Here we describe a procedure based on the use of lentiviral particles for the long-term genetic modification of neural stem cells and/or their adjacent ependymal cells in the adult ventricular-subventricular neurogenic niche which allows the separate analysis of cell autonomous and non-autonomous, niche-dependent effects on neural stem cells.
Relativement cellules souches somatiques repos appuyer le renouvellement cellulaire long de la vie dans la plupart des tissus adultes. les cellules souches neurales dans le cerveau adulte de mammifère sont limités à deux niches neurogènes spécifiques: la zone sous-granulaire du gyrus denté de l'hippocampe et la zone ventriculaire-ventriculaire (V-SVZ; également appelé zone épendymaire ou SEZ) dans les parois latérales ventricules. Le développement de vivo stratégies de transfert de gène pour les populations de cellules souches adultes (ceux du cerveau des mammifères) résultant de l'expression à long terme de transgènes souhaités dans les cellules souches et de leur descendance issue est un outil essentiel dans la recherche biomédicale et biotechnologique actuelle. Ici, une méthode in vivo directe est présentée pour la modification génétique stable de cellules V-SVZ souris adulte qui tire parti de la cellule indépendante du cycle infection par VL et l'cytoarchitecture hautement spécialisée de la niche de V-SVZ. Plus précisément, le protocole actuel impliques l'injection de volumes logiques vides (témoins) ou VL codant pour des cassettes d'expression spécifique d'un transgène soit dans le V-SVZ lui-même, pour le ciblage in vivo de tous les types de cellules dans la niche ou dans la lumière du ventricule latéral, pour le ciblage des épendymaire cellules seulement. Les cassettes d'expression sont ensuite intégrés dans le génome des cellules transduites et des protéines fluorescentes, également codées par le LV, permettre la détection des cellules transduites pour l'analyse de cellules effets autonomes et non autonomes, niche-dépendante dans les cellules marquées et leur progéniture.
La zone ventriculaire-ventriculaire murin (V-SVZ), dans les parois du ventricule latéral face au striatum, est une région germinal très actif dans lequel un processus continu de réplication de cellules souches et de différenciation des résultats dans la production persistante du bulbe olfactif (OB ) interneurones et les oligodendrocytes corps calleux 1. La génération permanente de ces cellules semble être soutenu par la présence dans la région de cellules neuronales souches (les NSC, également appelées cellules B1), qui expriment l'antigène astrocytaire protéine acide fibrillaire gliale (GFAP) et de la tige marqueurs cellulaires tels que la nestine, Id1 et Sox2 2. GFAP cellules exprimant B1 génèrent transit amplifier progénitrices (TAP) (cellules C), qui expriment les facteurs de transcription Dlx2 (distal-less homeobox 2) et Ascl1 (mammifère Achaete-Schute homologue 1) et de diviser rapidement un certain nombre de fois avant qu'ils ne donnent lieu à la migration des neuroblastes (cellules A) ou oligodendroblasts 3. Nouvellement généré prolifneuroblastes ratives migrent en avant, formant le courant de migration rostrale (RMS) de l'OB, où ils intègrent dans le granulaire et couches glomérulaire interneurones inhibiteurs différenciés. Migration jeunes oligodendroblasts passer à la CC, où ils deviennent des cellules NG2 positif immatures qui continuent de diviser localement ou se différencier en oligodendrocytes myélinisantes matures 1,4.
cellules B1, qui dérivent de cellules gliales radiales fœtales, conservent la morphologie allongée et polarisée de leurs prédécesseurs et présentent une relation hautement spécialisée avec leur niche. Ils couvrent entre l'épendyme qui aligne le ventricule et le réseau de vaisseaux sanguins qui irriguent le créneau de la V-SVZ. Le petit processus apicale des cellules B1 intercale entre ependymocytes multiciliées et se termine en un seul cil primaire non mobiles, alors que leur processus de base étend de longues distances pour approcher le plexus vasculaire plane qui irrigue ce créneau fin dans le basal lamina des capillaires du plexus 2,5-8.
Le moyen le plus fiable de distinguer B1-NSCs des astrocytes non neurogène, qui sont aussi GFAP +, dans le créneau intacte de V-SVZ est basé sur l'ensemble du montage des préparations de la paroi latérale du ventricule et leur analyse par 3-D microscopie confocale après immunocoloration pour GFAP d'étiqueter la mince processus apical B1-NSC, β-caténine pour délimiter les membranes cellulaires, et soit γ-tubuline comme un marqueur de corps basaux ciliaire ou acétylée α-tubuline pour marquer la mesure de chaque cil 5,8. Observations de ces entiers montures de la surface ventriculaire ont indiqué que les cellules B1 et épendymaires sont disposés en "soleils" 5, dans lequel les processus apical uniciliated d'un ou de plusieurs GFAP + B1 cellules sont encerclés par une rosette de cellules épendymaires multiciliées.
La morphologie caractéristique des cellules B1 est en corrélation avec des données expérimentales indicating que les vaisseaux sanguins / cellules endothéliales et ventriculaire liquide céphalo-rachidien (LCR) constituent des sources réglementées de signaux solubles agissant sur NSCs 2,6,9-11. À la surface ventriculaire, homotypique et interactions apico-latérale hétérotypiques impliquant des cellules épendymaires et B1 inclure jonctions serrées et jonctions adhérentes 5,12. En outre, les molécules d'adhésion impliquées dans les complexes de jonction entre les cellules B1 et épendymaires, tels que la N-cadhérine et V-CAM, il a été démontré pour réguler non seulement la mise en place très organisée de B1 dans le créneau de V-SVZ, mais aussi leur quiescence 12 , 13. La monocouche de cellules épendymaires-B1 semble agir comme une barrière de diffusion permettant au flux régulé d'eau et de petites molécules à partir de la peste porcine classique, mais en limitant le passage de grosses protéines intercellulaire 10,11. Des expériences montrent que la cellule B1 cil apical position unique pourrait jouer un rôle en tant que capteur de polypeptides présents dans le LCR 2 de signalisation,7.5. Cellules épendymaires sont, en soi, une source de signaux solubles et membranaires avec un rôle dans la régulation du comportement NSC 14,15.
Traçables nucleosides, tels que bromo-désoxyuridine (BrdU) ou des rétrovirus ont été largement utilisés pour marquer les cellules progénitrices, y compris NSC, in vivo. Cependant, ces procédés ne sont pas optimales pour le traçage destinée à long terme parce que les signaux de BrdU dilué par divisions cellulaires et des retrovirus répétées apparaissent de manière transitoire pour cibler préférentiellement les cellules d'amplification en raison de leur exigence de la prolifération cellulaire de transduction 16,17. Pour examiner NSC physiologie in vivo, y compris les interactions avec des composants de niche, il est crucial d'établir une méthode d'étiqueter et de tracer les cellules en division rarement, comme B1-CSN sont en grande partie de repos et leurs cellules épendymaires voisins ne se divisent dans les conditions physiologiques 3. Ici, nous montrons que les vecteurs lentiviraux (LV) permettent à haut rendement gène marquement et la modification à long terme du CNS adultes et les cellules épendymaires ne se divisant pas, en raison de la plus raisonnable de leur aptitude à la transduction et l'intégration dans le génome des cellules cibles d'une manière indépendante du cycle cellulaire. En outre, nous montrons comment la voie d'administration et virale titre d'aide pour la transduction spécifiquement les cellules épendymaires, mais pas les cellules B1 permettant ainsi l'analyse des effets, épendymaires de niche dépendant sur NSC.
LV offrent des avantages importants par rapport à d'autres systèmes viraux pour la modification génétique des adultes NSCs 16,18. livraison stéréotaxique des lentivirus à la niche de V-SVZ représente une méthode efficace pour étiqueter et tracer rarement divisant B1-CSN surmonter les limites des autres méthodes couramment utilisées telles que BrdU, qui est dilué après de multiples divisions cellulaires, ou rétrovirus, qui ne ciblent les cellules qui prolifèrent au moment de l'applicati…
The authors have nothing to disclose.
Nous reconnaissons l'aide de MJ Palop et l'appui technique de l'SCSIE de l'Université de Valence. Nous remercions également Antonia Follenzi pour leurs précieux commentaires et discussion sur le manuscrit. SI est soutenu par la Fondation Botin, par Banco Santander grâce à son Santander Universities Global Division, et par des subventions de la Generalitat Valenciana (Programa Prometeo, ACOMP et CITI) et Ministerio de Economía y Competitividad (MINECO: SAF2011-23331, CIBERNED et RETIC Tercel) . Ce travail a été également soutenue par BFU2010-21823 et RETIC Tercel subventions de MINECO et le Conseil européen de la recherche (ERC) 2012-STG (260511- PD-HUMMODEL) à AC BM-P. est le destinataire d'un FPI bourse espagnole du MINECO.
Part 1: Generation of LV for in vivo delivery. | |||
Equipment: | |||
Ultracentrifuge | Beckman Coulter | Optima XL-100K | |
Ultracentrifuge rotor | Beckman Coulter | SW-28 | |
Ultracentrifuge rotor | Beckman Coulter | SW-55 | |
Ultracentrifuge tubes | Beckman Coulter | 358126 | 25X89 mm |
Ultracentrifuge tubes | Beckman Coulter | 326819 | 13X51 mm |
Ultracentrifuge adapters | Beckman Coulter | 358156 | |
6-well plate | SPL | PLC-30006 | |
24-well plate | SPL | PLC-30024 | |
10 cm dish | SPL | PLC-20101 | 100×20 style |
FACS tubes | Afora | DE400800 | 12×75 mm, 5 ml |
Cup sterile FACS filter | BD | 340626 | 30 µm |
Nitrocellulose filter | Millipore | SCGPU05RE | 0.22 μm |
Flow cytometer | BD | LSR Fortessa | Blue laser 488 nm |
Steritop filter | Biofil | FPE-204-500 | 0.22 µm |
Reagents: | |||
pMDLg/pRRE plasmid | Addgene | #12251 | Core packaging plasmid |
pRSV.REV plasmid | Addgene | #12253 | Core packaging plasmid |
pMD2G plasmid | Addgene | #12259 | Envelope plasmid |
pRRL-SIN-PPT.PGK.EGFP.Wpre plasmid | Addgene | #12252 | Transfer vector plasmid |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium | Biowest | L0101-500 | For HeLa cell culture |
Iscove's Modified Dulbecco's Medium | Life technologies | 12440-053 | For 293T cell culture |
Tris-EDTA (TE) | Tris-HCl (sigma, T5941), 0.1 mM EDTA (sigma, E5134), pH 7.6, DNAse/RNAse-free, 0.2 µm sterile-filtered | ||
2X HBS | 0.28 M NaCl (Sigma, S7653), 0.05 M HEPES (Sigma, H7523), 1.5 mM anhydrous Na2HPO4 (Sigma, S7907) in dH2O (preferably not MilliQ). Adjust pH to 7.0 with NaOH solution (Calbiochem, 567530). | ||
Fetal bovine serum (FBS) | Biowest | S181B-500 | Stock solution at 100X, used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 10X. |
Glutamine | Sigma-Aldrich | G7513-100 | Stock solution at 200 mM, used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 6 mM. |
Sodium pyruvate | Life technologies | 11360-039 | Stock solution at 100 mM, used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 1 mM. |
GlutaMAX Supplement | Life technologies | 35050-061 | Used to prepare 293T culture medium at a final concentration of 1%. |
Penicillin/streptomycin | Sigma-Aldrich | P4458 | Stock solution contains 5,000 units/ml penicillin and 5 mg/ml streptomycin. Used to prepare HeLa and 293T culture medium at a final concentration of 1%. |
Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200-056 | With phenol red, contains 2.5 g porcine trypsin and 0.2 g EDTA 4Na/L HBSS. |
Phosphate buffered saline (PBS) | Sigma-Aldrich | D1408 | Without calcium chloride and magnesium chloride, 10X, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture. Stock solution used to prepare 1X PBS in cell culture grade water. |
Polybrene (hexadimethrine bromide) | Sigma-Aldrich | H9268 | Powder. Prepare a 1000X stock solution at 8 mg/ml in dH2O |
Paraformaldehyde EM grade 16% | EM Sciences | 15710 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Part 2: Sterotaxic injection of LV into the SEZ proper or the lateral ventricle. | |||
Equipment: | |||
Vernier stereotaxic instrument | NeuroLab, Leica | 39463001 | |
Cunningham mouse and neonatal rat adaptor | NeuroLab, Leica | 39462950 | |
Syringe holder | KD Scientific | KDS-311-CE | |
33-gauge syringe | Hamilton | P/N 84851/00 | #85RN |
Electric drill | Fine Science Tool | 98096 | |
Thermal blanket | Ufesa | AL5512/01 | 230-240 V, 100-110 W, type C_AL01 |
Shaver | Jata | MP373N | Model: beauty, 3 V, 300 mA, type HT-03. |
Reagents: | |||
Medetomidine | Esteve | DOMTOR | Comercial solution at 1 mg/ml. |
Ketamine | Merial | Imalgene 500 | Comercial solution at 50 mg/ml |
Medetomidina/ketamine mixture | Prepare a working mixture of medetomidine at a final concentration of 0.2 mg/ml dilution and ketamine at a final concentration of 15 mg/ml in saline solution. Use as anesthesia injecting a volume to get a final concentration of 0.5-1 mg medetomidina per kg body weight and 50-75 mg ketamine per kg body weight | ||
Butorphanol | Pfizer | Torbugesic | Stock solution at 10 mg/ml. Used as analgesia at 1 mg/ml in saline solution. |
Atipamezole | Esteve | Antisedan | Stock solution at 5 mg/ml, used in a final concentration of 0.5 mg/ml in saline solution to exit from anesthesia. |
0.9% saline solution | Braun | 13465412 | |
Histoacryl | Braun | 1050052 | Topical skin adhesive |
HydroGel | Clear H2O | 70-01-5022 | |
Kimwipes | Kimberly-Clark | 34120 | 11×21 cm |
Bleach/Virkon | Dupont | ||
Surgical marker pen | Staedler | 313-9 | Permanent lumocolor |
Ophthalmic lubricant | SICCAFLUID | 0.5 g/dosis, carbomer 974P | |
Povidone-iodine | Betadine | 694109.6 | 10% povidone-iodine |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Part 3: Histological analysis. | |||
Equipment: | |||
Automatic peristaltic pump | Cole-Parmer Inst. Co. | HV-07524-55 | Masterflex L/S variable-speed economy drive, 1.6-100 rpm, 230 V |
Pump head | Cole-Parmer Inst. Co. | HV-07518-00 | Masterflex L/S Easy-Load pump head for precision tubing; PSF housing, CRS rotor |
Silicone tube | Cole-Parmer Inst. Co. | HV-96410-16 | Platinum L/S 16 |
Scalp vein set | Vygon V-green | 70246.05T | 25G, 30 cm tube length |
Vibratome | Leica | VT1000 | |
Confocal microscope | Olympus | FluoView FV10i | |
Hot plate | Tehtnica | SHP-10 | |
Reagents: | |||
Phosphate buffer (PB) | 0.2 M PB: 0.2 M Na2HPO4 (Sigma, S7907) and 0.2 M NaH2PO4 (Panreac, 141965.1211) in dH2O, adjust pH to 7.2-7.4 | ||
Paraformaldehyde (PFA) | Panreac | 141451.1211 | Prepare fresh every time. Heat dH2O up to 55–60 °C using a hot plate placed in a fume hood and pour PFA powder while stirring to obtain an 8% solution. The solution is cloudy white as PFA does not dissolve easily. Add 1N NaOH drop by drop just until the solution clears. Cool down, filter through Whatman paper and add an equivalent volume of 0.2 M PB. |
Saline solution | 0.9% NaCl in dH2O | ||
Superglue | LOCTITE | 767547 | |
Sodium azide | Panreac | 122712.1608 | |
Glycine | Sigma-Aldrich | G7126-100 | |
Normal goat serum | Millipore | S30-100 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T9284 | Detergent |
Anti-GFP rabbit antibody | ROCKLAND | 600-401-215 | Use at a 1:500 dilution |
Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) Antibody | Molecular probes | A-21206 | Use at a 1:750 dilution |
6-Diamindino-2-phenylindole dihydrochloride hydrate (DAPI) | Sigma-Aldrich | D9542 | Fluorescent nuclear staining. Use at 2 mg/ml in ddH2O. Keep in the dark at 4 °C. |
Fluoromount-G | EM Sciences | 17984-25 | Mounting medium for fluorescent preparations |