Here we describe a procedure based on the use of lentiviral particles for the long-term genetic modification of neural stem cells and/or their adjacent ependymal cells in the adult ventricular-subventricular neurogenic niche which allows the separate analysis of cell autonomous and non-autonomous, niche-dependent effects on neural stem cells.
Relativamente células estaminais somáticas quiescentes apoiar a renovação celular ao longo da vida, na maioria dos tecidos adultos. As células estaminais neurais no cérebro de mamíferos adultos está restrita a dois nichos neurogénicos específicos: a zona subgranular do giro dentado no hipocampo e na zona ventricular-subventricular (V-SVZ; também denominada zona subependimal ou SEZ) nas paredes das laterais ventrículos. O desenvolvimento de estratégias de transferência in vivo de genes para as populações de células estaminais adultas (isto é, as do cérebro de mamíferos), resultando em expressão a longo termo de transgenes desejados nas células-tronco e a sua descendência resultante é uma ferramenta importante na investigação biomédica e biotecnológica corrente. Aqui, um método direto in vivo é apresentado para a modificação genética estável de células do rato adulto V-SVZ que se aproveita da infecção independente do ciclo celular por LVs ea citoarquitetura altamente especializada do nicho V-SVZ. Especificamente, o protocolo atual envolvems a injecção do LVS vazio (controlo) ou LVs que codificam as cassetes de expressão de transgenes específica para qualquer um do próprio V-SVZ, para o direccionamento in vivo de todos os tipos de células no nicho, ou para o lúmen do ventrículo lateral, para o direccionamento de ependimária células única. As cassetes de expressão são, em seguida, integrado no genoma das células transduzidas e proteínas fluorescentes, também codificados pelo LVS permitir a detecção das células transduzidas para a análise dos efeitos dependentes do nicho de células autónomos e não autónomos, em células marcadas e os seus progênie.
A zona ventricular-subventricular murino (V-SVZ), nas paredes do ventrículo lateral de frente para o corpo estriado, é uma região germinal muito activa, na qual um processo contínuo de replicação de células progenitoras e diferenciação resulta na produção persistente de bolbo olfactivo (OB ) interneurônios e oligodendrócitos corpo caloso 1. A geração ao longo da vida destas células parece ser apoiada pela presença nesta região de células neurais estaminais (NCCC, também chamado células B1), que expressam a proteína ácida fibrilar glial antigénio astrócitos (GFAP) e a haste marcadores celulares, tais como a nestina, Id1 e Sox2 2. GFAP-expressando células B1 gerar células (TAP) (células C), que expressam fatores de transcrição Dlx2 trânsito ampliando progenitor (distal-less homeobox 2) e Ascl1 (mamíferos achaete-Schute homólogo 1) e se dividem rapidamente algumas vezes antes de dar lugar a neuroblastos que migram (células a) ou oligodendroblasts 3. Recém-gerado prolifneuroblasts operatória migrar anteriormente, formando o fluxo migratório rostral (RMS) para o OB, onde eles integrar o granular e camadas glomerular como interneurônios inibitórios diferenciados. A migração de jovens oligodendroblasts passar para o CC, onde eles se tornam células imaturas NG2-positiva que continuam a dividir localmente ou se diferenciar em oligodendrócitos myelinating maduros 1,4.
células B1, que derivam de células gliais radiais fetais, retêm a morfologia alongada e polarizada de seus antecessores e exibem uma relação altamente especializada, com o seu nicho. Eles abrangem entre a ependyma que alinha o ventrículo e da rede de vasos sanguíneos que irrigam o nicho V-SVZ. O pequeno processo apical das células intercala B1 entre ependimócitos multiciliated e termina em um único cílio primária não-móveis, ao passo que o seu processo basal estende longas distâncias para abordar o plexo vascular planar que irriga este nicho final no blamina asal dos capilares do plexo 2,5-8.
A maneira mais confiável para distinguir B1-NSCs a partir de astrócitos não-neurogênicas, que também são GFAP +, no nicho V-SVZ intacto é baseado em preparações com parede lateral do ventrículo e sua análise por microscopia confocal 3-D de toda a montar depois imunocoloração para GFAP para rotular o processo apical fina B1-NSC, β-catenina para delinear as membranas celulares, e ambos os γ-tubulina como um marcador de corpos basais cilial ou acetilado α-tubulina para rotular a extensão de cada cílio 5,8. Observações destas montagens inteiras-a partir da superfície do ventrículo indicaram que as células ependimais e B1 estão dispostas em "" cata-ventos 5, em que os processos apicais uniciliated de um ou vários GFAP + B1 células são cercadas por uma roseta de células ependimais multiciliated.
A morfologia característica de células B1 correlaciona-se com a evidência experimental indicating que os vasos sanguíneos / células endoteliais e ventriculares líquido cefalorraquidiano (LCR) constituem fontes reguladas de sinais solúveis que agem em NSCs 2,6,9-11. Na superfície ventricular, homot�ica e interações APICO-lateral heterotípicos envolvendo células ependimárias e B1 incluem junções apertadas e junções aderentes 5,12. Além disso, as moléculas de adesão implicados nos complexos juncionais entre as células B1 e ependimais, tais como N-caderina e V-CAM, têm sido mostrados para regular não só o posicionamento altamente organizada de B1 no nicho V-SVZ, mas também a sua quiescência 12 , 13. A monocamada de células ependimária-B1 parece actuar como uma barreira de difusão, permitindo o fluxo regulado de água e pequenas moléculas a partir do CSF, mas restringindo a passagem de grandes proteínas intercelular 10,11. A evidência experimental indica que o cílio apical de células B1 singularmente posicionada poderia desempenhar um papel como um sensor de sinalização polipeptídeos presentes no CSF 2,5-7. Células ependimais são, por si só, também uma fonte de sinais solúveis e ligadas à membrana, com um papel na regulação do comportamento NSC 14,15.
Rastreáveis nucleósidos, tais como bromo-desoxiuridina (BrdU), ou retrovírus têm sido amplamente utilizados para marcar células progenitoras, incluindo as NSC, in vivo. No entanto, estes métodos não são ideais para o rastreio destino a longo prazo em virtude dos sinais de BrdU diluído através de divisões celulares utilizadas e retrovírus parecem ter como alvo, preferencialmente, de forma transiente células, devido à sua exigência de proliferação celular para a transdução 16,17 amplificar. Para examinar NSC fisiologia in vivo, incluindo interações com componentes de nicho, é fundamental estabelecer um método para rotular e rastrear células raramente se dividem, como B1-NSCs são em grande parte de repouso e as suas células ependimárias vizinhos Nunca dividir em condições fisiológicas 3. Aqui, mostramos que vetores de lentivírus (VEs) permitir a marca de gene de alta eficiênciação e modificação de longo prazo de NSC adultas e células ependimais que não se dividem, devido razoavelmente mais a sua capacidade para transduzir e a integrar-se no genoma das células alvo de um modo independente do ciclo celular. Além disso, mostramos como a rota de entrega e viral título de ajuda para transduzir especificamente células ependimárias, mas não células B1 permitindo assim a análise dos efeitos, ependimárias dependente de nicho no NSC.
LVs oferecer vantagens importantes sobre outros sistemas virais para a modificação genética de adultos NSCs 16,18. entrega estereotáxica de lentivírus para o nicho V-SVZ representa um método eficiente para identificar e rastrear raramente dividindo B1-NSC superar as limitações de outros métodos vulgarmente utilizados tais como BrdU, que se dilui depois de múltiplas divisões celulares, ou retrovírus, que apenas células alvo que estão a proliferar no momento da aplicação. LVS juntamente com aden…
The authors have nothing to disclose.
Nós reconhecemos a ajuda de MJ Palop eo apoio técnico do SCSIE da Universidad de Valencia. Agradecemos também a Antonia Follenzi pelos comentários e discussão do manuscrito. IF é apoiado pela Fundação Botín, pelo Banco Santander através da sua Divisão Global Santander Universidades, e por doações da Generalitat Valenciana (Programa Prometeo, ACOMP e ISIC) e Ministerio de Economía y Competitividad (MINECO: SAF2011-23331, CIBERNED e RETIC Tercel) . Este trabalho também foi apoiada por BFU2010-21823 e RETIC Tercel doações de MINECO e pelo Conselho Europeu de Investigação (ERC) 2012-StG (260511- PD-HUMMODEL) para AC BM-P. é o destinatário de uma bolsa FPI espanhola do MINECO.
Part 1: Generation of LV for in vivo delivery. | |||
Equipment: | |||
Ultracentrifuge | Beckman Coulter | Optima XL-100K | |
Ultracentrifuge rotor | Beckman Coulter | SW-28 | |
Ultracentrifuge rotor | Beckman Coulter | SW-55 | |
Ultracentrifuge tubes | Beckman Coulter | 358126 | 25X89 mm |
Ultracentrifuge tubes | Beckman Coulter | 326819 | 13X51 mm |
Ultracentrifuge adapters | Beckman Coulter | 358156 | |
6-well plate | SPL | PLC-30006 | |
24-well plate | SPL | PLC-30024 | |
10 cm dish | SPL | PLC-20101 | 100×20 style |
FACS tubes | Afora | DE400800 | 12×75 mm, 5 ml |
Cup sterile FACS filter | BD | 340626 | 30 µm |
Nitrocellulose filter | Millipore | SCGPU05RE | 0.22 μm |
Flow cytometer | BD | LSR Fortessa | Blue laser 488 nm |
Steritop filter | Biofil | FPE-204-500 | 0.22 µm |
Reagents: | |||
pMDLg/pRRE plasmid | Addgene | #12251 | Core packaging plasmid |
pRSV.REV plasmid | Addgene | #12253 | Core packaging plasmid |
pMD2G plasmid | Addgene | #12259 | Envelope plasmid |
pRRL-SIN-PPT.PGK.EGFP.Wpre plasmid | Addgene | #12252 | Transfer vector plasmid |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium | Biowest | L0101-500 | For HeLa cell culture |
Iscove's Modified Dulbecco's Medium | Life technologies | 12440-053 | For 293T cell culture |
Tris-EDTA (TE) | Tris-HCl (sigma, T5941), 0.1 mM EDTA (sigma, E5134), pH 7.6, DNAse/RNAse-free, 0.2 µm sterile-filtered | ||
2X HBS | 0.28 M NaCl (Sigma, S7653), 0.05 M HEPES (Sigma, H7523), 1.5 mM anhydrous Na2HPO4 (Sigma, S7907) in dH2O (preferably not MilliQ). Adjust pH to 7.0 with NaOH solution (Calbiochem, 567530). | ||
Fetal bovine serum (FBS) | Biowest | S181B-500 | Stock solution at 100X, used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 10X. |
Glutamine | Sigma-Aldrich | G7513-100 | Stock solution at 200 mM, used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 6 mM. |
Sodium pyruvate | Life technologies | 11360-039 | Stock solution at 100 mM, used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 1 mM. |
GlutaMAX Supplement | Life technologies | 35050-061 | Used to prepare 293T culture medium at a final concentration of 1%. |
Penicillin/streptomycin | Sigma-Aldrich | P4458 | Stock solution contains 5,000 units/ml penicillin and 5 mg/ml streptomycin. Used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 1%. |
Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200-056 | With phenol red, contains 2.5 g porcine trypsin and 0.2 g EDTA 4Na/L HBSS. |
Phosphate buffered saline (PBS) | Sigma-Aldrich | D1408 | Without calcium chloride and magnesium chloride, 10X, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture. Stock solution used to prepare 1X PBS in cell culture grade water. |
Polybrene (hexadimethrine bromide) | Sigma-Aldrich | H9268 | Powder. Prepare a 1000X stock solution at 8 mg/ml in dH2O |
Paraformaldehyde EM grade 16% | EM Sciences | 15710 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Part 2: Sterotaxic injection of LV into the SEZ proper or the lateral ventricle. | |||
Equipment: | |||
Vernier stereotaxic instrument | NeuroLab, Leica | 39463001 | |
Cunningham mouse and neonatal rat adaptor | NeuroLab, Leica | 39462950 | |
Syringe holder | KD Scientific | KDS-311-CE | |
33-gauge syringe | Hamilton | P/N 84851/00 | #85RN |
Electric drill | Fine Science Tool | 98096 | |
Thermal blanket | Ufesa | AL5512/01 | 230-240 V, 100-110 W, type C_AL01 |
Shaver | Jata | MP373N | Model: beauty, 3 V, 300 mA, type HT-03. |
Reagents: | |||
Medetomidine | Esteve | DOMTOR | Comercial solution at 1 mg/ml. |
Ketamine | Merial | Imalgene 500 | Comercial solution at 50 mg/ml |
Medetomidina/ketamine mixture | Prepare a working mixture of medetomidine at a final concentration of 0.2 mg/ml dilution and ketamine at a final concentration of 15 mg/ml in saline solution. Use as anesthesia injecting a volume to get a final concentration of 0.5-1 mg medetomidina per kg body weight and 50-75 mg ketamine per kg body weight | ||
Butorphanol | Pfizer | Torbugesic | Stock solution at 10 mg/ml. Used as analgesia at 1 mg/ml in saline solution. |
Atipamezole | Esteve | Antisedan | Stock solution at 5 mg/ml, used in a final concentration of 0.5 mg/ml in saline solution to exit from anesthesia. |
0.9% saline solution | Braun | 13465412 | |
Histoacryl | Braun | 1050052 | Topical skin adhesive |
HydroGel | Clear H2O | 70-01-5022 | |
Kimwipes | Kimberly-Clark | 34120 | 11×21 cm |
Bleach/Virkon | Dupont | ||
Surgical marker pen | Staedler | 313-9 | Permanent lumocolor |
Ophthalmic lubricant | SICCAFLUID | 0.5 g/dosis, carbomer 974P | |
Povidone-iodine | Betadine | 694109.6 | 10% povidone-iodine |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Part 3: Histological analysis. | |||
Equipment: | |||
Automatic peristaltic pump | Cole-Parmer Inst. Co. | HV-07524-55 | Masterflex L/S variable-speed economy drive, 1.6-100 rpm, 230 V |
Pump head | Cole-Parmer Inst. Co. | HV-07518-00 | Masterflex L/S Easy-Load pump head for precision tubing; PSF housing, CRS rotor |
Silicone tube | Cole-Parmer Inst. Co. | HV-96410-16 | Platinum L/S 16 |
Scalp vein set | Vygon V-green | 70246.05T | 25G, 30 cm tube length |
Vibratome | Leica | VT1000 | |
Confocal microscope | Olympus | FluoView FV10i | |
Hot plate | Tehtnica | SHP-10 | |
Reagents: | |||
Phosphate buffer (PB) | 0.2 M PB: 0.2 M Na2HPO4 (Sigma, S7907) and 0.2 M NaH2PO4 (Panreac, 141965.1211) in dH2O, adjust pH to 7.2-7.4 | ||
Paraformaldehyde (PFA) | Panreac | 141451.1211 | Prepare fresh every time. Heat dH2O up to 55–60 °C using a hot plate placed in a fume hood and pour PFA powder while stirring to obtain an 8% solution. The solution is cloudy white as PFA does not dissolve easily. Add 1N NaOH drop by drop just until the solution clears. Cool down, filter through Whatman paper and add an equivalent volume of 0.2 M PB. |
Saline solution | 0.9% NaCl in dH2O | ||
Superglue | LOCTITE | 767547 | |
Sodium azide | Panreac | 122712.1608 | |
Glycine | Sigma-Aldrich | G7126-100 | |
Normal goat serum | Millipore | S30-100 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T9284 | Detergent |
Anti-GFP rabbit antibody | ROCKLAND | 600-401-215 | Use at a 1:500 dilution |
Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) Antibody | Molecular probes | A-21206 | Use at a 1:750 dilution |
6-Diamindino-2-phenylindole dihydrochloride hydrate (DAPI) | Sigma-Aldrich | D9542 | Fluorescent nuclear staining. Use at 2 mg/ml in ddH2O. Keep in the dark at 4 °C. |
Fluoromount-G | EM Sciences | 17984-25 | Mounting medium for fluorescent preparations |