Summary

設計と低コストの使用、自動Morbidostat細菌の適応進化のための抗生物質選択下

Published: September 27, 2016
doi:

Summary

We describe a low cost, configurable morbidostat that enables the characterization of antibiotic drug resistance by dynamically adjusting the drug concentration. The device can be integrated with a multiplexed microfluidic platform. The approach can be scaled up for laboratory antibiotic drug resistance studies.

Abstract

私たちは、抗生物質耐性の進化の経路を特徴付けるための低コスト、設定morbidostatについて説明します。 morbidostatは、継続的に細菌の増殖を監視し、動的にそれらが薬剤耐性を獲得するように進化として常に細菌に挑戦する薬物濃度を調整した細菌培養装置です。デバイスは、〜10ミリリットルの作業容量を備え、完全に自動化し、光学密度測定、中および薬物送達のためのマイクロポンプが装備されています。プラットフォームを検証するために、我々はMG 1655 大腸菌でトリメトプリム耐性の段階的買収を測定し、細胞の形態や抗生物質感受性を調査するために多重化されたマイクロ流体プラットフォームとデバイスを統合しました。アプローチは、抗生物質耐性の実験室での研究にスケールアップ、および代謝工学および他の細菌培養実験における歪みの改善のために進化を適応するために拡張することができます。

Introduction

最初の抗生物質ペニシリンの導入以来、微生物の抗生物質耐性は、世界的な健康問題1へと発展しています。抗生物質耐性の獲得が遡及的in vivoで研究することができるが、これらの実験の条件は、多くの場合、全体の進化2を通じて制御されていません。あるいは、適応実験室進化は抗生物質3から、環境ストレスまたは選択圧下微生物種の分子進化を明らかにすることができます。最近、抗生物質耐性の多くのよく制御された進化実験は、抗生物質耐性の出現を明らかにしています。たとえば、オースティンのグループが適切に設計されたマイクロ流体区画環境4の急速な出現を示しました。最近開発されたmorbidostatは、薬剤選択圧5,6の下で体系的突然変異を誘発します。 morbidostat、微生物セレク連続してほぼ一定の人口を維持するために抗生物質濃度を調整ションデバイスは、微生物学7,8で使用される変動試験から大きな進歩です。変動試験では、抗生物質を高濃度で注入し、生存変異体をスクリーニングし、計数します。その代わりに、morbidostat中の微生物は、常に挑戦し、複数の変異を獲得しています。

morbidostatはケモスタット、微生物集団9を希釈しながら継続的に栄養を供給することにより一定の人口を維持し、1950年にNovickとSzliardによって発明された培養装置と同様に動作します。導入以来、ケモスタットが進められ、改善されました。現在のマイクロ流体ケモスタットは、ナノリットルおよび単一セルの容量に達しています。しかしながら、これらのデバイスは、多くの変異事象10,11を有する大きな細胞集団を必要とする適応進化の実験には適していません。最近、ミニ〜10ミリリットルの作業容量でケモスタットもリットル規模のバイオリアクターおよびマイクロ流体ケモスタット12,13の間のギャップを埋めるために開発されてきました。

ここでは、抗生物質耐性の研究のための低コスト、自動化されたmorbidostatの設計および使用を提示します。提案されたモジュールは、最小限のハードウェア要件を有する微生物実験室でシェーカーインキュベーター内で使用することができます。オープンソースのファームウェアも簡単に、このような代謝工学3として適応進化の特定の用途に合わせて調整されます。最後に、morbidostatは、抗生物質感受性試験14用の多重マイクロ流体プラットフォームに統合されています。

Protocol

Morbidostatデバイスの1アセンブリおよび予備試験 Morbidostatの組立 18 G注射針で培養バイアルのキャップ上の3つの穴をパンチ。 〜の長さは7センチポリエチレンチューブの3枚をカット。キャップにポリエチレン管のこれらの3枚を挿入します。 ポリジメチルシロキサン(PDMS)の混合物のためのキャストとして機能するようにキャップの縁をラップするためにテープを使用して…

Representative Results

上記のmorbidostatは、図1に図式化されている。実験的進化、抗生物質感受性試験および細胞形態のチェックなどの一般的なmorbidostat操作を、Eに検証されましたトリメトプリム(TMP)にさらさコリ MG1655文化、一般的に使用される抗生物質5,6。 TMPは、薬物耐性に非常に特徴的な段階的な増加を誘導し、そして突然変異はジヒドロ葉酸還元?…

Discussion

低コストの構成要素からの低フットプリントmorbidostat装置が示されています。デバイスが登録された薬剤耐性レベルの増加は、以前の報告5のものと一致しています。薬剤耐性の進化の研究のために設計され、デバイスは、他の多くの実験に潜在的に適用可能です。まず、薬剤誘発性の変異の包括的なデータベースは、臨床的に関連する抗生物質の大規模なセットのために確立するこ?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Prof. Sze-Bi Hsu and Ms. Zhenzhen for useful discussions and help in the theoretical analysis and numerical simulation. Y. T. Y. would like to acknowledge funding support from the Ministry of Science and Technology under grant numbers MOST 103-2220-E-007-026 and MOST 104-2220-E-007-011, and from the National Tsing Hua University under grant numbers 103N2042E1, 104N2042E1, and 105N518CE1.

Materials

Environmental Shaker Incubator BioSan ES-20
Arduino Leonardo board Arduino Leonardo
680 Ohm Carbon Resistor Digikey Bias resistor for LED
100k Ohm Carbon resistor Digikey Bias resistor for phototransistor
940 nm light emitting diode Bright LED Electronic BIR-BM13E4G-2 Optical density measurement
940 nm phototransistor Kodenshi  ST-2L2B Optical density measurement
Darlington pair IC Toshiba Mouser ULN2803APG  this IC drives micropumps and magnetic stirring unit
5V DC brushless fan  ADDA AD0405LX-G70 spec: 5V supply voltage and 80mA available www.jameco.com
Piezoelectric micropump CurieJet PS15I-FT-5L Pressure >3kPa  Flow rate >5 ml/min
Tygon 3350 Tuning Saint Gobain ABW00001 ID: 1/32" OD: 3/32" L:50' 
Magnetic Stir bar COWIE tapered shape dim: 10 mm x 4mm
Glass scintillation 20ml vial DGS Pyrex glass 28mm(dia.)x 61 mm(h)
Culture vial holder Custom made from Polyformaldehyde 
Silicone  Dow Corning Sylgald 184 used to seal the glass vial
Medium bottle VWR 66022-065
Difco M9 minimal salt 5x BD Medium
Cadamino Acid BD Medium
glucose Sigma
Agar Bateriological Oxoid for agar plate
Luria Bertani medium
Inverted microscope Leica Microsystems Leica DMI-LED used for microfluidic measurement Use X40 objective NA=0.55
Microscope Incubator Live Cell Instrument CU-109 used for microfluidic measurement
Solenoidal valves Pneumadyne S10MM-31-12-3 Normally open 1.3 Watt 12 Vdc
USB interface card Hobby Engineering USBIO24-R Digital I/O Module  for microfluidics measurement
Air compressor Rocker Scientific ROCKER 440 Pressure source for microfluidcs Max. Pressure 80 Psi
Male luer-lock fittings to 1/8" barb ValuePlastics.com MTLL230-1 used for microfluidic control
1/8" barb to 10-32 threaded port ValuePlastics.com B-1 used for microfluidic control
Female luer-lock fittings to 10-32 threaded port ValuePlastics.com KFTL-1 used for microfluidic control
NPN darlington transistor 500mA, 40V (2N6427) DigiKey.com 2N6427GOS-ND used for microfluidic control
10kOhm, carbon film resistor, 0.25W DigiKey.com P10KBACT-ND used for microfluidic control
Tantalum capacitor, 10uF, 25V, 10% DigiKey.com 478-1841-ND used for microfluidic control
Andor CCD camera Andor Zyla 4.2 Plus SCMOS used for microfluidic on chip imaging
ELISA plate reader
two component Silicone  Momentive RTV 615 used for microfluidic chip fabrication
SU-8 photoresist Micrchem SU8 2015 used for microfluidic chip fabrication
AZ4620 photoresist Clariant AZ 4620 used for microfluidic chip fabrication
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC 32G used for microfluidic chip fabrication
20 Gauge Syringe Needle BD used for microfluidic chip fabrication
Labcycler Sensoquest Labcycler PCR 
DNA polymerase Toyobo KDO Plus PCR amplification
Trimethoprim Sigma
Plate reader Biotek Synergy H1 hybrid  antibiotic resistane measurement

Referencias

  1. Levy, S. B., Marshall, B. Antibiotic resistance worldwide: causes, challenges, and responses. Nat. Med. 10, s122-s129 (2004).
  2. Wang, M. M., et al. Tracking the in vivo evolution of multidrug resistance in Staphylococus aureus by whole genome sequencing. Pro. Natl. Acad. Sci. 104, 9451 (2007).
  3. Dragosits, M., Mattanovich, D. Adaptive laboratory evolution – principles and applications for biotechnology. Microbial Cell Factory. 12, 64 (2013).
  4. Zhang, Q., et al. Acceleration of emergence of bacterial antibiotic resistance in connected microenvironment. Science. 333, 1764-1767 (2011).
  5. Toprak, E., Veres, A., Michel, J. B., Chait, R., Hartl, D. L., Kishony, R. Evolutionary paths to antibiotic resistance under dynamically sustained drug selection. Nature Genetics. 44, 101-106 (2012).
  6. Toprak, E., et al. Building a morbidostast: an automated continuous culture device for studying bacterial drug resistance under dynamically sustained drug inhibition. Nature Protocol. 8, 555-567 (2013).
  7. Rosenthal, A. Z., Elowitz, M. B. Following evolution of bacterial antibiotic resistance in real time. Nature Genetics. 44, 11-13 (2012).
  8. Young, K. In vitro antibacterial resistance selection and quantitation. Curr Protoc Pharmacol. , (2006).
  9. Novick, A., Szilard, L. Experiments with the Chemostat on spontaneous mutations of bacteria. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 36, 708-719 (1950).
  10. Balagadde, F. K., You, L., Hansen, C. L., Arnold, F. H., Quake, S. R. Long-term monitoring of bacteria undergoing programmed population control in a microchemostat. Science. 309, 137-140 (2005).
  11. Groisman, A., et al. A microfluidic chemostat for experiments with bacterial and yeast cells. Nat. Methods. 2, 685-689 (2005).
  12. Miller, A. W., Befort, C., Kerr, E. O., Dunham, M. J. Design and Use of Multiplexed Chemostat Arrays. J. Vis. Exp. (72), e50262 (2013).
  13. Takahashi, C. N., Miller, A. W., Ekness, F., Dunham, M. J., Klavins, E. A low cost, customizable turbidostat for use in synthetic circuit characterization. ACS Synthetic Biology. , (2015).
  14. Mohan, R., et al. A multiplexed microfluidic platform for rapid antibiotic susceptibility testing. Biosens Bioelectrons. 49, 118-125 (2013).
  15. Unger, M. A., Chou, H. P., Thorsen, T., Scherer, A., Quake, S. R. Monolithic microfabricated valves and pumps by multilayer soft lithography. Science. 288, 113-116 (2000).
  16. Kellogg, R. A., Gomez-Sjoberg, R., Leyrat, A. A., Tay, S. . Nat. Protocols. 9, 1713 (2014).
  17. Gu, G. Y., Lee, Y. W., Chiang, C. C., Yang, Y. T. A nanoliter microfluidic serial dilution bioreactor. Biomicrofluidics. 9, 044126 (2015).
  18. Gonzalez, R. C., Woods, R. E., Eddins, S. L. . Digital image using Matlab processing. , (2004).
  19. Heikkila, E., Sundstrom, L., Huovinen, P. Trimethoprim resistance in Escherichia coli isolates from a geriatric unit. Antimicrob. Agents Chemother. 34, 2013-2015 (1990).
  20. Flensburg, J., Skold, O. Massive overproduction of dihydrofolate reductase in bacteria as a response to the use of trimethoprim. Eur. J. Biochem. 162, 473-476 (1987).
  21. Ohmae, E., Sasaki, Y., Gekko, K. Effects of five-tryptophan mutations on structure, stability and function of Escherichia coli dihydrofolate reductase. J. Biochem. 130, 439-447 (2001).
  22. Smith, D. R., Calvo, J. M. Nucleotide sequence of dihydrofolate reductase genes from trimethoprim-resistant mutants of Escherichia coli. Evidence that dihydrofolate reductase interacts with another essential gene product. Mol. Gen. Genet. 187, 72-78 (1982).
  23. Okumus, B., Yildiz, S., Toprak, E. Fluidic and microfluidic tools for quantitative systems biology. Curr Opin Biotech. 25, 30-38 (2014).
  24. Cho, J., et al. A rapid antimicrobial susceptibility test based on single-cell morphological analysis. Sci. Transl. Med. 17, 267 (2014).
  25. Hsu, S. B., Waltman, P. E. Analysis of a model of two competitors in a chemostat with an external inhibitor. SIAM J. Applied Math. , 528-540 (1992).
  26. Fu, W., et al. Maximizing biomass productivity and cell density of Chlorella vulgaris by using light-emitting diode-based photobioreactor. J. Biotech. 161, 242-249 (2012).
  27. Peabody, V. G. L., Winkler, J., Kao, K. C. Tools for developing tolerance to toxic chemicals in microbial systems and perspectives on moving the field forward and into the industrial setting. Curr Opin in Chem Eng. 6, 9-17 (2014).

Play Video

Citar este artículo
Liu, P. C., Lee, Y. T., Wang, C. Y., Yang, Y. Design and Use of a Low Cost, Automated Morbidostat for Adaptive Evolution of Bacteria Under Antibiotic Drug Selection. J. Vis. Exp. (115), e54426, doi:10.3791/54426 (2016).

View Video