manipulere spleising av endogene gener relatert til menneskers sykdom 16 , 17 . Som et eksempel har vi konstruert PUF-Gly-type ESFer for å spesifikt endre spleising av Bcl-x-genet, Konvertering av anti-apoptotisk lang isoform (Bcl-xL) til pro-apoptotisk kort isoform (Bcl-xS). Forandring av forholdet mellom Bcl-x isoformen var tilstrekkelig til å sensibilisere flere kreftceller til flere anti-kreft kjemoterapi-legemidler 16 , noe som tyder på at disse kunstige faktorene kan være nyttige som potensielle terapeutiske reagenser.

I tillegg til å kontrollere spleising med kjente spleiseffektor-domener ( f.eks. Et RS- eller Gly-rikt domene), kan de konstruerte PUF-faktorene også brukes til å undersøke aktivitetene til nye spleisningsfaktorer. Ved å bruke denne tilnærmingen har vi for eksempel vist at det C-terminale domenet til flere SR-proteiner kan aktivere eller hemme spleising ved binding til forskjellige pre-mRNA-regioner 18 , at det alaninrike motivet av RBM4 kan hemme spleising 19 og at Det prolinrike motivet til DAZAP1 kan forbedre spleising 20 , 21 </ Sup>. Disse nye funksjonelle domener kan brukes til å konstruere andre typer kunstige faktorer for å finjustere spleising.

Protocol

1. Konstruksjon av en PUF-stillas med tilpasset RNA-bindende spesifisitet ved overlapping av PCR Design en serie PCR-primere som inneholder PUF-sekvensene som spesifikt gjenkjenner forskjellige RNA-nukleotider i hver posisjon 12 (se tabell 1 for primer-sekvensene og se figur 1A for RNA: PUF-gjenkjennelseskoden). For hver PUF-gjentakelse, utform fire forskjellige primere for å gjenkjenne en annen base på hver posisjon. MERK: Disse …

Representative Results

Denne rapporten beskriver fullstendige protokollen for design og bygging av ESFs og skjøte journalister. Den beskriver også den videre anvendelse av ESFs i manipulere AS av endogene gener 16. For å illustrere typiske resultater av ESF-mediert skjøting endringer, bruker vi data fra vår tidligere arbeid som et eksempel. De ESFs med forskjellige funksjonelle domener kan benyttes for å fremme eller hemme inkluderingen av målet kassetten ekson <strong class="xfi…

Discussion

Denne rapporten gir en detaljert beskrivelse av utformingen og konstruksjonen av kunstige spleise faktorer som spesifikt kan manipulere alternativ spleising av et målgen. Denne fremgangsmåten utnytter fordelene av den unike RNA-bindende modusen for PUF gjentas for å produsere et RNA-bindende stillas med tilpassede spesifisitet. Den kan brukes til enten å aktivere eller undertrykke skjøting.

Det kritiske trinnet i denne protokollen er genereringen av den reprogramed PUF domene som define…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH stipend R01-CA158283 og NSFC gi 31400726 til ZWYW er finansiert av Young tusen talenter Program og Natural Science Foundation National of China (tilskudd 31471235 og 81422038). XY er finansiert av postdoktor Science Foundation of China (2015M571612).

Materials

High-fidelity DNA polymerase (Phusion High-Fidelity) with PCR buffer New England Biolabs M0530L
DNA ligase (T4 DNA ligase) New England Biolabs M0202L
Liposomal transfection reagent (Lipofectamine 2000) Invitrogen 11668-019
Reduced serum medium (Opti-MEM) Gibco 31985-062
RNA extraction buffer (TRIzol Reagent) ambion 15596018 TRIzol reagent includes phenol, which can cause burns. Wear gloves when handling
BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma-Aldrich A7638-5G
PBS (1X) Life Technologies 10010-031
SuperScript III reverse transcriptase Invitrogen 18080044
Caspase-3 antibody Cell Signaling Technology 9668
PARP antibody Cell Signaling Technology 9542
Bcl-x antibody BD Bioscience 610211
beta-actin antibody Sigma-Aldrich A5441
alpha-tubulin antibody Sigma-Aldrich T5168
FLAG antibody Sigma-Aldrich F4042
Nitrocellulose membrane Amersham-Pharmacia RPN203D
ECL Western Blotting detection reagents Invitrogen WP20005
Cy5-dCTP GE Healthcare PA55021
Fluorescence-activated cell sorter BD Bioscience FACSCalibur 
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM) GE Healthcare SH30243.01
Fetal bovine serum Invitrogen 26140079
Propidium iodide (PI) Sigma P4170
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A7638-5G
Triton-X100 Promega H5142
Poly-lysine  Sigma P-4832 Filter sterilize and store at 4 °C
Vector  pWPXLd Addgene 12258
Vector pMD2.G Addgene 12259
Vector psPAX2 Addgene 12260
DNase I (RNase-free) New England Biolabs M0303S
Oligo(dT)18 Primer Thermo Scientific SO131 
Anti-mouse secondary antibody (Anti-mouse IgG, HRP-linked Antibody) Cell Signaling Technology 7076S

Referencias

  1. Wang, E. T., et al. Alternative isoform regulation in human tissue transcriptomes. Nature. 456 (7221), 470-476 (2008).
  2. Pan, Q., Shai, O., Lee, L. J., Frey, B. J., Blencowe, B. J. Deep surveying of alternative splicing complexity in the human transcriptome by high-throughput sequencing. Nat Genet. 40 (12), 1413-1415 (2008).
  3. Wang, Z., Burge, C. B. Splicing regulation: from a parts list of regulatory elements to an integrated splicing code. Rna. 14 (5), 802-813 (2008).
  4. Matera, A. G., Wang, Z. A day in the life of the spliceosome. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (2), 108-121 (2014).
  5. Singh, R. K., Cooper, T. A. Pre-mRNA splicing in disease and therapeutics. Trends Mol Med. 18 (8), 472-482 (2012).
  6. Wang, G. -. S., Cooper, T. A. Splicing in disease: disruption of the splicing code and the decoding machinery. Nat Rev Genet. 8 (10), 749-761 (2007).
  7. Li, Y. I., et al. RNA splicing is a primary link between genetic variation and disease. Science. 352 (6285), 600-604 (2016).
  8. Scotti, M. M., Swanson, M. S. RNA mis-splicing in disease. Nat Rev Genet. 17 (1), 19-32 (2016).
  9. Black, D. L. Mechanisms of alternative pre-messenger RNA splicing. Annu Rev Biochem. 72 (1), 291-336 (2003).
  10. Graveley, B. R., Maniatis, T. Arginine/serine-rich domains of SR proteins can function as activators of pre-mRNA splicing. Mol cell. 1 (5), 765-771 (1998).
  11. Del Gatto-Konczak, F., Olive, M., Gesnel, M. -. C., Breathnach, R. hnRNP A1 recruited to an exon in vivo can function as an exon splicing silencer. Mol Cell Biol. 19 (1), 251-260 (1999).
  12. Auweter, S. D., Oberstrass, F. C., Allain, F. H. Sequence-specific binding of single-stranded RNA: is there a code for recognition. Nucleic Acids Res. 34 (17), 4943-4959 (2006).
  13. Dong, S., et al. Specific and modular binding code for cytosine recognition in Pumilio/FBF (PUF) RNA-binding domains. J Biol Chem. 286 (30), 26732-26742 (2011).
  14. Filipovska, A., Razif, M. F., Nygård, K. K., Rackham, O. A universal code for RNA recognition by PUF proteins. Nat Chem Biol. 7 (7), 425-427 (2011).
  15. Wei, H., Wang, Z. Engineering RNA-binding proteins with diverse activities. Wiley Interdiscip Rev RNA. 6 (6), 597-613 (2015).
  16. Wang, Y., Cheong, C. -. G., Hall, T. M. T., Wang, Z. Engineering splicing factors with designed specificities. Nat Methods. 6 (11), 825-830 (2009).
  17. Choudhury, R., Tsai, Y. S., Dominguez, D., Wang, Y., Wang, Z. Engineering RNA endonucleases with customized sequence specificities. Nat Commun. 3, 1147 (2012).
  18. Wang, Y., et al. A complex network of factors with overlapping affinities represses splicing through intronic elements. Nat Struct Mol Biol. 20 (1), 36-45 (2013).
  19. McCabe, B. C., Gollnick, P. Cellular levels of trp RNA-binding attenuation protein in Bacillus subtilis. J Bacteriol. 186 (15), 5157-5159 (2004).
  20. Wang, Y., Ma, M., Xiao, X., Wang, Z. Intronic splicing enhancers, cognate splicing factors and context-dependent regulation rules. Nat Struct Mol Biol. 19 (10), 1044-1052 (2012).
  21. Choudhury, R., et al. The splicing activator DAZAP1 integrates splicing control into MEK/Erk-regulated cell proliferation and migration. Nat Commun. 5, (2014).
  22. Xiao, X., Wang, Z., Jang, M., Burge, C. B. Coevolutionary networks of splicing cis-regulatory elements. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (47), 18583-18588 (2007).
  23. Wang, Z., Xiao, X., Van Nostrand, E., Burge, C. B. General and specific functions of exonic splicing silencers in splicing control. Mol Cell. 23 (1), 61-70 (2006).
  24. Li, M., Husic, N., Lin, Y., Snider, B. J. Production of lentiviral vectors for transducing cells from the central nervous system. J Vis Exp. (63), e4031 (2012).
  25. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat Protoc. 1 (1), 241-245 (2006).
  26. Venables, J. P. Aberrant and alternative splicing in cancer. Cancer Res. 64 (21), 7647-7654 (2004).
  27. Cooke, A., Prigge, A., Opperman, L., Wickens, M. Targeted translational regulation using the PUF protein family scaffold. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (38), 15870-15875 (2011).
  28. He, C., Zhou, F., Zuo, Z., Cheng, H., Zhou, R. A global view of cancer-specific transcript variants by subtractive transcriptome-wide analysis. PloS one. 4 (3), 4732 (2009).
  29. Venables, J. P., et al. Identification of alternative splicing markers for breast cancer. Cancer Res. 68 (22), 9525-9531 (2008).
  30. Shapiro, I., et al. An EMT-Driven Alternative Splicing Program Occurs in Human Breast Cancer. PLoS Genet. 7 (8), 1002218 (2011).
  31. David, C. J., Manley, J. L. Alternative pre-mRNA splicing regulation in cancer: pathways and programs unhinged. Genes Dev. 24 (21), 2343-2364 (2010).
  32. Ladomery, M. Aberrant alternative splicing is another hallmark of cancer. Int J Cell biol. 2013, (2013).
  33. Karni, R., et al. The gene encoding the splicing factor SF2/ASF is a proto-oncogene. Nat Struct Mol Biol. 14 (3), 185-193 (2007).
  34. Anczukòw, O., et al. SRSF1-regulated alternative splicing in breast cancer. Mol cell. 60 (1), 105-117 (2015).

Play Video

Citar este artículo
Wei, H., Liu, Y., Wang, Y., Lu, Q., Yang, X., Li, J., Wang, Z. Engineering Artificial Factors to Specifically Manipulate Alternative Splicing in Human Cells. J. Vis. Exp. (122), e54967, doi:10.3791/54967 (2017).

View Video