Summary

Kvantifiering av tungmetaller och andra oorganiska föroreningar på Produktiviteten hos Mikroalger

Published: July 10, 2015
doi:

Summary

Integration of microalgal cultivation with industrial flue gas will ultimately introduce heavy metals and other inorganic compounds into the growth media. This study presents a procedure used to determine the end fate and impact of heavy metals and inorganic contaminants on the growth of Nannochloropsis salina grown in photobioreactors.

Abstract

Ökad efterfrågan på förnybara bränslen har forskare undersöker möjligheten av alternativa råvaror, såsom mikroalger. Inneboende fördelar är hög potentiell avkastning, användning av icke-åkermark och integration med avfallsflöden. Närings kraven på en storskalig mikroalger produktionssystem kommer att kräva kopplingen av odlingssystem med industriella resurser avfall, såsom koldioxid från rökgaser och näringsämnen från avloppsvatten. Oorganiska föroreningar som förekommer i dessa avfall kan potentiellt leda till bioackumulering i alger biomassa påverkar produktiviteten och begränsa slutanvändning negativt. Denna studie fokuserar på experimentell utvärdering av effekterna och öde 14 oorganiska föroreningar (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V och Zn) på Nannochloropsis salina tillväxt . Mikroalger odlades i photobioreactors upplyst på 984 fimol m -2 s -1 och hölls vid pH 7 i en tillväxt media förorenat med oorganiska föroreningar på nivåer förväntade baserat på sammansättningen i kommersiella gassystem kol förbrännings. Föroreningar som finns i biomassan och mediet i slutet av en 7-dagars tillväxtperiod var analytiskt kvantifieras genom kall ånga atomabsorptionsspektrometri för Hg och genom induktivt kopplad plasma masspektrometri för As, Cd, Co, Cr, Cu, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V och Zn. Resultat visar N. salina är en känslig stam till den multimetallmiljö med en statistisk minskning i biomassa yieldwith införandet av dessa kontaminanter. De tekniker som presenteras här är tillräckliga för att kvantifiera algtillväxt och bestämma ödet av oorganiska föroreningar.

Introduction

Jämfört med traditionella markgrödor mikroalger har visat att uppnå högre biomassa och lipid avkastning på grund av inneboende högre effektivitet solenergi konvertering 1,2. Odling av mikroalger vid höga produktivitet kräver leverans av olika näringsämnen, inklusive en extern kolkälla. Det förväntas att storskaliga tillväxtmöjligheter kommer att integreras med industriella avfallsströmmar såsom industri rökgas för att minimera produktionskostnaderna och samtidigt ge miljöåterställning. Industriavfall kol är typiskt i form av gasformig koldioxid och kan innehålla föroreningar som har potential att negativt påverka mikroalger produktion. Specifikt kommer rökgas härrörande från kol har en mängd olika föroreningar, inklusive men inte begränsat till förbränningsprodukter vatten och koldioxid, samt oxider av svavel och kväve, fint damm, organiska föroreningar, såsom dioxiner och furaner, och oorganisk conreningar såsom tungmetaller. Effekterna av de flesta av dessa föroreningar inklusive oorganiska med några av dem som kallas tungmetaller på mikroalger produktiviteten har inte undersökts. Några av dessa faktorer kan vara näringsämnen vid lämpliga koncentrationer, men vid högre koncentrationer de kan producera cell dysfunktion och även död 3.

Integrationen av mikroalger med industriell rökgas har potential att direkt införa oorganiska föroreningar i tillväxtmedier. Kol baserad rökgas har en mängd olika oorganiska element (t.ex. As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V och Zn) vid olika koncentrationer av vilka några, i låg koncentration, representerar näringsämnen för mikroalger tillväxt. Oorganiska föroreningar har en hög affinitet för att binda till mikroalger och ytterligare sorberas internt genom närings transportörer. Vissa oorganiska föroreningar (dvs., Co, Cu, Zn och Mn) är näringsämnen som ingår i enzymer involverard fotosyntes, respiration och andra funktioner 3,4. Men i överskott metaller och metalloider kan vara giftiga. Andra faktorer, såsom Pb, Cd, Sn, Sb, Se, As och Hg, inte är kända för att stödja cellfunktionen i vilken koncentration och representerar icke-näringsämnen metaller som negativt kan påverka kulturtillväxt 3,5,6. Förekomsten av någon av dessa föroreningar har potential att producera negativa effekter på mikroalger cellfunktion. Vidare samspelet mellan flera metaller med mikroalger komplicerar tillväxtdynamik och har potential att påverka tillväxten.

Storskaliga ekonomi har varit direkt kopplat till produktivitet odlingssystemet 7-19. Dessutom är medel recirkulering i mikroalger tillväxtsystem för antingen öppna löpbanornas dammar (ORP) eller photobioreactors (PBR) kritisk eftersom det utgör 99,9 och 99,4% av massan, respektive 20. Förekomsten av oorganiska föroreningar i media kunde slutligen begränsa microalgae produktivitet och återvinning av media på grund av förorenings uppbyggnad. Denna studie experimentellt bestämd effekterna av 14 oorganiska föroreningar (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V och Zn), vid koncentrationer som förväntas från integrationen av mikroalger odlingssystem med kol härledd rökgas, på produktiviteten hos N. salina odlas i flygtransport PBRs. Föroreningarna som används i denna studie har visat sig inte bara vara närvarande i kolbaserad rökgas men kommunalt avfall baserade rökgas, biosolids baserade rökgas, kommunalt avloppsvatten, producerat vatten, försämrad grundvatten och havsvatten 21-23. De koncentrationer som användes i denna studie bygger på vad som skulle kunna förvänta sig om mikroalger tillväxt system integrerades med en kolbaserad CO2 källa med en upptagning effektivitet visats i kommersiella PBR system 20. Detaljerade beräkningar som stöder av koncentrationerna av tungmetaller och oorganiska föroreningar presenteras i Napanet al., 24 Analytiska tekniker användes för att förstå fördelningen av huvuddelen av metallerna i biomassa, media och miljö. De metoder som presenteras möjliggjorde bedömning av produktivitetspotentialen hos mikroalger i oorganisk förorening stress och kvantifiering av deras öde.

Protocol

1. Tillväxt systemet Figur 1. Mikroalger tillväxtsystem. (A) luft rotometer, (B) CO 2 rotometer, (C) pH-kontroller med magnet, (D) datalogger, (E) in-line luftfilter (F) luftfördelningsröret, (G) fluorescerande ljus bank, (H) pH-mätare,…

Representative Results

Biomassa utbyten Framställning av N. salina i PBR systemet som används i denna studie ökade från 1 g / I -1 till 8,5 ± 0,19 g / I -1 (N = 12) för kontrollreaktorer och 4,0 ± 0,3 g / I -1 (N = 12) för multi-metall förorenat i 7 dagar. Experimenten producerade repeterbara data över trippel reaktorer och flera omgångar. Figur 2A visar den genomsnittliga odlingstätheten med mycket små standardfel bygger på provtagning från…

Discussion

Saltlösning mikroalger N. Salina kan framgångsrikt odlas i utformade tillväxt systemet med repeterbara resultat och hög avkastning biomassa. Airlift blandning tillåtet för en välblandad suspenderad kultur med minimal sedimentering eller biofouling över 7 dag tillväxtperioder. Den minimala ljus variation över fluorescerande ljus banken också visat sig inte ge märkbara skillnader i tillväxt.

Studien visar heavy metal förorenat media vid koncentrationer representativa fö…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge funding from the National Science Foundation (award # 1335550), Utah Water Research Laboratory, Professor Joan McLean and Tessa Guy for their help during the metal/metalloids analysis. The authors also thank Laura Birkhold for her support with the data collection and Danna Olbright.

Materials

Chemicals
Sodium chloride Fisher Scientific S271-3
Calcium chloride dihydrate Fisher Scientific C79-500
Potassium chloride Fisher Scientific P217-500
Sodium meta silicate nonahydrate  Fisher Scientific S408-500
Magnesium sulfate heptahydrate  Fisher Scientific M63-500
Potassium nitrate EMD Chemical PX1520-5
Potassium phosphate monobasic  Fisher Scientific P285-500
Ammonium ferric citrate Fisher Scientific I72-500
Boric acid Fisher Scientific A73-500
Sodium molybdate, dihydrate EMD Chemical SX0650-2
Manganese chloride tetrahydrate Fisher Scientific M87-500
Zinc sulfate heptahydrate Fisher Scientific Z68-500
Cupric sulfate pentahydrate Fisher Scientific C489-500
Biotin  Acros Organics 230090010
Thiamine  Acros Organics 148990100
Vitamin B12  Acros Organics 405920010
Copper (II) chloride dihydrate  Sigma-Aldrich 221783-100G Irritant, Dangerous to the Environment
Lead (II) chloride  Sigma-Aldrich 268690-250G Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium dichromate dihydrate  Sigma-Aldrich 398063-100G Oxidizing, Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Cobalt (II) chloride hexahydrate  Sigma-Aldrich 255599-100G Toxic, Dangerous to the Environment
Nickel (II) chloride hexahydrate  Sigma-Aldrich 223387-500G Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium (meta) arsenite  Sigma-Aldrich 71287 Toxic, Dangerous to the Environment
Cadmium chloride  Sigma-Aldrich 202908-10G Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Mercury (II) chloride  Sigma-Aldrich 215465-100G Toxic, Dangerous to the Environment
Tin (II) chloride dihydrate Fisher Scientific T142-500 Corrosive. Suitable for Hg analysis. Very hazardous.
Manganese chloride tetrahydrate Fisher Scientific M87-500
Vanadium (V) oxide Acros Organics 206422500 Dangerous to the Environment
Carbon dioxide  Air Liquide I2301S-1 Compressed
Hydrogen peroxide H325-500 Fisher Scientific 30% in water
ICP-MS standard ICP-MS-6020 High Purity Standards
Mercury standard CGHG1-1 Inorganic Ventures 1000±6 µg/mL in 5% nitric acid
Argon Air Liquide Compressed
Helium Air Liquide Compressed, ultra high purity
Hydrogen Air Liquide Compressed, ultra high purity
Nitric acid Fisher Scientific A509-P212 67-70% nitric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Hydrochloric acid Fisher Scientific A508-P212 35% hydrochloric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Equipment
Scientific prevacuum sterilizer Steris 31626A SV-120
Centrifuge Thermo Fisher 46910 RC-6 Plus
Spectrophotometer Shimadzu 1867 UV-1800
pH controller Hanna BL981411 X4
Rotometer, X5 Dwyer RMA-151-SSV T31Y
Rotometer, X5 Dwyer RMA-26-SSV T35Y
Water bath circulator Fisher Scientific 13-873-45A
Compact chiller VWR 13270-120
Freeze dryer Labconco 7752020
Stir plate Fisher Scientific 11-100-49S
pH lab electrode Phidgets Inc 3550
Inductively coupled plasma mass spectrometer Agilent Technologies 7700 Series ICP-MS Attached to autosampler CETAC ASX-520
FIAS 100 Perkin Elmer Instruments B0506520
Atomic absorption spectrometer Perkin Elmer Instruments AAnalyst 800
Cell heater (quartz) Perkin Elmer Instruments B3120397
Microwave Milestone Programmable, maximum power 1200 W
Microwave rotor Milestone Rotor with 24 75 mL Teflon vessels for closed-vessel microwave assisted digestion.
Materials
0.2 micron syringe filter Whatman 6713-0425
0.2 micron syringe filter Whatman 6713-1650
0.45 micron syringe filter Thermo Fisher F2500-3
Polystyrene tubes Evergreen 222-2094-050 17×100 mm w/cap, 16 mL, polysteryne
Octogonal magnetic stir bars Fisher scientific 14-513-60 Magnets encased in PTFE fluoropolymer

Referencias

  1. Dismukes, G. C., Carrieri, D., Bennette, N., Ananyev, G. M., Posewitz, M. C. Aquatic phototrophs: efficient alternatives to land-based crops for biofuels. Curr Opin Biotechnol. 19 (3), 235-240 (2008).
  2. Moody, J. W., McGinty, C. M., Quinn, J. C. Global evaluation of biofuel potential from microalgae. Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (23), 8691-8696 (2014).
  3. Pinto, E., et al. Heavy metal-induced oxidative stress in algae. J Phycol. 39 (6), 1008-1018 (2003).
  4. Gupta, A., Lutsenko, S. Evolution of copper transporting ATPases in eukaryotic organisms. Curr Genomics. 13 (2), 124-133 (2012).
  5. Perales-Vela, H. V., Peña-Castro, J. M., Cañizares-Villanueva, R. O. Heavy metal detoxification in eukaryotic microalgae. Chemosphere. 64 (1), 1-10 (2006).
  6. Sandau, E., Sandau, P., Pulz, O. Heavy metal sorption by microalgae. Acta Biotechnol. 16 (4), 227-235 (1996).
  7. Amer, L., Adhikari, B., Pellegrino, J. Technoeconomic analysis of five microalgae-to-biofuels processes of varying complexity. Bioresour Technol. 102 (20), 9350-9359 (2011).
  8. Benemann, J. R., Goebel, R. P., Weissman, J. C., Augenstein, D. C. Microalgae as a source of liquid fuels. Final Technical Report, US Department of Energy, Office of Research. , (1982).
  9. Benemann, J. R., Oswald, W. J. Report No. DOE/PC/93204–T5 Other: ON: DE97052880; TRN: TRN. Systems and economic analysis of microalgae ponds for conversion of CO2 to biomass. , (1996).
  10. Chisti, Y. Biodiesel from microalgae. Biotechnol Adv. 25 (3), 294-306 (2007).
  11. Davis, R., Aden, A., Pienkos, P. T. Techno-economic analysis of autotrophic microalgae for fuel production. Applied Energy. 88 (10), 3524-3531 (2011).
  12. Jones, S., et al. Process design and economics for the conversion of algal biomass to hydrocarbons: whole algae hydrothermal liquefaction and upgrading. U.S. Department of Energy Bioenergy Technologies Office. , (2014).
  13. Lundquist, T. J., Woertz, I. C., Quinn, N. W. T., Benemann, J. R. A realistic technology and engineering assessment of algae biofuel production. Energy Biosciences Institute. , (2010).
  14. Nagarajan, S., Chou, S. K., Cao, S., Wu, C., Zhou, Z. An updated comprehensive techno-economic analysis of algae biodiesel. Bioresour Technol. 145, 150-156 (2011).
  15. Pienkos, P. T., Darzins, A. The promise and challenges of microalgal-derived biofuels. Biofuels Bioproducts & Biorefining-Biofpr. 3, 431-440 (2009).
  16. Richardson, J. W., Johnson, M. D., Outlaw, J. L. Economic comparison of open pond raceways to photo bio-reactors for profitable production of algae for transportation fuels in the Southwest. Algal Research. 1 (1), 93-100 (2012).
  17. Rogers, J. N., et al. A critical analysis of paddlewheel-driven raceway ponds for algal biofuel production at commercial scales. Algal Research. 4, 76-88 (1016).
  18. Sun, A., et al. Comparative cost analysis of algal oil production for biofuels. Energy. 36 (8), 5169-5179 (2011).
  19. Thilakaratne, R., Wright, M. M., Brown, R. C. A techno-economic analysis of microalgae remnant catalytic pyrolysis and upgrading to fuels. Fuel. 128, 104-112 (2014).
  20. Quinn, J. C., et al. Nannochloropsis production metrics in a scalable outdoor photobioreactor for commercial applications. Bioresour Technol. 117, 164-171 (2012).
  21. Borkenstein, C., Knoblechner, J., Frühwirth, H., Schagerl, M. Cultivation of Chlorella emersonii with flue gas derived from a cement plant. J Appl Phycol. 23 (1), 131-135 (2010).
  22. Douskova, I., et al. Simultaneous flue gas bioremediation and reduction of microalgal biomass production costs. Appl Microbiol Biotechnol. 82 (1), 179-185 (2009).
  23. Israel, A., Gavrieli, J., Glazer, A., Friedlander, M. Utilization of flue gas from a power plant for tank cultivation of the red seaweed Gracilaria cornea. Aquaculture. 249 (1-4), 311-316 (2012).
  24. Napan, K., Teng, L., Quinn, J. C., Wood, B. . Impact of Heavy Metals from Flue Gas Integration with Microalgae Production. , (2015).
  25. Eaton, A. D., Clesceri, L. S., Rice, E. W., Greenberg, A. E. 3. 1. 2. 5. B. Inductively coupled plasma/mass spectrometry (ICP/MS) method. Standard methods for the examination of water and wastewater. , (2005).
  26. Smith, M., Compton, J. S. . Matrix effects in the ICP-MS analysis of selenium in saline water samples. , (2004).
  27. Mehta, S. K., Gaur, J. P. Use of algae for removing heavy metal ions from wastewater: progress and prospects. Crit Rev Biotechnol. 25 (3), 113-152 (2005).
  28. Eaton, A. D., Clesceri, L. S., Rice, E. W., Greenberg, A. E. 3. 1. 2. 0. B. Inductively coupled plasma (ICP) method. Standard methods for the examination of water and wastewater. , (2005).
check_url/es/52936?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Napan, K., Hess, D., McNeil, B., Quinn, J. C. Quantification of Heavy Metals and Other Inorganic Contaminants on the Productivity of Microalgae. J. Vis. Exp. (101), e52936, doi:10.3791/52936 (2015).

View Video