Summary

Måling Satser for Ukrudtsmiddel Metabolisme i tokimbladede Ukrudt med en udskåret Leaf Assay

Published: September 07, 2015
doi:

Summary

This manuscript describes how herbicide metabolism rates can be effectively quantified with excised leaves from a dicot weed, thereby reducing variability and removing any possible confounding effects of herbicide uptake or translocation typically observed in whole-plant assays.

Abstract

In order to isolate and accurately determine rates of herbicide metabolism in an obligate-outcrossing dicot weed, waterhemp (Amaranthus tuberculatus), we developed an excised leaf assay combined with a vegetative cloning strategy to normalize herbicide uptake and remove translocation as contributing factors in herbicide-resistant (R) and –sensitive (S) waterhemp populations. Biokinetic analyses of organic pesticides in plants typically include the determination of uptake, translocation (delivery to the target site), metabolic fate, and interactions with the target site. Herbicide metabolism is an important parameter to measure in herbicide-resistant weeds and herbicide-tolerant crops, and is typically accomplished with whole-plant tests using radiolabeled herbicides. However, one difficulty with interpreting biokinetic parameters derived from whole-plant methods is that translocation is often affected by rates of herbicide metabolism, since polar metabolites are usually not mobile within the plant following herbicide detoxification reactions. Advantages of the protocol described in this manuscript include reproducible, accurate, and rapid determination of herbicide degradation rates in R and S populations, a substantial decrease in the amount of radiolabeled herbicide consumed, a large reduction in radiolabeled plant materials requiring further handling and disposal, and the ability to perform radiolabeled herbicide experiments in the lab or growth chamber instead of a greenhouse. As herbicide resistance continues to develop and spread in dicot weed populations worldwide, the excised leaf assay method developed and described herein will provide an invaluable technique for investigating non-target site-based resistance due to enhanced rates of herbicide metabolism and detoxification.

Introduction

Herbicidresistens i ukrudt udgør en alvorlig trussel mod den globale produktion af fødevarer og fibre 1,2. I øjeblikket tusindvis af resistente populationer og biotyper fra over hundrede ukrudtsarter verdensplan er blevet dokumenteret og studeret 3. En væsentlig mekanisme, der giver herbicidresistens i planter er ændringen af herbicid target-site gener og proteiner, herunder genetiske mutationer, der påvirker herbicid-proteinbindende kinetik eller amplifikation af target-site-gen 2. Metabolisk afgiftning via forhøjede aktiviteter af cytochrom P450 monooxygenase (P450) eller glutathion S transferase (GST) enzymer er en anden mekanisme, som giver herbicidresistens i ukrudt, som er forskellig på flere måder fra target-site-mekanismer 2. Metabolisk-baserede modstand har betydelige konsekvenser for, om planter fitness omkostninger (aka fitness sanktioner) kan resultere fra herbicid-resistens mechanism, samt om potentialet for en enkelt afgiftning mekanisme til at bibringe tvær- eller flere herbicidresistens i ukrudt populationer 1,2,4. Generelt kan herbicid metabolisme i planter opdeles i tre særskilte faser 5. Fase I involverer herbicid konvertering eller aktivering, såsom P450-medieret hydroxylering af aromatiske ringe eller alkylgrupper, eller ved N – eller O- dealkyleringsprodukter reaktioner, der fører til øget polaritet og delvis herbicid afgiftning 5,6. Nyligt indførte funktionelle grupper i fase I kan give sammenkædning websteder for konjugering til reduceret glutathion ved GST'er eller glucose ved UDP-afhængige glycosyltransferaser i fase II 5,7. For eksempel, de store oprindelige metabolit primisulfuronmethyl i majs er hydroxy-primisulfuronmethyl 8, som yderligere kan metaboliseres til hydroxy-primisulfuron-glucosid (fase II) og derefter transporteres til vacuolen til opbevaring langvarig eller yderligere metabolisk probejdning 5,6 (fase III).

Waterhemp (Amaranthus tuberculatus) er en vanskelige at kontrol, tokimbladede årlige ukrudtsarter, der hindrer produktionen af majs (Zea mays), sojabønne (Glycine max), og bomuld (Gossypium hirsutum) i USA. Den høje grad af genetisk diversitet waterhemp lettes ved sin tvebo biologi og langdistance-vind bestøvning, og en enkelt kvindelig waterhemp plante kan producere op til en million frø 9. Disse frø er små og let spredes, hvilket naturligvis udstyre waterhemp med en effektiv spredningsmekanisme. Waterhemp viser løbende spiring hele vækstsæsonen 9, og dens frø er i stand til at spire efter flere års dvale. Waterhemp er en C4 plante, der har en højere vækstrate end de fleste bredbladet ukrudt i dyrkede dyrkningssystemer 10. Desuden har mange waterhemp populationer er resistente over for multiple families af herbicider 3.

En population af waterhemp (betegnet MCR) fra Illinois er resistent over for 4-hydroxy-phenylpyruvate dioxygenase (HPPD) hæmmende herbicider 11, såsom mesotrion, samt atrazin og acetolactatsyntase (ALS) hæmmende herbicider, herunder primisulfuronmethyl på grund af ikke-mål-site mekanismer 12,13. En anden population af waterhemp betegnet ACR 14, som er primisulfuronmethyl-resistente (som følge af en mutation i ALS-genet) og atrazin-resistente, men følsomt over for mesotrion, og en waterhemp population udpeget WCS 14, der er følsom over for primisulfuronmethyl, mesotrion, og atrazin blev anvendt i sammenligning med MCR i vores tidligere forskning 12 og aktuelle forsøg (opsummeret i tabel 1). Indledende undersøgelser ikke påvise ændringer i HPPD gen sekvens eller ekspressionsniveauerne eller reduceret mesotrion optagelse i MCRbefolkning sammenlignet med mesotrion følsomme befolkningsgrupper 12. Men metabolisme med hele planter viste signifikant lavere niveauer af forældre mesotrion herbicid i MCR i forhold til ACR og WCS, som korreleret med tidligere fænotypiske svar til mesotrion 11,12.

Waterhemp Befolkning Forkortelse Fænotype mesotrion Mesotrion Resistance Mechanism Fænotype primisulfuron Primisulfuron Resistance Mechanism
McLean County-Resistant MCR Resistent Metabolisme * Resistent Metabolisme
Adams County-Resistant ACR SenSitive Resistent Target-site mutation i ALS 14
Wayne County-Sensitive WCS Følsomme Følsomme

* Ikke-target-site resistensmekanismer, bortset forbedret stofskifte, kan også bibringe mesotrion modstand i MCR befolkning 12.

Tabel 1: Beskrivelse af waterhemp populationer fra Illinois anvendt i denne undersøgelse.

Ud over at bestemme satserne for herbicid metabolisme i intakte waterhemp kimplanter, blev en anden eksperimenterende tilgang udviklet og anvendt i vores tidligere forskning for at undersøge metabolisme ved hjælp af en udskåret waterhemp blad assay 12 samt forskellige P450-hæmmere (f.eks tetcyclacis og malathion). Denne fremgangsmåde blev tilpasset specielt til waterhemp fra en tidli-skellige undersøgelse af primisulfuronmethyl metabolisme i udskåret majs blade 15, da det udskårne blade assay endnu ikke var blevet rapporteret for udførelse herbicid metabolisme forskning i en tokimbladet plante. Den organophophosate insekticid malathion er ofte blevet brugt til in vivo og in vitro herbicid-metabolisme forskning for at angive P450 engagement 16. For eksempel, tolerance og hurtig metabolisme af mesotrion i majs skyldes P450-katalyseret ring hydroxylering, som blev kontrolleret, når malathion øget følsomhed over for majs mesotrion 17. Tilsvarende malathion hæmmede metabolisme af ALS-hæmmer primisulfuron-methyl i udtaget majs blade 15. En stor fordel ved den udskårne blade teknik er, at data, der genereres er uafhængige af hel-plante translokation mønstre, at en vigtig faktor at overveje ved vurderingen metabolisme af systemiske, postemergente herbicider i planter. Derfor er denne metode tillader kvantitativ ogkvalitative metaboliske analyser til at fokusere på en enkelt behandlet blad 12.

En vegetativ kloning strategi, i kombination med det udskårne blade protokollen, er tidligere anvendt i waterhemp at gennemføre metabolismeundersøgelser 12. På grund krydsningspotentiale natur waterhemp (separat mandlige og kvindelige planter), og høj grad af den genetiske mangfoldighed inden for tvebo Amaranthus arter 9, denne protokol sikres, at genetisk identiske waterhemp kimplanter blev analyseret inden for tidsforløbet eksperimenter. Denne artikel viser nytten af ​​det udskårne blade metode til måling satser herbicid metabolisme i en tokimbladet ukrudt (waterhemp). Mængden af forælder herbicid resterende blev bestemt ved hvert tidspunkt (figur 1) ved ikke-lineær mindste kvadraters regressionsanalyse, og er udstyret med et simpelt første ordens kurve med henblik på at estimere tiden for 50% af det absorberede herbicid til at nedbryde ( DT 50). Repræsentantkromatogrammer fra omvendt fase højtydende væskekromatografi (RP-HPLC) vises for ALS-resistente og -følsom waterhemp populationer, der angiver forsvinden forælder herbicid og samtidig dannelse af polære metabolit (ter) i en tidsforløbet undersøgelse (figur 2). Fokus i vores artikel er at beskrive og demonstrere anvendeligheden af det udskårne blade analysen i kombination med en vegetativ kloning metode til bestemmelse præcise og reproducerbare satser for herbicid metabolisme i tokimbladede planter, ved hjælp af ensartet ring-mærket (URL- 14C) herbicider i tre waterhemp befolkninger, der adskiller sig i deres hel-plante reaktioner på HPPD- og ALS-hæmmende herbicider (tabel 1).

Protocol

1. Plant Materiale, vækstbetingelser, og vegetativt Kloning Bemærk: Tre waterhemp populationer blev undersøgt i denne forskning: MCR (fra McLean County, IL), ACR (fra Adams County, IL), og WCS (fra Wayne County, IL) (Tabel 1). Indsamle og suspendere waterhemp frø i 0,1 g L -1 agar: vandopløsning ved 4 ° C i mindst 30 dage til at øge spiring. Bemærk: Nogle waterhemp populationer er i dvale, men dette skridt hjælper til at overvinde vækstdvale o…

Representative Results

Blev påvist store forskelle i satserne for mesotrion stofskifte mellem enten WCS eller ACR og MCR (figur 1). På hvert tidspunkt, havde MCR metaboliseret mesotrion hurtigere end de to mesotrion følsomme befolkningsgrupper, WCS og ACR, som korrelerer med tidligere hel-plante fænotypiske responser 11. Ved kloning nok planter fra en enkelt parental plante fra hver population, herbicid metabolisme tidsforløb analyser er ensartede og reproducerbare på grund af mangel på genetisk variabilitet…

Discussion

Den heri beskrevne udskåret-blad metode er blevet anvendt tidligere i forskning primisulfuron metabolisme i majs blade 15, men vores resultater viser, at denne protokol er også effektiv, nøjagtig og reproducerbar til måling herbicid metabolisme i en tokimbladede ukrudtsarter 12. En stor fordel ved den udskårne blade teknik i forhold til hel-plante undersøgelser er, at en udskåret blad er uafhængig af hel-plante translokation mønstre af postemergent, systemiske herbicider eller forskelle i …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Wendy Zhang, Austin Tom, Jacquie Janney, Erin Lemley, and Brittany Janney for assistance with plant growth and extractions, Dr. Anatoli Lygin for assistance with chromatographic analyses, and Syngenta Crop Protection for funding.

Materials

Agar Sigma-Aldrich A1296 for pre-germinating seeds
Potting medium Sun Gro Horticulture 49040233 for plant growth
Nutricote Agrivert  TOTAL BLEND 13-13-13 T100 slow-release fertilizer
Growth chamber E15 Controlled Environments Limited 20207 plant culturing
Tris base Fisher Scientific BP152-500 buffer for excised leaves
HCl (concentrated) Fisher Scientific A144500 adjust pH of buffer
Murashige and Skoog (MS) salts  Sigma-Aldrich M0404 incubation of excised leaves
Methanol Fisher Scientific A452-4 leaf washes after incubation
Acetone Sigma-Aldrich 179124 plant extractions
Acetonitrile (HPLC grade) Macron Fine Chemicals MKH07610 HPLC mobile phase
Formic acid  Mallinckrodt Analytical MK259205 acidify mobile phase pH
Micro-centrifuge Eppendorf 5417R 1.5 or 2.0 mL tubes
Centrifuge (temperature controlled) Eppendorf 5810R 15 or 50 mL tubes
Polypropylene centrifuge tube Corning Inc. 430790 15 mL, sterile
Rotary evaporator BÜCHI R200 concentrate plant samples
Liquid scintillation spectrometry (LSS) Packard Instruments 104470 quantify 14C
High-performance liquid chromatography Perkin Elmer N2910401 resolve herbicide metabolites
Flow scintillation analyzer  LabLogic System 1103303 for HPLC analysis of 14C
Hypersil Gold C18 column  Thermo-Scientific 03-050-522  reversed phase
Ultima-Flo M cocktail Perkin Elmer 6013579 for Flow-scintillation analyzer
Scintillation Cocktail (ScintiVerse BD) Fisher Scientific SX18 for LSS; biodegradable
Laboratory homogenizer Kinematica CH-6010  homogenize leaf samples

Referencias

  1. Yu, Q., Powles, S. Metabolism-based herbicide resistance and cross-resistance in crop weeds: A threat to herbicide sustainability and global crop production. Plant Physiology. 166, 1106-1118 (2014).
  2. Powles, S. B., Yu, Q. Evolution in action: plants resistant to herbicides. Annual Reviews in Plant Biology. 61, 317-347 (2010).
  3. Heap, I., et al. Global perspective of herbicide-resistant weeds. Pest Management Science. 70 (9), 1306-1315 (2014).
  4. Délye, C., et al. Non-target-site-based resistance should be the centre of attention for herbicide resistance research: Alopecurus myosuroides as an illustration. Weed Research. 51 (5), 433-437 (2011).
  5. Kreuz, K., Tommasini, R., Martinoia, E. Old enzymes for a new job. Herbicide detoxification in plants. Plant Physiology. 111, 349-353 (1996).
  6. Riechers, D. E., Kreuz, K., Zhang, Q. Detoxification without intoxication: herbicide safeners activate plant defense gene expression. Plant Physiology. 153, 3-13 (2010).
  7. Siminszky, B. Plant cytochrome P450-mediated herbicide metabolism. Phytochemistry Reviews. 5 (2-3), 445-458 (2006).
  8. Fonné-Pfister, R., et al. Hydroxylation of primisulfuron by an inducible cytochrome P450-dependent monooxygenase system from maize. Pesticide Biochemistry and Physiology. 37 (2), 165-173 (1990).
  9. Steckel, L. E. The dioecious Amaranthus spp.: here to stay. Weed Technology. 21 (2), 567-570 (2007).
  10. Horak, M. J., Loughin, T. M. Growth analysis of four Amaranthus species. Weed Science. 48 (3), 347-355 (2000).
  11. Hausman, N. E., et al. Resistance to HPPD-inhibiting herbicides in a population of waterhemp (Amaranthus tuberculatus) from Illinois, United States. Pest Management Science. 67 (3), 258-261 (2011).
  12. Ma, R., et al. Distinct detoxification mechanisms confer resistance to mesotrione and atrazine in a population of waterhemp. Plant Physiology. 163, 363-377 (2013).
  13. Guo, J., et al. Non-target-site resistance to ALS inhibitors in waterhemp (Amaranthus tuberculatus). Weed Science. in press, (2015).
  14. Patzoldt, W. L., Tranel, P. J., Hager, A. G. A waterhemp (Amaranthus tuberculatus) biotype with multiple resistance across three herbicide sites of action. Weed Science. 53 (1), 30-36 (2005).
  15. Kreuz, K., Fonné-Pfister, R. Herbicide-insecticide interaction in maize: malathion inhibits cytochrome P450-dependent primisulfuron metabolism. Pesticide Biochemistry and Physiology. 43 (3), 232-240 (1992).
  16. Correia, M. A., Ortiz de Montellano, P. R., Ortiz de Montellano, P. R. . Cytochrome P450: Structure, Mechanism, and Biochemistry. , 247-322 (2005).
  17. Hawkes, T. R., et al. Mesotrione: mechanism of herbicidal activity and selectivity in corn. Proceedings of the Brighton Crop Protection Conference – Weeds. 2, 563-568 (2001).
  18. Patzoldt, W. L., Tranel, P. J., Hager, A. G. Variable herbicide responses among Illinois waterhemp (Amaranthus rudis and A. tuberculatus) populations. Crop Protection. 21 (9), 707-712 (2002).
  19. Jalaludin, A., Yu, Q., Powles, S. B. Multiple resistance across glufosinate, glyphosate, paraquat and ACCase-inhibiting herbicides in an Eleusine indica population. Weed Research. 55 (1), 82-89 (2015).
  20. Iwakami, S., et al. Cytochrome P450 CYP81A12 and CYP81A21 are associated with resistance to two acetolactate synthase inhibitors in Echinochloa phyllopogon. Plant Physiology. 165, 618-629 (2014).

Play Video

Citar este artículo
Ma, R., Skelton, J. J., Riechers, D. E. Measuring Rates of Herbicide Metabolism in Dicot Weeds with an Excised Leaf Assay. J. Vis. Exp. (103), e53236, doi:10.3791/53236 (2015).

View Video