Summary

Producción simple y eficiente y purificación de ratón mielina de oligodendrocitos de la glucoproteína de la encefalomielitis autoinmune experimental Estudios

Published: October 27, 2016
doi:

Summary

We describe a simple protocol using only basic lab equipment to generate and purify large quantities of a fusion protein that contains mouse Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein. This protein can be used to induce experimental autoimmune encephalomyelitis driven by both T and B cells.

Abstract

Multiple sclerosis (MS) is a chronic inflammatory disease of the central nervous system (CNS), thought to occur as a result of autoimmune responses targeting myelin. Experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) is the most common animal model of CNS autoimmune disease, and is typically induced via immunization with short peptides representing immunodominant CD4+ T cell epitopes of myelin proteins. However, B cells recognize unprocessed protein directly, and immunization with short peptide does not activate B cells that recognize the native protein. As recent clinical trials of B cell-depleting therapies in MS have suggested a role for B cells in driving disease in humans, there is an urgent need for animal models that incorporate B cell-recognition of autoantigen. To this end, we have generated a new fusion protein containing the extracellular domain of the mouse version of myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG) as well as N-terminal fusions of a His-tag for purification purposes and the thioredoxin protein to improve solubility (MOGtag). A tobacco etch virus (TEV) protease cleavage site was incorporated to allow the removal of all tag sequences, leaving only the pure MOG1-125 extracellular domain. Here, we describe a simple protocol using only standard laboratory equipment to produce large quantities of pure MOGtag or MOG1-125. This protocol consistently generates over 200 mg of MOGtag protein. Immunization with either MOGtag or MOG1-125 generates an autoimmune response that includes pathogenic B cells that recognize the native mouse MOG.

Introduction

MS es una enfermedad humana caracterizada por la inflamación crónica y la neurodegeneración del CNS que se piensa para ser accionado por una respuesta autoinmune dirigida hacia la mielina. La pérdida de mielina y axones a través del tiempo como resultado la disminución gradual de la función cognitiva y motora 1. "Encefalomielitis autoinmune experimental" es un término general para los modelos animales de enfermedad autoinmune dirigida hacia la mielina del SNC. Como MS humanos, EAE se caracteriza típicamente por la infiltración de células inmunes del sistema nervioso central y, en algunos casos, la desmielinización 2. Sin embargo, el grado en que cualquier modelo de EAE dado asemeja MS humana, en parte, depende de la especie o cepa utilizada y de la complejidad de la respuesta autoinmune anti-mielina subyacente.

autoinmunidad anti-mielina puede ser inducida experimentalmente en varias formas, pero el método más común usado hoy en día es para inmunizar ratones con un péptido corto de aminoácidos que imitan la CD4 inmunodominante <sarriba> + epítopo de células T de una proteína de la mielina. Esto representa el requisito mínimo de inducir una respuesta patógena. Tal vez el más común de ellos es un péptido de 21 aminoácidos derivado de la glicoproteína de mielina de oligodendrocitos (MOG 35-55), que se utiliza para inducir la EAE en ratones C57BL / 6 3. Sin embargo, para algunos fines experimentales es deseable o incluso necesario para inmunizar con los antígenos proteicos más grandes y de hecho hay varias ventajas a esto más de la inmunización con el péptido corto. En primer lugar, debido a la restricción MHC, los péptidos cortos son por lo general sólo es eficaz en un rango muy limitado de cepas, mientras que los antígenos de proteínas más grandes que representan ya sea toda la proteína o un dominio específico se pueden procesar normalmente para su presentación en múltiples cepas de ratón endogámica o incluso en diferentes especies 4. En segundo lugar, un antígeno de proteína más grande es capaz de inducir una respuesta inmune más compleja la incorporación de más tipos de linfocitos en el reconocimiento de antígenos, en lugar de limiting reconocimiento del antígeno a las células T CD4 +. Por ejemplo, las células B a través de su receptor de células B (BCR) interactúan directamente con todo en lugar de procesado de proteínas. Nosotros y otros han demostrado que las células B activadas por MOG 35-55 inmunización no reconocen la proteína MOG 5. Puesto que las células B se ha demostrado recientemente para jugar un papel patogénico en MS humano 6, los modelos de EAE que incorporan células B en la patología autoinmune son cada vez más importante.

A pesar de las ventajas del uso de antígenos de proteínas de mayor tamaño para inducir EAE, quedan pocas fuentes disponibles en el mercado para tales proteínas. En efecto, mientras que los péptidos cortos como MOG 35-55 pueden sintetizarse muy rápidamente y a un coste relativamente bajo, las opciones comerciales para la proteína MOG es limitado y el coste sustancialmente más para comprar. No obstante, hay varios vectores de expresión disponibles para los grupos de investigación para generar MOG dominio extracelular (MOG 1-125) propios. however, todos los sistemas de expresión que hemos identificado en la literatura se basan en las tecnologías más antiguas que ya han sido reemplazados con sistemas de expresión más eficientes 7. Además, la mayoría se basan en rata o humano MOG 8. Para algunas investigaciones de la autoinmunidad en los ratones, un antígeno basado en el autoantígeno MOG ratón es preferible. Por último, todas las proteínas a base de MOG que hemos identificado, ya sea comercial o como vectores de expresión, son proteínas de fusión que contienen aminoácidos adicionales a la base MOG 1-125. Estos incluyen una etiqueta para la purificación y por lo general otras secuencias, así, muchas de las cuales con una función que no pudimos identificar.

Para hacer frente a estas limitaciones, hemos generado una nueva proteína de fusión basada en el ratón MOG dominio extracelular fusionado a una etiqueta que contiene tiorredoxina para combatir la insolubilidad de la proteína conocida MOG 5. La secuencia de etiqueta también contiene una secuencia 6xHis para la purificación y un CLE proteasa TEVsitio Avage que permite la eliminación completa de todas las secuencias de etiqueta, si se desea. Este es el único método que somos conscientes de generar pura proteína MOG 1-125. Para facilitar la producción de grandes cantidades de proteína, la secuencia de MOG 1-125 fue optimizado codón para la expresión bacteriana y se insertó la proteína de fusión tag MOG en el sistema de expresión pET-32. A continuación, describimos en detalle el protocolo para producir y purificar la proteína etiqueta de MOG, y MOG 1-125 pura, utilizando equipos no especializados disponibles para la mayoría de los laboratorios de inmunología.

Protocol

1. La inducción de proteínas NOTA: En los pasos siguientes, las bacterias BL21 de Escherichia coli transformadas con un vector pET-32 que contiene la secuencia para la proteína de fusión tag MOG (véase la referencia 5 y la Figura 1) se cultivan a altas densidades y luego se inducen para expresar la proteína tag MOG . Vea la Figura 2 para la línea de tiempo general – en cuenta que los días son puntos de parada a…

Representative Results

Una vez que la purificación es completa, las muestras recogidas en los pasos 1.4, 2.1, 3.4, y el producto final de la etapa 6.4 se deben ejecutar en un gel de proteína (Figura 3A). MOG etiqueta debe aparecer en primer lugar como una banda de 31,86 kDa en la muestra T / N, pero no t 0, y debe ser la única banda en el producto puro final. Para probar si la proteína tag MOG ha plegado correctamente, la proteína tag…

Discussion

Aquí, hemos descrito un protocolo para la producción de proteína MOG etiqueta y cómo generar MOG 1-125 pura de la proteína MOG etiqueta. Este protocolo se basa tanto en los métodos estándar His-tag base de purificación de proteínas, así como un protocolo previamente descrito para la generación de una proteína de más edad a base de MOG 15. A pesar de que no se describe aquí, el uso principal de la proteína etiqueta MOG es inducir EAE mediante inmunizac…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by a grant from the Multiple Sclerosis Society of Canada. RWJ is the recipient of the Waugh Family MS Society of Canada Doctoral Studentship Award.

Materials

BL21 E.coli– pet32-MOGtag Kerfoot lab These bacteria are required to make the MOGtag protein. Glycerol stocks of these bacteria are available upon request.
LB broth miller Bioshop LBL407.1
Ampicillin bio basic AB0028 Reconsititute the powder into 50% ethanol/ 50% H2O at 100 mg/ml. Store at -20 °C.
IPTG Bioshop IPT002.5 Reconsititute the powder into H2O at 1M and store at -20 °C.
Chicken-egg lysozyme Bioshop LYS702.10 Reconstitute in H2O at 50 mg/ml and store at -80 °C.
Triton-X100 Sigma T-8532
Phosphate buffered saline life technologies 20012-027 Commercial phosphate buffered saline is not required, any standard lab made phosphate buffered saline is sufficient.
Sodium chloride Bioshop SOD004.1
Tris-HCl Bioshop TRS002.1
Imidazole Bioshop IMD508.100
Guanidine-HCl Sigma G3272 The quality must be greater than 98% purity.
0.5M EDTA bioshop EDT111.500
Nickel (II) sulfate Bioshop NIC700.500
His bind resin EMD Millipore 69670-3 Store in 20% ethanol 80% H2O at 4 °C
Anhydrous ethanol Commercial Alcohols P016EAAN Dilute with water as needed.
Glacial acetic acid Bioshop ACE222.1
Sodium acetate trihydrate Bioshop SAA305.500
bovine serum albumin standard bio-rad 500-0206
Bio-rad protein assay dye reagent concentrate bio-rad 500-0006
Ethylenediamine tetraacetic acid, disodium salt dihydrate Fisher scientific BP120-500
Tris-base Bioshop TRS001.1
7000 MW Snakeskin dialysis tubing Thermoscientific 68700
2-mercaptoethanol Sigma M3148-25ml This reagent should not be handled outside of a fume hood.
AcTEV protease lifetechnologies 12575-015 Producing your own TEV protease can be accomplished using (https://www.addgene.org/8827/) and purified as in reference 17
Polyethyleneglycol 3350 Bioshop PEG335.1
polyethyleneglycol 8000 Bioshop PEG800.1
Nunc MaxiSorp flat-bottom 96 well plate ebioscience 44-2404-21
Sonicator Fisher scientific FB-120-110
Eon microplate spectrometer Biotek 11-120-611 This equipment uses the Gen5 data analysis software.
Gen5 data analysis software BioTek
sodium dodecyl sulphate Bioshop SDS001
bromophenol blue Bioshop BRO777
Glycerol Bioshop GLY001
Protein desalting columns Thermoscientific 89849
Glycine Bioshop GLN001
precast 12% polyacrylamide gel bio-rad 456-1045
Rapid stain reagent EMD Millipore 553215
Gel dock EZ imager bio-rad 1708270
White Light Sample Tray bio-rad 1708272  Used along with gel dock EZ imager for coomassie blue stains
Protein ladder bio-rad 1610375

Referencias

  1. Compston, A., Coles, A. Multiple sclerosis. Lancet. 372 (9648), 1502-1517 (2008).
  2. Baxter, A. G. The origin and application of experimental autoimmune encephalomyelitis. Nat Rev Immunol. 7 (11), 904-912 (2007).
  3. Bittner, S., Afzali, A. M., Wiendl, H., Meuth, S. G. Myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 mice. J Vis Exp. (86), (2014).
  4. Shetty, A., et al. Immunodominant T-cell epitopes of MOG reside in its transmembrane and cytoplasmic domains in EAE. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 1 (2), 22 (2014).
  5. Dang, A. K., Jain, R. W., Craig, H. C., Kerfoot, S. M. B cell recognition of myelin oligodendrocyte glycoprotein autoantigen depends on immunization with protein rather than short peptide, while B cell invasion of the CNS in autoimmunity does not. J Neuroimmunol. 278, 73-84 (2015).
  6. Barun, B., Bar-Or, A. Treatment of multiple sclerosis with anti-CD20 antibodies. Clin Immunol. 142 (1), 31-37 (2012).
  7. Bettadapura, J., Menon, K. K., Moritz, S., Liu, J., Bernard, C. C. Expression, purification, and encephalitogenicity of recombinant human myelin oligodendrocyte glycoprotein. J Neurochem. 70 (4), 1593-1599 (1998).
  8. Oliver, A. R., Lyon, G. M., Ruddle, N. H. Rat and human myelin oligodendrocyte glycoproteins induce experimental autoimmune encephalomyelitis by different mechanisms in C57BL/6 mice. J Immunol. 171 (1), 462-468 (2003).
  9. . JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Molecular Cloning. J Vis Exp. , (2016).
  10. . JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Restriction Enzyme Digests. J Vis Exp. , (2016).
  11. Hamada, H., Arakawa, T., Shiraki, K. Effect of additives on protein aggregation. Curr Pharm Biotechnol. 10 (4), 400-407 (2009).
  12. Dang, A. K., Tesfagiorgis, Y., Jain, R. W., Craig, H. C., Kerfoot, S. M. Meningeal Infiltration of the Spinal Cord by Non-Classically Activated B Cells is Associated with Chronic Disease Course in a Spontaneous B Cell-Dependent Model of CNS Autoimmune Disease. Front Immunol. 6, 470 (2015).
  13. LaVallie, E. R., et al. A thioredoxin gene fusion expression system that circumvents inclusion body formation in the E. coli cytoplasm. Biotechnology (N Y). 11 (2), 187-193 (1993).
  14. Raines, R. T., McCormick, M., Van Oosbree, T. R., Mierendorf, R. C. The S.Tag fusion system for protein purification. Methods Enzymol. 326, 362-376 (2000).
  15. Amor, S., et al. Identification of epitopes of myelin oligodendrocyte glycoprotein for the induction of experimental allergic encephalomyelitis in SJL and Biozzi AB/H mice. J Immunol. 153 (10), 4349-4356 (1994).
  16. Kostallas, G., Lofdahl, P. A., Samuelson, P. Substrate profiling of tobacco etch virus protease using a novel fluorescence-assisted whole-cell assay. PLoS ONE. 6 (1), e16136 (2011).
  17. Litzenburger, T., et al. B lymphocytes producing demyelinating autoantibodies: development and function in gene-targeted transgenic mice. J Exp Med. 188 (1), 169-180 (1998).
  18. Zhang, H. Y., et al. Separation and purification of Escherichia coli-expressed human thymosin-alpha1 using affinity chromatography and high-performance liquid chromatography. Protein Expr Purif. 77 (2), 140-145 (2011).
  19. Tegel, H., Ottosson, J., Hober, S. Enhancing the protein production levels in Escherichia coli with a strong promoter. FEBS J. 278 (5), 729-739 (2011).
  20. Akirav, E. M., Bergman, C. M., Hill, M., Ruddle, N. H. Depletion of CD4(+)CD25(+) T cells exacerbates experimental autoimmune encephalomyelitis induced by mouse, but not rat, antigens. J Neurosci Res. 87 (15), 3511-3519 (2009).
  21. Kapust, R. B., et al. Tobacco etch virus protease: mechanism of autolysis and rational design of stable mutants with wild-type catalytic proficiency. Protein Eng. 14 (12), 993-1000 (2001).
  22. Blommel, P. G., Fox, B. G. A combined approach to improving large-scale production of tobacco etch virus protease. Protein Expr Purif. 55 (1), 53-68 (2007).

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Jain, R. W., Dang, A. K., Kerfoot, S. M. Simple and Efficient Production and Purification of Mouse Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein for Experimental Autoimmune Encephalomyelitis Studies. J. Vis. Exp. (116), e54727, doi:10.3791/54727 (2016).

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