This protocol describes a system architecture for performing automated small volume (0.15–1.5 ml) particle separations using a microfluidic device, and discusses methods to optimize acoustofluidic device performance and operation.
Основным преимуществом является микрожидкостных устройств способность манипулировать малые объемы проб, тем самым уменьшая реагента отходов и сохранить драгоценный образец. Тем не менее, для достижения надежной манипуляции образца необходимо обратиться интеграцию устройств с макромасштабном среды. Для реализации повторяемые, чувствительный разделение частиц с микрофлюидных устройств, этот протокол представляет полный автоматизированный и интегрированный микрожидкостных платформу, которая позволяет точно обработку 0.15-1.5 мл образцов с использованием микрожидкостных устройств. Важные аспекты этой системы относятся макет модульное устройство и надежные приборы результате в надежного и гибкого мире чип соединений, и полностью автоматизированную обработку жидкости, которая завершала отбор проб с замкнутым контуром, уборка системы и грунтовки меры для обеспечения повторяемые операции. Различные микрофлюидальные устройства могут быть использованы взаимозаменяемо с этой архитектуры. Здесь мы включаем в acoustofluidic устройство, подробно его characterizвания, оптимизации производительности, а также продемонстрировать его использование для размера сепарации биологических образцов. С помощью обратной связи в режиме реального времени во время экспериментов по выделению, сбор образцов оптимизирован для сохранения и сосредоточиться образца. Несмотря на то, требующих интеграции нескольких единиц оборудования, преимущества этой архитектуры включают в себя возможность обработки неизвестных образцов без дополнительной оптимизации системы, легкость замены устройств и точный, надежный обработки образца.
Разделение образца и фракционирования является одним из наиболее перспективных областей применения для микрофлюидных технологий. Такие шаги подготовки пробы являются неотъемлемой эффективных клинической диагностики, терапевтического развития, усилия биомониторингу, и прогресс в области наук о жизни исследований и технологий. Несметное микрофлюидных стратегии разделения были продемонстрированы жидкостью взвешенных частиц и коллоидов, а также для химических и биологических видов; несколько обзоров дается обзор недавних прогрессе и событиях в этих областях 1 – 9. Хотя многие из этих микрофлюидных технологий разделения (далее именуемые «Основные устройства") были широко охарактеризованы, несколько докладов считаются проблема разделения образца на системном уровне. Базовые устройства, как правило, отдельные сантиметрового масштаба фишки, сопряженные с фторполимерной трубки, с жидкости, подаваемой смещение или давления насоса.Тем не менее, если обещание микрофлюидики – включая увеличение автоматизации, надежности и снижение объемов выборки – это стало реальностью, по крайней мере, эквивалентный усилия должны быть направлены на проектирование полного разделения системы, в которую Основной устройство интегрировано ,
Кроме того, серьезной проблемой для микрофлюидных подходов к biodetection макрос для микро-интерфейс. Это относится не только к физическим "Мир-в-чипе" связей микрожидком устройства к макромасштабных компонентов и несоответствие между типичными объемов клинических или аналитический образец (~ 0,1-10 мл) и внутреннего объема микрофлюидных чипов (~ 0,01-10 мкл), но также статистических ограничений, вытекающих из выборки преодоления этих размеров весы. Эти вопросы способствуют восприятию, что образец предварительной обработки и подготовки являются "слабым звеном" в biodetection. 10 Платформа описанной в этой работе таKES основные шаги в направлении решения этих проблем.
Принимая вид на системном уровне, этот протокол детализирует надежную обработку точно отмеренных объемов-аналитическая масштаба (начиная от 0,15 до 1,5 мл) на ~ 10-минутных временных масштабах. Это операция "одной кнопкой": как только источник флакон, содержащий образец и назначения флаконов для сбора фракции размещаются в систему, команда "Выполнить" инициирует процедуру, и все шаги, контролируется компьютером. В конце прогона, флаконы для сбора может быть удален из системы для последующего анализа разделенных фракций.
Ядро устройства в этой системе является чип acoustophoresis который извлекает млекопитающих частиц (5-20 мкм) клетки размером от образца. Acoustophoretic разделение выбрали здесь, прежде всего, потому что это с высокой пропускной (до 100е мкл / мин), этикетки-бесплатно, и бесконтактные, таким образом предлагая преимущества в разделении жизнеспособной ViruSES из клеток, что несколько других микрофлюидных методы могут совпадать. Физика акустической частицы фокусировки были подробно описаны, 11 – 13 и не являются предметом данного протокола, но краткое изложение основных концепций следует помочь в понимании приложение к микрожидкостных разделения.
Ультразвуковые стоячие волны резонирующие в заполненных жидкостью микроканалов производить поля давления, которые порождают силы, которые управляют частицы к узлам низкого давления. Сила величина зависит от объема частицы, а на акустической коэффициент контрастности, полученной из относительных плотностей и сжимаемости частицы и суспендирующей жидкости. 14 По существу, акустические фокусировки идеально подходит для разделения клеток размера (~ 7-15 мкм) от вирусных размера (~ 50-200 нм) частиц. Более крупные частицы мигрируют в сторону узла давления; Однако, так как сила величины очень малы дляЧастицы менее 2-3 мкм, Эти мелкие частицы, растворенные или видов вряд ли двигаться вообще. Наша конкретная реализация акустического разделения, как описано выше, включает в себя 15 тонкую стенку разделить канал жидкости и позволяет перестраиваемый асимметричный размещение положении фокусировки. Это добавляет гибкости в конструкции прибора, и производительность преимущества, в том числе повышения качества разделения и скорости-полностью описаны в другом месте. 16,17
Тем не менее, одним из основных преимуществ проектного подхода на уровне системы, описанной в данной работе является то, что адаптируется к большим разнообразием микрофлюидных основных узлов. Например, большинство других режимов разделения непрерывного потока, в том числе инерциальной, поток поля фракционирования, детерминированной бокового смещения (DLD), и различных типов электрокинетических устройств могут быть легко включены, с соответствующими корректировками сделал для учета изменений в конфигурации на входе / выходе , расход,и образец тома. Устройства с различными типами на-чипе полей (электрических, магнитных) или градиентов (тепловые, химические) могут потребоваться дополнительные соединения с чипом, или интеграции дополнительного оборудования, который вмещает эта платформа.
Этот протокол обеспечивает шаги, необходимые для разработки микрожидкостных устройство разделения, и для изготовления кремния стеклянных осколков глубокой реактивного ионного травления (DRIE, процесс плазменной травления доступные во многих учреждениях микроструктур, который использует чередующихся циклов травления и пассивации, чтобы достичь глубокого функции с вертикальным боковым стенкам 18). Далее, мы опишем характеристику acoustofluidic устройства, чтобы определить оптимальные параметры работы отделения и, наконец, подробно полностью интегрированная система сепарации, а также порядок обработки биологических образцов. Типичные результаты характеристика устройства и обработка данных выборки затем представлены и обсуждены, и ключевые преимущества этого утверждения предметовACH выделены, в том числе модульность, надежность, точность и автоматизации.
Этот протокол представляет интеграцию на уровне системы микрожидкостных устройств к макромасштабном оборудования для выполнения автоматизированной обработки биологической пробы. Модульность этой платформы позволяет быть адаптированы к любой непрерывной устройства потока, и, в качестве примера, представленный протокол фокусируется на характеристики и оптимизации производительности на acoustofluidic устройства для разделения частиц. Три основные преимущества этого протокола выделены: (я) модульность и чип-в-мире интерфейсов, (II) надежная характеристика работы устройства и (III) автоматизированная обработка точно дозированных объемов выборки для разделения частиц.
я. Модульность и чип-в-мире сопряжения
Как показано на рисунке 2, Микрожидкостных чип установлен на плате пользовательского легко помещается на столик микроскопа для непосредственного наблюдения. Макетная содержит # 6-40 UNF резьбовые отверстия на 5 мм шаг сетки, ENAпобрякушки чип быть обеспечено, и соединения жидкости, чтобы быть сделаны. Жидкость соединения PEEK трубки с обработанными концами, которые уплотняют против жидкостного чипа с резиновой лица уплотнения прокладки и втулка из нержавеющей стали. Эта схема интерфейса делает для легкой замены чипа и быстрого реконструкции устройств, требующих мало или каких-либо изменений в других компонентов системы, при условии, следы чип соответствовать формату сетки. Например, мы использовали эту платформу с микрофлюидных чипов для электрофореза непрерывного потока, лизис клеток, тепловой 29 быстрого смешивания реагентов для химического синтеза, и захвата одноклеточного и допроса.
II. Прочная характеристика работы устройства
Для того, чтобы оптимизировать производительность любой микрожидкостных разделительного устройства, его работа должна быть сначала тщательно характеризуется. Описанная система здесь поддерживает развитие быстрых и автоматизированных протоколов, чтобы сделать это. Для конкретного exampле акустических фокусировки устройств, качество фокусировки, рабочей частоты и положения, ориентированных частиц в микрожидкостных канала должна быть измерена для каждого отдельного устройства. Эти измерения требуют радикальных через ряд пьезокерамический приводных частот, напряжений и скоростей потока, чтобы определить оптимальные комбинации параметра для разделения высокого качества. Представленный протокол автоматически изменяется эти настраиваемые параметры и захватывает соответствующий данные- т.е. флуоресцентные изображения частиц, проходящих в канале, которые после обработки для получения необходимых измерений частицы качество фокусировки, частоту и положение (рисунок 3).
Полное характеристика производительности акустическое устройство требует повторения шагов 4.4 и 4.5 в случае необходимости в различных экспериментальных условиях. Например, абсолютный положение фокусировки чипе находится выполнив частоты сканирования при относительно низких скоростях потока и высокого напряженияс для обеспечения полного перехода на месте узла. Кроме того, такая частота сканирования могут оценить качество сборки устройства (при запуске с полистирольных шариков известного размера), или определить, как ранее неизвестный тип частиц будет вести себя в системе (после чип характеризуется бисером). Чип с хорошей передачи энергии от пьезокерамики на микрожидкостных канала приведет к жесткой фокусировки при высоких скоростях потока (> 1 мл / мин) и низких напряжениях (12-15 В п.п.), в то время как те, с плохой передачи энергии не будет уделять еще при низких скоростях потока (<100 мкл / мин) и высоких напряжений (> 20 В п.п.). Мы обнаружили, что тесный контакт между микрожидкостных чипом и пьезокерамики является критическим для эффективной передачи энергии в жидкость. Дальнейшее исследование оптимального метода склеивания микрожидкостных чип и пьезокерамических позволит надежное производство устройств высокопроизводительных.
Наконец, полнаякартина эксплуатацию acoustophoretic устройства могут быть получены путем комбинирования изображения на основе измерений частоты развертки на шаге 4 (фиг.3) с числом частиц, собранных из ПОФ и ПОЛ как функции соответствующих рабочих параметров, от экспериментов по выделению, проведенных с микросферами , как описано в шаге 5. Как показано на фиг.6, такой ряд автоматизированных экспериментов может быстро характеризуют производительность отдельного устройства и перестройки частоты, информирующее пользователя оптимального пространства параметров для управления устройством для отделения частиц.
III. Автоматизированная обработка мелких образец для разделения частиц
Для успешного и точной микрожидкостных чип на основе обработки образца, важно, чтобы надежно и точно метр, нагрузка, доставить, и собирать объемы жидкости, как они проходят через. Эта точность особенно важно, когда объем выборки мал(~ 0,1-1 мл), который является общим в клинических или исследовательских лабораторных условиях. 30 Точная обработка образца является сложной задачей в традиционных микрофлюидных экспериментов, которые используют ручной вывод образца в шприц и вливания в устройстве с без обратной связи, когда образец была отделена и когда он должен быть собран. Представленный протокол нанимает автоматизированная образец катушки нагрузки и дозировке в сочетании с обратной связью в режиме реального времени от датчиков расхода для того, чтобы воспроизводимые разделения малых объемов проб.
Рисунок 5 показывает профили потока, измеренные на SPO и ПОЛ от типичного эксперимента разделения. Во-первых, что приводит буфер, по крайней мере 35 мкл загружен, чтобы обеспечить стабильный поток, прежде чем образец достигает акустического чип. Примеры объемы меньше, чем 100 мкл не рекомендуется для данной конфигурации системы, потому что разведение образца в связи с ведущим буфера становится чрезмерным. Вилка воздуха используется в начале гое инъекции перед ведущим буфера для разделения образца вилку из жидкости, который следует, предотвращая смешивание и разбавление образца и выступающей в качестве индикатора к датчикам потока. После начального переходного качестве жидкости начинает движение через систему, острые сигналы шипованные у обоих выходов указывают прохождение первого воздушного пузыря. Эти переходные следуют длительного периода стабильного потока в образец протекает через систему, а затем еще шип, когда второй воздушный пузырь проходит, и, наконец, в конечном итоге снижение расхода до нуля после остановки шприцевой насос.
Прохождение пробки воздуха через расходомерами используется в качестве триггерных точек для переключения клапанов для запуска и остановки сбора проб, тем самым минимизируя потерянного образца и разбавление образца без объемов жидкости. Замкнутый контур дозирующего обработанных объемов образцов исключает необходимость перепрограммировать эти значения до начала эксперимента каждый раз, когда входная выборка изменяется. Эта функцияособенно важно, когда объем образца ограничен, например, в случае многих клинических образцов. Контроль потока в реальном времени также помогает в устранении неполадок; плохой запуск (например, забивают формирования в одной из торговых точек) сразу видно, из полученных профилей потока, как показано на рисунке 5б.
Чтобы продемонстрировать гибкость и эффективность acoustofluidic разделения, используя представленную архитектуру системы, очищенный DenV и вирусных запасы GGV вносили в акции клеток и разделены обработки через микрожидкостных чипа. 7а показывает, что Raji клетки хорошо отделяется от вирусов, а 97 % от Raji клеток, выходящих чип оказались в ЛПО, тем самым оставляя обогащенного образца DENV в SPO. Для сравнения, эффективность разделения DENV была ниже, с 70% DENV выхода чипа, найденный в SPO. Это может быть связано с небольшим конвективного перемешивания, вызванного витками separatiна канале, но, скорее всего, некоторые частицы DenV мигрирующих вместе с клетками Raji в ПОЛ. Клетки, мигрирующие поперек тока перетащите немного жидкости с ними, даже при низкой числа Рейнольдса. По этому механизму, а также неспецифической адсорбции на поверхности, вирусные частицы передачи в ПОЛ. Тем не менее, обогащенного образец DENV в SPO является существенным преимуществом, например, если заново последовательности используется для обнаружения и идентификации вирусов.
7, б показывает, что в одной экспериментальной перспективе, только около 70% от Boa клеток, выходящих из чипа были найдены в LPO, по сравнению с почти 100% эффективности сепарации для Raji клеток. Разница в производительности разделения между двумя типами клеток может быть связано с меньшим средним размером или меньшей плотностью Boa клеток по сравнению с клетками Raji, поэтому в результате меньших акустических сил. Чтобы подтвердить или опровергнуть эти предположения, размер, плотность и морфологию Boaклетки в суспензии (которые обычно растут приверженцем) Боа клеток должны быть точно измерена, усилия для дальнейшего расследования. В тех же экспериментах, аналогично экспериментах с DENV, основная часть извлеченного GGV выходе из SPO, что указывает на обогащение вирусной фракции.
Представленные данные подчеркивают присущие проблемы инженерных широко применяемых платформ-за обработки различных биологических образцов. Важно отметить, что биологические взаимодействия могут начать играть такой роли, как физических и механических воздействий. Тем не менее, эти предварительные эксперименты также продемонстрировать силу и перспективы использования этой архитектуры системы для обработки образцов в клинических и научно-исследовательских приложений. В прочном, хорошо характеризуется инженерно-технической системы, эта платформа обеспечивает возможность искать ответы на новые научные вопросы.
The authors have nothing to disclose.
This work was performed under the auspices of the U.S. Department of Energy by Lawrence Livermore National Laboratory under Contract DE-AC52-07NA27344, and partially supported by LLNL’s Laboratory Directed Research and Development (LDRD) program, 14-LW-077. The authors thank Michael Wilson, Mark Stenglein and Joe DeRisi at the Univeristy of California, San Francisco for generously providing GGV and Boa cell samples. EJF acknowledges support from the LLNL Lawrence Scholar Graduate Program. MS acknowledges support from the UC Office of the President Lab Fees Research Program. LLNL-JRNL-665235
Materials required for Steps 1-3: Device Design, Fabrication and Assembly | |||
Double Sided Polished Silicon Wafer | Silicon Quest International, Inc. San Jose, CA, USA | 100 mm <100> prime wafer | 1-20 ohm-cm, 495 +/- 25µm Double-side polished |
Glass Wafer | Bullen Ultrasonics, Eaton, OH, USA | 100mmx0.5mm Boro | |
Photoresist, AZ 1518 | MicroChemicals GmbH, Ulm, Germany | AZ 1518 | Photoresist used to adhere wafer to blank wafer for DRIE etching |
Photoresist, AZ 4620 | MicroChemicals GmbH, Ulm, Germany | AZ 4620 | Photoresist to define fluidic and via mask patterns |
DRIE plasma etcher | STPS, Newport, NP, United Kingdom | Multiplex Advance Oxide Etch (AOE) ICP system | |
Wafer Bonder | Electronic Visions Group, St.Florian am Inn, Austria | EVG 501 | |
Dicing saw | Kulicke & Soffa Industries, Singapore | K&S 982 | |
Epoxy kit | Epoxy Technology, Billerica, MA, USA | EPO-TEK 301 | Epoxy used to couple piezo and microfluidic chip |
PZT piezoceramic | Piezo Systems, Woburn, MA, USA | PSI-5A4E | 37.5 × 10 × 0.5 mm |
28 AWG Kynar-insulated solid wire | Squires Electronics, Cornelius, OR, USA | UL1422 | |
2-part silver epoxy | MG Chemicals, Surrey, BC, Canada | 8331 | Conductive adhesive for attaching wire leads to PZT |
L-edit | Tanner EDA, Monrovia, CA, USA | Ledit v15.1 64-bit | CAD software for mask layout |
Materials required for Step 4: Characterizaiton of Acoustic Focusing Performance | |||
Dual Pump | Harvard Apparatus, Holliston, MA, USA | PHD ULTRA Series, 703007 | |
5ml syringes | Becton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA | 309646 | |
Luer to Threaded port adapter | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-659 | Connects syringe to tubing |
Union | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-623 | Connects world to chip connections to fluoropolymer tubing. Can also use webbed |
Ferrule 1/4-28 flat bottom | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-200 | Used with nut to make connections between tubing and syringe, flow sensors and world to chip hardware |
Nut 1/4-28 flat bottom | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-202 | Used with ferrule to make connections between tubing and syringe, flow sesnsors and world to chip hardware |
1/16" OD Fluoropolymer tubing | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | 1912L | Tubing to connect syringe pumps to world to chip connections. Tubing size is not critical during claibration steps (.01-.03" ID typically used, other suitable part numbers: 1907L, 1902L). |
Small ID fluoropolymer tubing | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | 1476-20 | Used for Flow restrictors: 0.006" ID, 1/16" OD FEP |
PEEK tubing | Connects from chip to fluoropolymer tubing. | ||
Cooling fan | Multicomp, Leeds, England | MC19663 | |
Function Generator | Agilent, Santa Clara, CA, USA | 33220A | |
RF amplifier | ENI, Rochester, NY | 325 LA | Must be able to amplify signals from <1V in the range of 1-2MHz to 25 Vpp to the piezo. |
CCD Camera | Photometrics, Tucscon, AZ, USA | CoolSnap HQ | |
Inverted Microscope | Zeiss, Oberkochen, Germany | Axiovert S100 | |
FITC filter set | Chroma Tech, VT, USA | SP101 | |
Objective, 10x | Zeiss, Oberkochen, Germany | ACHROPLAN | |
Oscilloscope | Tektronix, Beaverton, OR, USA | TDS3014B | To monitor voltage output by RF amplifier |
MatLab | Mathworks, Natick, MA, USA | R2014a | |
Driver interface software to integrate Photometrics camera with LabVIEW | R Cubed Software, Lawrenceville, NJ, USA | SITK | |
Tween 20 | Sigma Aldrich, St. Lousi, MO, USA | P9416 | |
Dragon Green Fluorescent 5.76 or 7.32 µm Beads | Bangs Laboratory, IN, USA | FS06F | |
Additional materials required for Step 5: Automated Separation | |||
Multiport valves | VICI, Houston, TX, USA | C25Z-3180EUHA | In the current configuration 4 valves are needed |
Flow Sensors | Sensirion, Westlake Village, CA, USA | SLI-1000 | |
Fluoropolymer tubing, .01 and .03" ID | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | 1902L and 1912L | High purity PFA preferred |
Nut | VICI, Houston, TX, USA | ZN1PK-10 | Used with ferrule to make connections between tubing and valves. Alternative part numbers: MZN1PK-10, LZN1PK-10 |
Ferrule | VICI, Houston, TX, USA | ZGF1PK-10 | Used with nut to make connections between tubing and valves. |
LabVIEW | National Instruments, Austin, TX, USA | LabVIEW Professional Development system | Laboratory Automation Software |
PBS | Teknova, Hollister, CA, USA | P0200 | |
Raji Cells | ATTC, Manassas, VA, USA | CCL86 | |
Boa Cells | Kindly provided by the DeRisi Laboratory at UCSF | ||
GGV | Kindly provided by the DeRisi Laboratory at UCSF | ||
DENV | Kindly provided by Jose Pena at LLNL | ||
Coulter Counter Z2 | Beckman Coulter, Brea, CA, USA | Z2 | |
Hemacytometer | Fisher Scientific, Waltman, MA, USA | 0267151B |