This paper presents a sensitive method called Circle-Seq for purifying extrachromosomal circular DNA (eccDNA). The method encompasses column purification, removal of remaining linear chromosomal DNA, rolling-circle amplification and high-throughput sequencing. Circle-Seq is applicable to genome-scale screening of eukaryotic eccDNA and studying genome instability and copy-number variation.
染色体外環状DNA(eccDNAs) サッカロマイセス・セレビシエにおける共通の遺伝的要素であり、他の真核生物で報告されています。 EccDNAsは、多細胞生物における体細胞間の遺伝的変異に及び単細胞真核生物の進化に貢献しています。 eccDNAを検出するための感度の高い方法は、これらの要素は、ゲノムの安定性に影響を与え、どのように環境的および生物学的因子は、真核細胞におけるそれらの形成を誘導する方法を明確にするために必要とされます。このビデオでは、サークルのSeqと呼ばれる敏感なeccDNA-精製方法を提供します。この方法は、環状DNAのカラム精製、残りの線状染色体DNA、eccDNAのローリングサークル増幅、ディープシークエンシングおよびマッピングの除去を包含する。広範エキソヌクレアーゼ処理は、十分な線形染色体DNAの分解のために必要でした。によるローリングサークル増幅工程伊根高さ:ノーマル;直鎖状DNAを超える環状DNAについて濃縮">φ29ポリメラーゼ10 10細胞の3 S.セレビシエ CEN.PK集団にサークルのSeq法の検証は1キロベースよりも大きいサイズでeccDNAプロファイルの数百を検出しました。 。S288CとCEN.PK両方に環状DNAにASP3-1、COS111、CUP1、RSC30、HXT6、HXT7遺伝子の発見をDNAの環状化は、これらの遺伝子座での株の間で保存されていることを示唆している繰り返し。要するに、サークルのSeq法は広いがあります真核生物でeccDNAためのゲノム規模スクリーニングのためだけでなく、特定のeccDNAの種類を検出するための適用性。
それは、細胞の大集団中の単一DNA分子の変化を同定する必要があるため、早期にまたは一過染色体の増幅を検出することは困難です。染色体コピー数変動(CNVを)は、一般的に変化1,2を生成メカニズムの証拠としてのみ、最終的なCNV構造を残して、彼らの確立された後も検出されています。 CNV形成の初期段階で体外の環状DNA(eccDNA)を検出し、回収することゲノム再編成で進行中のプロセスを解明することがあります。
以前に、eccDNAのデノボ発見は、電子顕微鏡写真を図3に示すように 、中期染色体4、または二次元ゲル電気泳動5のギムザ染色でした。これらの方法は、環状DNAの配列についてはほとんどあるいは全く情報を提供します。ターゲットを絞ったサザンが6,7ブロッティングなどの技術、逆PCR 8、またはその場での hybridizatio 蛍光nは9は 、特定の eccDNA要素についての証拠を提供します。これらの方法はいずれも、細胞集団内のすべての既存eccDNAタイプの配列を提供しません。
細胞のプールにおけるゲノムの相違は、ゲノム配列決定および/ またはタイリングアレイ10,11によって特徴付けることができます。従来のDNA精製方法によって削除または増幅の検出は、通常、突然変異対立遺伝子は、細胞集団12,13の少なくとも0.1から1パーセントを表していることが必要です。非中心eccDNAsは、それらの動原体の欠如および複製におけるDNA合成の潜在的な欠如を、細胞培養物中で一層一過性であることが期待されます。最もeccDNAsは、おそらく少量であり、それらの配列がゲノムに似ているので、このように、代替のDNA抽出方法はeccDNAsを検出するために必要とされます。
いくつかの環状DNA精製技術は、染色体および環状DNAとの間の構造的な違いを利用します。例えば、高速ultracentrifug塩化セシウム勾配でationが、ヒトのHeLa癌細胞株14から350から3000塩基対(bp)の大eccDNAsを単離するために使用されます。しかし、高速度は沈降速度15とeccDNA収率を変える、スーパーコイル環状DNA構造の骨格を壊すか、ニックすることができます。 Duttaさんと共同研究者は、デノボ 、マウス組織からだけでなく、鶏の文化やヒト細胞16,17から環状DNAのゲノムスケールの同定のための方法を開発しました。彼らの方法は、プラスミド精製と酵素反応やDNA抽出のいくつかのラウンドに続いて、スクロース超遠心分離することによりホモジナイズした組織からの核の抽出です。そのプロトコルは、主に200-400 bpのeccDNAs、と呼ばれるmicroDNAsを識別します。 Duttaさんと共同研究者はまた、 サッカロマイセス・セレビシエからmicroDNAsの精製を試みたが、この酵母種16からmicroDNAを記録することができませんでした。
我々はのための新規な方法を開発しましたサークルのSeqと呼ばれる酵母からeccDNAのデノボ検出。この方法は、全遺伝子を運ぶのに十分な大きさと86キロベース(kbの)ミトコンドリアDNA(mtDNAの)と同じ大きさの環状DNA分子のためのゲノム規模の調査を可能にします。サークルのSeq法は、真核生物の酵母細胞用に最適化と深いシーケンシングと組み合わせて、十分に確立された原核生物のプラスミド精製法18,19から開発されました。サークルのSeqアプローチ、1756異なるeccDNAs、すべてのより大きな1キロバイトを使用して、10 Sから検出されましたセレビシエ S288C集団20。サイズカットオフは、全体の遺伝子を運ぶのに十分な大きさでしたeccDNAに集中することを選択しました。サークルのSeqは高感度でした。それは、セル20の数千内の単一eccDNAを検出しました。現在の研究では、サークルのSeqは、別のSの3つの生物学的複製物から294 eccDNAsを分離し、同定するために使用されましたセレビシエ酵母株、CEN.PK.データはeccDNAが共通の遺伝的elemeであることが明らかになりましたS.でNT セレビシエ株。
サークルのSeq法は、配列レベルの分解能を持つ酵母細胞からeccDNAのゲノムスケールの検出を可能にします。この方法は、集中的な渦やピペット操作を必要とし、次のステップでエキソヌクレアーゼ消化につながるeccDNAの破損を制限するために、重力によってカラム分離を使用していない軽度のeccDNAの精製です。この方法のこれらの機能は、遺伝子配列を含む大きなeccDNAsを検出するために重要であり得ます。サークルのSeqは、完全な遺伝子( データセット1)を含む多数のeccDNAsを検出しました。また、86-kbの酵母ミトコンドリアDNAを検出しました。したがって、このプロトコルは、大環状DNAエレメントの精製を容易にします。最小限にDNA抽出工程の数を維持するeccDNA損失のリスクを低減し、歩留まりを最大にします。制御の結果に基づいて、スパイク-にプラスミド、サークルのSeqは2,500細胞から単一の環状DNAを検出し、高感度です。さらに、このような2μなど豊富な内因性のプラスミドを除去します;プラスミドまたはミトコンドリアDNAを大幅に感度を向上させる可能性があります。酵母培養物からの2μの硬化は、30に記載されています。また、2μとミトコンドリアDNAの除去は、そのようなのSwaIとして、レア切断エンドヌクレアーゼを用いて達成されることがあります。しかし、制限酵素ステップは、関心のある他のeccDNAsを標的とし、総eccDNA収量を制限することができます。
eccDNA検出のための重要なステップは、適切な深さに線形DNA(ステップ3)、DNA配列決定(ステップ5)を除去しました。細胞集団からeccDNAsの大部分を記録するには、深いシーケンシングは、20を必要になる場合があります。環状DNA接合がペアエンドがdiscordantlyそのマップを読み込みもたらすことが期待されているようペアエンド配列決定は、eccDNA検出の一層の信頼を提供する必要があります。これらの不一致は、環状DNA構造の発見を支援し、潜在的にさらなるeccDNA検出フィルタとして使用することができます。
サークルのa-SeQ法は、3つの独立したSを使用して検証しました。 セレビシエ CEN.PK集団。検出されたシーケンスは、以前eccDNAs、内在性プラスミドを報告し、スパイク-にプラスミドおよび推定eccDNAs( データセット1)の何百も含まれています。これらの知見は、Sから前のサークルのSeqデータセットをサポートセレビシエ S288C 20。 CEN.PKとS288C集団に共通するいくつかのeccDNAsの発見は、これらの遺伝子座は、として円形の要素( 図4)が存在する傾向があることを示しています。我々は以前、他の歪みの背景にある[GAP1 円 ]の証拠が発見されていないものの、CEN.PK背景8中の窒素限られた条件の下で濃縮されている[GAP1 円 ]ことが示されています。 CUP1-1 RSC30、ASP3-1、COS111、およびHXT6 HXT7からeccDNAの発見S288CとCEN.PKの両方での遺伝子座はDNAの環状化のための素因が詐欺であることを示唆しています酵母株の間でお召し上がりいただけます。 [HXT6 / 7 円 ]、[ASP3-1 円 ]、[COS111 円 ]、および[CUP1-1 RSC30 円 ]が細胞に選択的利点を付与する場合は、表示されるために残っているか、彼らの存在は、単にの高レートの影響である場合DNAの環状化。
まとめると、結果は、サークル-seqがキロベースのサイズeccDNAsを検出するのに適している、完全な遺伝子とeccDNAsを識別するための利点を有していることを示しています。サークルのSeqは、酵母からeccDNAsの全ゲノムスケールの画面を有効に高感度な方法です。サークルのSeq法は、遺伝子欠失および増幅を生成する際にeccDNAの役割を解明することを目的とした研究の新しいフィールドを開くことができます。 DNAアーキテクチャと構造が大きく、高等真核生物への真核生物、酵母から保存されていることを考えると、サークルのSeq法は、原理的には、applicablすべきです若干の修正を加えて、すべての真核細胞に電子。メガベースサイズeccDNAsを精製する能力を示すことがまだあるが、現時点では、この方法は、任意の制限があるとは思われません。また、ローリングサークル増幅法31を使用O29 DNAポリメラーゼの使用は、eccDNA定量がより困難に小さいeccDNAsに向かってバイアスを生成します。サークルのSeqはヒト体細胞からの二分の環状DNAの研究に適して、完全な遺伝子を運ぶのに十分な大きeccDNAsを検出します。癌原遺伝子がこれらの要素32-37上で増幅されたときにダブル分は、癌に貢献することができます。生殖系列細胞におけるeccDNAsの研究は、家畜、例えば、生殖細胞系突然変異率を測定し、精子の品質を評価するために使用することができます。このように、サークルのSeqは、遺伝的変異は、コピー数多型の形で発生する速度への洞察を得て、遺伝子が関与する疾患の新規理解につながる可能性を秘めている著作数の変動38-40。
The authors have nothing to disclose.
Thanks to Kenn D. Møller and Claus Sternberg (DTU) for technical assistance and to Tue S. Jørgensen for quantitative PCR analysis.
Bacto peptone | BD Difco | 211677 | Alternative product can be used. |
Brilliant III SYBR Green PCR Master Mix | Agilent Technologies | 600882 | For qPCR analysis. Alternative product can be used. |
Dextrose (D-glucose) | Carl Roth | HN06.4 | Alternative product can be used. |
Disruptor Beads, 0.5 mm | Scientific Industries, Inc. | SI-BG05 | Glass beads to disrupt plasma cell membranes. Alternative product can be used. |
Ethidium bromide | Carl Roth | 2218.2 | Agarose gel stain for detecting DNA/RNA. |
GeneJet plasmid miniprep kit | Thermo Fisher | K0502 | Plasmid purifcation from bacteria. Alternative product can be used |
NotI, FastDigest | Life Technologies - Thermo Fisher Scientific, USA | FD0594 | Endonuclease. Alternative product can be used. |
Plasmid Mini AX kit | A&A Biotechnology, Poland | 010-50 | Plasmid purifcation kit used to purify eccDNA. |
Plasmid-Safe ATP-dependent DNase kit | Epicentre, USA | E3105K | ATP-dependent exonuclease kit. Alternative product can be used. |
Propidium iodide | Sigma-Aldrich, USA | 81845 | Alternative product can be used. |
pUG6 plasmid | EUROSCARF, Germany | P30114 | Marker gene: loxP-PAgTEF1-kanMX-TAgTEF1-loxP. Plasmid requests: Please contact Dr. Peter Philippsen@unibas.ch |
QIAGEN genomic-tip 100/G | Qiagen, USA | 13343 | Genomic DNA purifcation from yeast. Alternative product can be used. |
REPLI-g Mini Kit protocol | Qiagen, USA | 150023 | Amplification of eccDNA by the phi29 polymerase |
Yeast extract | BD Difco | 210929 | Alternative product can be used. |
Zymolyase 100T (Lyticase, Yeast Lytic Enzyme) | Nordic BioSite, Sweden | Z1004-3 | Alternative product can be used. |
Data access to sequence files | European Nucleotide Archive | EccDNA dataset from Saccharomyces cerevisiae CEN.PK113-7D. Study accession number PRJEB9684. 2nd accession number is ERP010820. Locus tag prefix is BN2032. | |
Strains | |||
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK113-7D | Genotype MATa MAL2-8c SUC2 | ||
Saccharomyces cerevisiae yeast deletion library pool | EUROSCARF, Germany | S288c BY4741 pool of 4400 viable single-gene deletion mutants disrubted by KanMX module. Genotypes MATa his3∆1 leu2∆0 met15∆0 ura3∆0 genexxx::KanMX. | |
Equipments | |||
DNA Spectrophotometer | NanoDrop 1000 Spectrophotometer, Thermo Fisher | Measuring DNA concentration. Alternative product can be used. | |
Fluorescence microscopy | Nikon Optronics Magnafire. Red excitation fluorescence filter, 663-738 nm. | Alternative product can be used. | |
Robotic library-build system | Apollo 324, IntegenX Inc. | DNA library preparation. Alternative product can be used. | |
Sequencing platform | Illumina HiSeq 2000 platform, Illumina Inc. | DNA sequencing. Alternative product can be used. | |
Ultrasonicator | Covaris LE220, microTUBE AFA Fiber tubes | Alternative product can be used. | |
Methods | |||
2% YPD media | Mix 10 g Dextrose, 10 g Yeast extract, 20 g Bacto peptone and add H2O to a total volume of 1000 ml and autoclave. | ||
Circle-Seq test on genomic DNA | Genomic DNA was purified (Qiagen) from a pool of the yeast deletion library (Euroscarf). The DNA concentration was measured by nanodrop and 30 µg genomic DNA was pipetted into two micro centrifuge tubes. One micro centrifuge tube was supplemented with 100 nanogram plasmid (pUG6). The DNA samples were purified by Circle-Seq, omitting the protocol steps 1.1-1.3 and 1.5-1.7. The eluted DNA concentrations were measured by nanodrop and the entire DNA yield from sample GD and GD+P was treated with exonuclease for a period of 29 hours. A 10% fraction was collected for phi29-amplification and PCR analysis, while the remaining DNA was subjected to 72 hour exonuclease treatment. The samples were analyzed for linear DNA content by PCR, using the ACT1 gene as chromosomal marker. A 5% fraction of each of the exonuclease treated samples was amplified by the phi29 DNA polymerase for 16 hours (Qiagen). The presence of DNA in each sample was examined by loading an equal amount (7 µl) in wells on an 0.5 µg/ml ethidium-bromide 0.9% agarose gel after running gel-electrophoresis. | ||
Mapping software | Bowtie2 aligner, John Hopkins University | Ultrafast short read alignment. Reference: Langmead B, Salzberg S. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods. 2012, 9:357-359. | |
Propidium iodide stain | Images of propidium iodine stained DNA were captured by fluorescence microscopy at 100x magnification (100x/1.30 oil, Nikon) in the RFP channel (red excitation fluorescence filter, 663-738 nm) using identical exposition time (5 seconds). | ||
Workflow bioinformatic system | Galaxy, Open source. | A free web-based platform for data intensive biomedical research. References: Goecks, J, Nekrutenko, A, Taylor, J and The Galaxy Team. Galaxy: a comprehensive approach for supporting accessible, reproducible, and transparent computational research in the life sciences. Genome Biol. 2010 Aug 25;11(8):R86. Blankenberg D, Von Kuster G, Coraor N, Ananda G, Lazarus R, Mangan M, Nekrutenko A, Taylor J. "Galaxy: a web-based genome analysis tool for experimentalists". Current Protocols in Molecular Biology. 2010 Jan; Chapter 19:Unit 19.10.1-21. Giardine B, Riemer C, Hardison RC, Burhans R, Elnitski L, Shah P, Zhang Y, Blankenberg D, Albert I, Taylor J, Miller W, Kent WJ, Nekrutenko A. "Galaxy: a platform for interactive large-scale genome analysis." Genome Research. 2005 Oct; 15(10):1451-5. |