Summary

Isolere hårsekken stamceller og epidermal Keratinocytter fra Dorsal Mouse Skin

Published: April 29, 2016
doi:

Summary

An ideal model for studying adult stem cell biology is the mouse hair follicle. Here we present a protocol for isolating different populations of hair follicles stem cells and epidermal keratinocytes, employing enzymatic digestion of mouse dorsal skin followed by FACS analysis.

Abstract

The hair follicle (HF) is an ideal system for studying the biology and regulation of adult stem cells (SCs). This dynamic mini organ is replenished by distinct pools of SCs, which are located in the permanent portion of the HF, a region known as the bulge. These multipotent bulge SCs were initially identified as slow cycling label retaining cells; however, their isolation has been made feasible after identification of specific cell markers, such as CD34 and keratin 15 (K15). Here, we describe a robust method for isolating bulge SCs and epidermal keratinocytes from mouse HFs utilizing fluorescence activated cell-sorting (FACS) technology. Isolated hair follicle SCs (HFSCs) can be utilized in various in vivo grafting models and are a valuable in vitro model for studying the mechanisms that govern multipotency, quiescence and activation.

Introduction

Voksne stamceller (SCS) er avgjørende for å opprettholde vev homeostase ved å erstatte døende celler og reparere skadet vev ved skade. Disse SC'er er definert ved deres evne til å gjennomgå kontinuerlig selvfornyelse og for å differensiere til forskjellige celle linjene 1-3. De beste studert systemer, som er avhengig av voksne SC'er for deres fylling, omfatter hematopoetiske system, tarmen og huden 1,2,4.

I løpet av embryogenesen, begynner huden som et enkelt lag av epidermale celler. Morphogenesis av hårsekken (HF) starter når mesenchymalceller fylle huden og danner en underliggende kollagen dermis 5. Spesialisert mesenchymale celler, som senere utgjør dermal papilla (DP), organisere rett under epidermal laget og stimulerer Epitel å danne hår placodes som begynner å vokse nedover 6. Sterkt prolifererende matriseceller, som ligger ved bunnen av HF,konvolutt disse mesenchymale celler og danner hår pære, mens det indre lag begynner å differensiere til konsentriske sylindre for dannelse av håret (HS) og den omgivende indre rot skjede (IRS) 2,3.

I postnatal livet huden epidermis består av tre avdelinger: den interfollicular epidermis (IFE), talgkjertel (SG) og HF. I motsetning til IFE og SG som er i en konstant tilstand av homeostase, er HF et dynamisk mini-organ som gjennomgår kontinuerlige sykluser av vekst (anagen), ødeleggelse (catagen) og resten (telogen) 4,7. De hårsekken stamceller (HFSCs) som drivstoff denne evigvarende syklus, bor i en nisje innenfor HF kjent som bule 4. Under anagen de HFSCs avslutte bule, etter aktiveringssignaler fra DP, begynner voksende og gå nedover og dermed skape en lang lineær sti av celler som kalles den ytre rot skjede (ORS) 8-10. Matriseceller somomgir DP på bunnen av HF, hurtig syklus og migrere oppover gjennomgår terminal differensiering og dermed generere HS og IRS 10 (figur 1). Varigheten av anagen bestemmer lengden av håret og er avhengig av den proliferative kapasitet og differensiering av matrisecellene 6. Når HF går inn katagene, til transitt-amplifisering av matrisecellene i pæren opphøre spre seg, gjennomgår apoptose og regress helt mens man trekker i DP oppover til den når den ikke-sykling del av den HF 8,11. Under denne tilbaketrekning av HF danner en midlertidig struktur kjent som den epiteliale tråd, noe som er karakteristisk for Katagen, og inneholder mange apoptotiske celler. Hos mus, varer Katagen mellom 3-4 dager, og er sterkt synkronisert i den første håret syklus. Når HF når telogen alle HFSCs bli stillestående. De forskjellige stadier av HF-syklusen er også karakterisert ved endringer i fargen av musens hud på grunn av melanin produksjon. Huden forandrer seg fra svart under anagen til mørk grå under Katagen til rosa under telogen 6,7,12,13.

Figur 1
Figur 1: hårsekken Cycle. HF består av en fast øvre del og en nedre stadig ombygging, sykling del som gjennomgår kontinuerlige sykluser med rask vekst (anagen), ødeleggelse (Katagen) og en relativ quiescence fase eller hvile (telogen). Klikk her for å se et større versjon av denne figuren.

SCS opprettholde HF ble først identifisert ved hjelp jage eksperimenter, med tritium tymidin, som avslørte en befolkning på langsom sykling label feste celler (LRC) som bodde i den permanente sone av HF like under SG 14. Fremskritt i HFSCkarakterisering viste et lite antall markører som kan brukes til å identifisere og isolere bestemte SC'er fra den HF nisje 15. Kanskje den beste markør for anriking av HFSCs er CD34, en celleoverflaten markør også identifisert som en blodkreft SC markør hos mennesker 16. Innenfor denne CD34 + populasjoner to atskilte populasjoner har også blitt isolert basert på α6 inte uttrykk to. En annen markør er keratin 15 (K15) som er sterkt uttrykt i bule region, co-lokaliserer med CD34 uttrykk og en K15 promoter brukes til å målrette og isolere HFSCs i transgene dyr 15,17-19. I det siste tiåret flere andre distinkte populasjoner av HFSCs og stamceller har også blitt rapportert å ligge innenfor HF 17,20-27.

En ekstra spennende funksjon i HFSCs er deres bidrag til huden reparasjon. Under normale forhold HFSCs fylle HF og ikke ta del i IFE homeostase. However, som svar på såret, disse cellene avslutte sin SC nisje og bistand i repopulating IFE 9. Vi har nylig vist at mus slettet for den pro-apoptotiske Sept4 / ARTS genet skjerm et økt antall CD34, K15 og Sox9 + HFSCs, som viser en motstand mot apoptose. HFSCs ble isolert fra Sept4 / ARTS – / – rygg skins utnytte fluorescens aktivert celle sortering (FACS), og det var mer enn en dobling i antall CD34 + og K15 + HFSCs. Disse Sept4 / ARTS – / – HFSCs ble utvidet in vitro, og ikke bare ga opphav til flere kolonier, men var også i stand til å tåle strengere vilkår sammenlignet med kontroller 28.

Som et resultat av å ha et økt antall HFSCs, Sept4 / kunst – / – mus helbredet betydelig raskere reaksjon på huden eksisjons- skader. Påfallende, Sept4 / ARTS – / – mus displayeda stort antall regenerert HFS fra såret, og betydelig mindre arr. Videre mus slettet for XIAP (X-bundet hemmer apoptose), den biokjemiske målet for ARTS, viste svekket sårheling 28.

Våre resultater og arbeid som er utført i andre laboratorier har vist at HFSCs tjene som en ideell modell for å studere biologi og funksjon av voksne SC'er. Her beskriver vi metodikken for anrikning og isolering av HFSCs og epidermale keratinocytter basert på uttrykket av fire markører: inte α6; integrin β1; SCA-1 (en markør for epidermale keratinocytter) og CD34. Ligner isolering av K15 + HFSCs kan også utføres ved hjelp av K15-GFP reporter mus 19.

Protocol

Denne studien ble utført i henhold til anbefalingene som er skissert i Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr Israels Helsedepartementet. Alle dyrene ble håndtert i henhold til godkjente institusjonelle dyr omsorg protokollen IL-02302-2015 av Technion Israel Institute of Technology. 1. Eksperimentell Forberedelse Fremstilling av chelatert føtalt bovint serum Merk: Epitelceller er svært følsomme for kalsium, så det er viktig å kontrollere eksponeringen av disse celle…

Representative Results

Denne protokollen beskriver i detalj anriking og isolering av to typer: populasjoner. Bule SC'er og epidermale keratinocytter Figur 2 viser de viktigste trinnene i protokollen. Utnytte huden fjernet fra den dorsale iden av 8 uker gamle mus, anriket vi bule SC'er ved hjelp av CD34 markøren, som kun er uttrykt i HFSCs; og Sca-en, hvilke etiketter epidermale keratinocytter. Figur 3 viser ulike mønstre av CD34 og Sca-1 uttrykk innenfor α6 +</…

Discussion

Protokollen er beskrevet her er vel etablert for å isolere HFSCs fra dorsal hud av voksne mus, men kan like anvendes for isolering av andre populasjoner innenfor HF struktur, basert på valget av markører 2,16,23,28,29. Denne metoden er særlig fordelaktig fremfor andre metoder for celleisolasjon, for eksempel vev dissosiasjon, ved at en bestemt celletype kan velges og høstes fra en blanding av heterogene cellepopulasjoner. Videre er metoden som er beskrevet her er hurtig og pålitelig og kan brukes til å…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by NIH grant RO1GM60124 (to H.S.). H.S. is an Investigator with the Howard Hughes Medical Institute. Y.F. is supported by the Deloro Career Advancement Chair and The German Israeli Foundation (I-2381-412.13/2015). D.S. is supported by the Coleman-Cohen post-doctoral fellowship.

Materials

Isoflurane  Primal Critical Care  66794-017-10
Carbon dioxide
Electro Shaver Oster  Golden A5 Shaver from any other company could be used
70% ethanol Gadot Lab 830000051 96% ehtanol diluted with distilled water 
Dissection mat Dissection tools from any provider can be used
Forceps Dumont 11251-10 Foreceps from any other company could be used
Scissors  Dumont 14094-11 Scissors from any other company could be used
Needles/Pins
Scalpel Albion 10 Ensure that the scalpel has a blunt end
Tissue culture dish 60mm x 15mm Sigma-Aldrich CLS430166
PBS In-house PBS without Calcium and Magnesium
0.25% Trypsin/EDTA Biological Industries 03-050-1A Trypsin obtained from a different company might have a different activity and duration of the trypsin digest has to be adjusted accordingly
Pipettes 10ml Sigma-Aldrich Corning, 4488
Ice
50 ml sterie centrifuge tubes Minplast Ein-shemer 35050-43
70µM Cell strainer Fisher 22362548
40µM Cell strainer Fisher 22362549
Staining buffer
Centrifuge Eppendorf 5804 R 5805 000.017
FACS tubes with Cell strainer caps  Falcon  352235
FACS tubes  Falcon  352063
Integrin β1 eBioscience 25-0291 1:400
Integrin α6 eBioscience 15-0495 1:600
Sca I eBioscience 11-5981 1:200
CD34 eBioscience 9011-0349 1:300
DAPI Sigma-Aldrich D9542 50ng/ml
Dry Chelex BioRad 142-2842
Beaker  Pyrex
Distilled H2O 
Stir bar
NHCl BioLab 1903059
Fetal bovine serum (FBS) Beit Haemek Biological Industries 400718 FBS obtained from a different company can be used
1L glass bottle Ilmabor Boro 3.3
Bottle top filter Autofil 1102-RLS

Referencias

  1. Wagers, A. J., Weissman, I. L. Plasticity of adult stem cells. Cell. 116, 639-648 (2004).
  2. Blanpain, C., Lowry, W. E., Geoghegan, A., Polak, L., Fuchs, E. Self-renewal, multipotency, and the existence of two cell populations within an epithelial stem cell niche. Cell. 118, 635-648 (2004).
  3. Fuchs, E. Scratching the surface of skin development. Nature. 445, 834-842 (2007).
  4. Hsu, Y. C., Fuchs, E. A family business: stem cell progeny join the niche to regulate homeostasis. Nat Rev Mol Cell Biol. 13, 103-114 (2012).
  5. Blanpain, C., Fuchs, E. Epidermal homeostasis: a balancing act of stem cells in the skin. Nat Rev Mol Cell Biol. 10, 207-217 (2009).
  6. Alonso, L., Fuchs, E. The hair cycle. J Cell Sci. 119, 391-393 (2006).
  7. Muller-Rover, S., et al. A comprehensive guide for the accurate classification of murine hair follicles in distinct hair cycle stages. J Invest Dermatol. 117, 3-15 (2001).
  8. Zhang, Y. V., Cheong, J., Ciapurin, N., McDermitt, D. J., Tumbar, T. Distinct self-renewal and differentiation phases in the niche of infrequently dividing hair follicle stem cells. Cell Stem Cell. 5, 267-278 (2009).
  9. Ito, M., et al. Stem cells in the hair follicle bulge contribute to wound repair but not to homeostasis of the epidermis. Nat Med. 11, 1351-1354 (2005).
  10. Hsu, Y. C., Pasolli, H. A., Fuchs, E. Dynamics between stem cells, niche, and progeny in the hair follicle. Cell. 144, 92-105 (2011).
  11. Fuchs, E. The tortoise and the hair: slow-cycling cells in the stem cell race. Cell. 137, 811-819 (2009).
  12. Plikus, M. V., Chuong, C. M. Complex hair cycle domain patterns and regenerative hair waves in living rodents. J Invest Dermatol. 128, 1071-1080 (2008).
  13. Ito, M., Kizawa, K., Hamada, K., Cotsarelis, G. Hair follicle stem cells in the lower bulge form the secondary germ, a biochemically distinct but functionally equivalent progenitor cell population, at the termination of catagen. Differentiation. 72, 548-557 (2004).
  14. Cotsarelis, G., Sun, T. T., Lavker, R. M. Label-retaining cells reside in the bulge area of pilosebaceous unit: implications for follicular stem cells, hair cycle, and skin carcinogenesis. Cell. 61, 1329-1337 (1990).
  15. Cotsarelis, G. Epithelial stem cells: a folliculocentric view. J Invest Dermatol. 126, 1459-1468 (2006).
  16. Trempus, C. S., et al. Enrichment for living murine keratinocytes from the hair follicle bulge with the cell surface marker CD34. J Invest Dermatol. 120, 501-511 (2003).
  17. Morris, R. J., et al. Capturing and profiling adult hair follicle stem cells. Nat Biotechnol. 22, 411-417 (2004).
  18. Lyle, S., et al. The C8/144B monoclonal antibody recognizes cytokeratin 15 and defines the location of human hair follicle stem cells. J Cell Sci. 111 (Pt 21), 3179-3188 (1998).
  19. Liu, Y., Lyle, S., Yang, Z., Cotsarelis, G. Keratin 15 promoter targets putative epithelial stem cells in the hair follicle bulge. J Invest Dermatol. 121, 963-968 (2003).
  20. Vidal, V. P., et al. Sox9 is essential for outer root sheath differentiation and the formation of the hair stem cell compartment. Curr Biol. 15, 1340-1351 (2005).
  21. Snippert, H. J., et al. Lgr6 marks stem cells in the hair follicle that generate all cell lineages of the skin. Science. 327, 1385-1389 (2010).
  22. Nijhof, J. G., et al. The cell-surface marker MTS24 identifies a novel population of follicular keratinocytes with characteristics of progenitor cells. Development. 133, 3027-3037 (2006).
  23. Jensen, U. B., et al. A distinct population of clonogenic and multipotent murine follicular keratinocytes residing in the upper isthmus. J Cell Sci. 121, 609-617 (2008).
  24. Jensen, K. B., et al. Lrig1 expression defines a distinct multipotent stem cell population in mammalian epidermis. Cell Stem Cell. 4, 427-439 (2009).
  25. Jaks, V., et al. Lgr5 marks cycling, yet long-lived, hair follicle stem cells. Nat Genet. 40, 1291-1299 (2008).
  26. Horsley, V., et al. Blimp1 defines a progenitor population that governs cellular input to the sebaceous gland. Cell. 126, 597-609 (2006).
  27. Goldstein, J., Horsley, V. Home sweet home: skin stem cell niches. Cell Mol Life Sci. 69, 2573-2582 (2012).
  28. Fuchs, Y., et al. Sept4/ARTS regulates stem cell apoptosis and skin regeneration. Science. 341, 286-289 (2013).
  29. Nowak, J. A., Fuchs, E. Isolation and culture of epithelial stem cells. Methods Mol Biol. 482, 215-232 (2009).

Play Video

Citar este artículo
Soteriou, D., Kostic, L., Sedov, E., Yosefzon, Y., Steller, H., Fuchs, Y. Isolating Hair Follicle Stem Cells and Epidermal Keratinocytes from Dorsal Mouse Skin. J. Vis. Exp. (110), e53931, doi:10.3791/53931 (2016).

View Video