Summary

नवजात मस्तिष्क में वायरल कणों और फ्लोरोसेंट microbeads की Intracerebroventricular और Intravascular इंजेक्शन

Published: July 24, 2016
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Summary

Here, we describe a simple method of intracerebroventricular and intravascular injection of viral particles or fluorescent microbeads into the neonatal mouse brain. The localization pattern of the virus and nanoparticles could be detected by microscopic evaluation or by in situ hybridization.

Abstract

वायरल इन्सेफेलाइटिस के रोगजनन पर अध्ययन में, संक्रमण विधि महत्वपूर्ण है। मस्तिष्क के लिए दो मुख्य मार्गों संक्रामक के पहले hematogenous मार्ग है, जो endothelial कोशिकाओं और मस्तिष्क के pericytes के संक्रमण शामिल है। दूसरी Intracerebroventricular (आईसीवी) मार्ग है। एक बार जब केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) के भीतर, वायरस subarachnoid अंतरिक्ष, तानिका, और मस्तिष्कमेरु द्रव के माध्यम से रंजित जाल में फैल सकता है। प्रयोगात्मक मॉडल में, सीएनएस वायरल वितरण के शुरुआती दौर में अच्छी तरह से विशेषता नहीं कर रहे हैं, और यह स्पष्ट नहीं है कि केवल कुछ कोशिकाओं शुरू संक्रमित हैं। यहाँ, हम संक्रमण के तीव्र चरण के दौरान cytomegalovirus (सीएमवी) कणों के वितरण का विश्लेषण किया है, प्राथमिक viremia करार दिया, नवजात माउस मस्तिष्क में आईसीवी या intravascular (चतुर्थ) इंजेक्शन के बाद। आईसीवी इंजेक्शन मॉडल में, murine सीएमवी (इन क्षेत्रों में एमसीएमवी) या फ्लोरोसेंट microbeads के 5 μl midpoi में पार्श्व वेंट्रिकल में इंजेक्ट किया गयाNT कान और आंख एक 27 जी सुई के साथ एक 10 μl सिरिंज का उपयोग कर के बीच। चतुर्थ इंजेक्शन मॉडल में, एक 35 जी सुई के साथ एक 1 मिलीलीटर सिरिंज का इस्तेमाल किया गया था। एक transilluminator सतही लौकिक (चेहरे) नवजात माउस की नस कल्पना करने के लिए इस्तेमाल किया गया था। हम सतही लौकिक नस में इन क्षेत्रों में एमसीएमवी या फ्लोरोसेंट microbeads के 50 μl संचार। दिमाग अलग अलग समय बिंदुओं के बाद इंजेक्शन पर काटा गया। इन क्षेत्रों में एमसीएमवी जीनोम सीटू संकरण विधि में उपयोग करते हुए पाया गया। फ्लोरोसेंट microbeads या हरी फ्लोरोसेंट प्रोटीन पुनः संयोजक इन क्षेत्रों में एमसीएमवी कणों व्यक्त फ्लोरोसेंट माइक्रोस्कोपी द्वारा मनाया गया। इन तकनीकों में इन्सेफेलाइटिस के रोगजनन जांच करने के लिए कई अन्य रोगाणुओं के लिए लागू किया जा सकता है।

Introduction

जब वायरल इन्सेफेलाइटिस का अध्ययन, वायरल कणों की प्रारंभिक वितरण रोग रोगजनन समझने के लिए और मस्तिष्क में वायरल लक्ष्यों की पहचान करने के लिए बहुत महत्वपूर्ण है। अधिकांश वायरस, 20 से 300 एनएम से आकार में सीमा हालांकि Pandoravirus आकार 1 में अधिक से अधिक 700 एनएम है। संक्रमण की तीव्र चरण में वायरल कणों के वितरण के कणों के आकार, सेलुलर रिसेप्टर्स के वितरण, या वायरस के लिए सेलुलर रिसेप्टर्स की आत्मीयता पर निर्भर हो सकता है। पशु मॉडल, Intracerebroventricular (आईसीवी), intraperitoneal, प्रत्यक्ष अपरा, और नसों (चतुर्थ) के संक्रमण वायरल इन्सेफेलाइटिस के रोगजनन अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया गया है में। वायरस से आईसीवी टीका अक्सर चूहों में केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) के संक्रमण को स्थापित करने के लिए प्रयोग किया जाता है। इस तकनीक का उपयोग विशेष रूप से अध्ययन periventricular क्षेत्रों में कोशिकाओं की और मस्तिष्कमेरु द्रव (सीएसएफ), simila के साथ सीधे संपर्क में मस्तिष्क के क्षेत्रों में व्यापक संक्रमण की रिपोर्टवायरल ventriculoencephalitis के प्रभाव के लिए आर। एडिनो से जुड़े वायरस (एएवी) कणों के छोटे आकार (20 ​​- व्यास में 25 एनएम) आईसीवी संक्रमण के 2-4 में मस्तिष्क भर में उनके प्रचार-प्रसार की सुविधा। इंट्रापेरिटोनियल 5, प्रत्यक्ष अपरा 6, और चतुर्थ इंजेक्शन 7 hematogenic प्रणालीगत प्रशासन प्रतिनिधित्व करते हैं। रक्त मस्तिष्क बाधा (BBB) ​​के माध्यम से वायरल कणों की पैठ उन्हें नवजात मस्तिष्क के पैरेन्काइमा तक पहुंचने के लिए, फैलाना microglial पिंड 8,9 का प्रतिनिधित्व करने की अनुमति देता है।

साइटोमेगालोवायरस (सीएमवी) एक आम वायरस है कि दाद वायरस परिवार से संबंध रखता है। संयुक्त राज्य अमेरिका में 50% – लोगों के 80% से 40 सीएमवी संक्रमण को शायद ही कभी हानिकारक हैं लेकिन immunocompromised रोगियों और भ्रूण में रोगों का कारण बन सकती उम्र से सीएमवी संक्रमण पड़ा है। सभी प्रसव के 0.2% – 2%, सीएमवी 10 के साथ पैदा होते हैं ऐसे microcephaly, periventricular कड़ा हो जाना, अनुमस्तिष्क hypoplasia, माइकर के रूप में गंभीर लक्षण है, जिसके परिणामस्वरूपआफ़्टलमीय, और ऑप्टिक तंत्रिका शोष 11,12। इसके अलावा, मानसिक मंदता, sensorineural सुनवाई हानि, दृश्य दोष, जब्ती, और मिर्गी गैर-प्राणघातक रूप से सीएमवी से संक्रमित शिशुओं 13,14 के बारे में 10% में होते हैं। सीएनएस में शिथिलता सीएमवी जन्मजात विसंगति का सबसे आम लक्षण लक्षण है। अधिक बच्चों को स्थायी रूप से डाउन सिंड्रोम, भ्रूण शराब सिंड्रोम, या द्विमेरुता 15 द्वारा की तुलना में जन्मजात सीएमवी द्वारा प्रत्येक वर्ष अक्षम हैं। वहाँ एक सुरक्षित और प्रभावी वैक्सीन की जरूरत के लिए बुला सीएमवी के खिलाफ कोई टीकाकरण वर्तमान में उपलब्ध हैं। संक्रमण का जल्द से जल्द चरण में उनकी रिसेप्टर्स के साथ सीएमवी कणों की बातचीत का अध्ययन टीकाकरण के प्रभाव को समझने के लिए महत्वपूर्ण है।

Ventriculoencephalitis और फैलाना microglial पिंड दो सीएमवी की मुख्य विशेषताओं रोग इन्सेफेलाइटिस 16 हैं। यह अनिश्चित हो गया है कि कैसे सीएमवी कणों (150 – 300 एनएम) संक्रमण एक की तीव्र चरण में मस्तिष्क के माध्यम से फैलएन डी कैसे सेलुलर रिसेप्टर्स के वितरण और वायरस के लिए उनके संबंध वायरल प्रसार के लिए योगदान करते हैं। कावासाकी एट अल। आईसीवी और कणों और उनके रिसेप्टर्स (β1 इंटीग्रिन) संक्रमण की जल्द से जल्द चरण में के वितरण के नजरिए से चतुर्थ में संक्रमण का मूल्यांकन किया है। हमने पाया है कि सीएमवी कणों और β1 इंटीग्रिन की अभिव्यक्ति के प्रचार-प्रसार में अच्छी तरह से दोनों आईसीवी और चतुर्थ में संक्रमण 8 में संक्रमण की जल्द से जल्द चरण में सहसंबद्ध होते हैं। आईसीवी संक्रमण ventriculoencephalitis का एक मॉडल है और चतुर्थ संक्रमण फैलाना microglial पिंड का एक मॉडल है। वायरल या फ्लोरोसेंट कणों की गतिशीलता के अध्ययन के कण आकार, सेलुलर रिसेप्टर्स के साथ वायरल बातचीत, और मस्तिष्क में बीबीबी प्रवेश के तंत्र के प्रभाव पर उपयोगी जानकारी देना होगा। निम्नलिखित प्रोटोकॉल सीएनएस में किसी भी वायरल संक्रमण और वायरल वेक्टर जांच करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है।

Protocol

सभी प्रयोगात्मक प्रोटोकॉल के स्कूल ऑफ मेडिसिन के हमामात्सू विश्वविद्यालय के पशु की देखभाल समिति द्वारा अनुमोदित किया गया। 1. इन क्षेत्रों में एमसीएमवी (स्मिथ तनाव) और संयोजक की तैयारी M32-बढ़?…

Representative Results

वायरल इन्सेफेलाइटिस के रोगजनन पर अध्ययन में, संक्रमण विधि महत्वपूर्ण है। जबकि आईसीवी मार्ग एक तीव्र संक्रमण, subarachnoid अंतरिक्ष के माध्यम से सीएसएफ के माध्यम से फैल रहा तानिका और रंजित जाल तक ?…

Discussion

पशु मॉडल, आईसीवी, intraperitoneal, प्रत्यक्ष अपरा, और चतुर्थ के संक्रमण में वायरल इन्सेफेलाइटिस के रोगजनन अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया गया है। हम प्रक्रियाओं की सादगी और लक्ष्य क्षेत्र में कणों के प्रत्यक्?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Mr. Masaaki Kaneta, Ms. Hiromi Suzuki, and Ms. Mitsue Kawashima (Department of Regenerative and Infectious Pathology, Hamamatsu University School of Medicine) for their excellent technical assistance. This work was supported by the Japan Society for the Promotion of Science, KAKENHI Grant Number 23590445.

Materials

Tris; tris(hydroxymethyl)- aminomethane Sigma-Aldrich T-6791
HCl Sigma-Aldrich H-1758
pEGFP-N1 vector  Clontech #6085-1
D-sorbitol Sigma-Aldrich S-1876
SPHERO TM Fluorescent Polystyrene Nile Red 0.04-0.06 Spherotech, Inc. FP-00556-2
SPHERO TM Fluorescent Polystyrene Nile Red 0.1-0.3 Spherotech, Inc. FP-0256-2
SPHERO TM Fluorescent Polystyrene Nile Red 1.7-2.2 Spherotech, inc.  FP-2056-2
10% mouse serum DAKO  X0910
C57BL/6 mouse SLC, Inc.
ICR mouse SLC, Inc.
Modified Microliter Syringes (7000 Series) Hamilton company
35-gauge needle Saito Medical
A Wee Sight Transilluminator Phillips Healthcare 1017920
O.C.T.Compound Sakura Finetek 4583
RNase A Sigma-Aldrich R4642
Nonidet(R) P-40 Nacalai 25223-04
citrate buffer (pH6) x10 Sigma-Aldrich C9999-100ml
pepsin Sigma-Aldrich P6887
EDTA dojindo N001
Formamide TCI F0045
Dextran sulfate sodium salt Sigma-Aldrich 42867-5G
Denhardt's Solution (50X) ThermoFishcer sceintific 750018
Yeast tRNA (10 mg/mL) ThermoFishcer sceintific AM7119
SSC x20 Sigma-Aldrich S6639
DAPI ThermoFishcer sceintific D1306
n-Hexane Sigma-Aldrich 296090
superfrost plus glass ThermoFishcer sceintific 12-55-18
Cytokeep II Nippon Shoji Co.
FITC-conjugated Griffonia simplicifolia isolectin B4 Vector laboratories, Inc. L1104
Anti-Mouse CD31 (PECAM-1) PE ebioscience 12-0311
ProLong  Gold ThermoFishcer sceintific P36934
BIOREVO KEYENCE BZ-9000E

Referencias

  1. Philippe, N., et al. Pandoraviruses: amoeba viruses with genomes up to 2.5 Mb reaching that of parasitic eukaryotes. Science. 341 (6143), 281-286 (2013).
  2. Passini, M. A., et al. Intraventricular brain injection of adeno-associated virus type 1 (AAV1) in neonatal mice results in complementary patterns of neuronal transduction to AAV2 and total long-term correction of storage lesions in the brains of beta-glucuronidase-deficient mice. J Virol. 77 (12), 7034-7040 (2003).
  3. Kim, J. Y., et al. Viral transduction of the neonatal brain delivers controllable genetic mosaicism for visualising and manipulating neuronal circuits in vivo. Eur J Neurosci. 37 (8), 1203-1220 (2013).
  4. McLean, J. R., et al. Widespread neuron-specific transgene expression in brain and spinal cord following synapsin promoter-driven AAV9 neonatal intracerebroventricular injection. Neurosci Lett. 576, 73-78 (2014).
  5. Hsu, K. M., Pratt, J. R., Akers, W. J., Achilefu, S. I., Yokoyama, W. M. Murine cytomegalovirus displays selective infection of cells within hours after systemic administration. J Gen Virol. 90. 90 (Pt 1), 33-43 (2009).
  6. Sakao-Suzuki, M., et al. Aberrant fetal macrophage/microglial reactions to cytomegalovirus infection. Annals of Clinical and Translational Neruology. 1 (8), 570-588 (2014).
  7. Gombash Lampe, S. E., Kaspar, B. K., Foust, K. D. Intravenous injections in neonatal mice. J Vis Exp. (93), e52037 (2014).
  8. Kawasaki, H., et al. Cytomegalovirus initiates infection selectively from high-level beta1 integrin-expressing cells in the brain. Am J Pathol. 185 (5), 1304-1323 (2015).
  9. Rahim, A. A., et al. Intravenous administration of AAV2/9 to the fetal and neonatal mouse leads to differential targeting of CNS cell types and extensive transduction of the nervous system. FASEB J. 25 (10), 3505-3518 (2011).
  10. Cannon, M. J., Davis, K. F. Washing our hands of the congenital cytomegalovirus disease epidemic. Bmc Public Health. 5, (2005).
  11. Frenkel, L. D., Keys, M. P., Hefferen, S. J., Rola-Pleszczynski, M., Bellanti, J. A. Unusual eye abnormalities associated with congenital cytomegalovirus infection. Pediatrics. 66 (5), 763-766 (1980).
  12. Becroft, D. M. Prenatal cytomegalovirus infection: epidemiology, pathology and pathogenesis. Perspect Pediatr Pathol. 6, 203-241 (1981).
  13. Conboy, T. J., et al. Intellectual development in school-aged children with asymptomatic congenital cytomegalovirus infection. Pediatrics. 77 (6), 801-806 (1986).
  14. Fowler, K. B., et al. The outcome of congenital cytomegalovirus infection in relation to maternal antibody status. N Engl J Med. 326 (10), 663-667 (1992).
  15. Cannon, M. J. Congenital cytomegalovirus (CMV) epidemiology and awareness. J Clin Virol. 46 Suppl 4, S6-S10 (2009).
  16. Grassi, M. P., et al. Microglial nodular encephalitis and ventriculoencephalitis due to cytomegalovirus infection in patients with AIDS: two distinct clinical patterns. Clin Infect Dis. 27 (3), 504-508 (1998).
  17. Kawasaki, H., Mocarski, E. S., Kosugi, I., Tsutsui, Y. Cyclosporine inhibits mouse cytomegalovirus infection via a cyclophilin-dependent pathway specifically in neural stem/progenitor cells. J Virol. 81 (17), 9013-9023 (2007).
  18. Britt, W. J. Human cytomegalovirus: propagation, quantification, and storage. Curr Protoc Microbiol. Chapter 14, Unit 14E 13 (2010).
  19. Kawasaki, H., Kosugi, I., Arai, Y., Iwashita, T., Tsutsui, Y. Mouse embryonic stem cells inhibit murine cytomegalovirus infection through a multi-step process. PLoS One. 6 (3), e17492 (2011).
  20. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), (2012).
  21. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cutting sections of paraffin-embedded tissues. CSH Protoc. , (2008).
  22. Chi, V., Chandy, K. G. Immunohistochemistry: paraffin sections using the Vectastain ABC kit from vector labs. J Vis Exp. (8), e308 (2007).
  23. Wilsbacher, L. D., Coughlin, S. R. Analysis of cardiomyocyte development using immunofluorescence in embryonic mouse heart. J Vis Exp. (97), (2015).
  24. Ohshima, M., et al. Intraperitoneal and intravenous deliveries are not comparable in terms of drug efficacy and cell distribution in neonatal mice with hypoxia-ischemia. Brain Dev. 37 (4), 376-386 (2015).
  25. Kim, J. Y., Grunke, S. D., Levites, Y., Golde, T. E., Jankowsky, J. L. Intracerebroventricular viral injection of the neonatal mouse brain for persistent and widespread neuronal transduction. J Vis Exp. (91), e51863 (2014).
  26. Glascock, J. J., et al. Delivery of therapeutic agents through intracerebroventricular (ICV) and intravenous (IV) injection in mice. J Vis Exp. (56), (2011).
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Kawasaki, H., Kosugi, I., Sakao-Suzuki, M., Meguro, S., Tsutsui, Y., Iwashita, T. Intracerebroventricular and Intravascular Injection of Viral Particles and Fluorescent Microbeads into the Neonatal Brain. J. Vis. Exp. (113), e54164, doi:10.3791/54164 (2016).

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