Summary

Количественное тяжелых металлов и других неорганических загрязняющих веществ на продуктивность микроводорослей

Published: July 10, 2015
doi:

Summary

Integration of microalgal cultivation with industrial flue gas will ultimately introduce heavy metals and other inorganic compounds into the growth media. This study presents a procedure used to determine the end fate and impact of heavy metals and inorganic contaminants on the growth of Nannochloropsis salina grown in photobioreactors.

Abstract

Повышение спроса на возобновляемые виды топлива имеет исследователей, изучающих возможность альтернативных сырья, таких, как микроводорослей. Присущие преимущества включают высокую потенциальную урожайность, использование не пахотных земель и интеграции с потоками отходов. Потребности в питательных веществах масштабной производственной системы микроводорослей потребует сцепление возделывания систем с ресурсами промышленных отходов, таких как двуокись углерода из дымовых газов и питательных веществ из сточных вод. Неорганические примеси, присутствующие в этих отходов может потенциально привести к биоаккумуляции в микроводорослей биомассы негативно повлиять производительность и предельный конечного использования. Это исследование фокусируется на экспериментальной оценки воздействия и о судьбе 14 неорганических загрязнителей (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V и Zn) на Nannochloropsis роста Салина , Микроводорослей культивируется в фотобиореакторах освещаются в 984 мкмоль м -2 с -1 и выдерживают при рН 7 в рост мEdia загрязнены неорганических загрязнений на уровне ожидалось на основании композиции, найденного в коммерческих системах угля дымовых газов. Загрязняющих веществ, присутствующих в биомассе и среде в конце периода роста 7 дней были количественно анализировали с помощью холодного пара атомно-абсорбционной спектрометрии для Hg и через индуктивно-связанной плазмы масс-спектрометрии для As, Cd, Co, Cr, Cu, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V и Zn. Результаты показывают, N. Салина чувствительны к деформации различных металлов окружающей среды с уменьшением статистической биомассы yieldwith введения этих примесей. Методы, представленные здесь, являются достаточными для количественной оценки роста водорослей и определения судьбы неорганических загрязнений.

Introduction

По сравнению с традиционными наземными культур микроводорослей были показаны для достижения более высоких биомассы и липидов урожаи из-за присущих более высокой эффективности преобразования солнечной 1,2. Выращивание микроводорослей при высоких скоростях производительности требует питания различных питательных веществ, включая внешнего источника углерода. Ожидается, что крупные объекты роста будут интегрированы с потоками промышленных отходов, таких как промышленных дымовых газов с целью минимизации издержек производства и в то же время обеспечивает восстановление окружающей среды. Промышленные отходы углерода, как правило, в виде газообразного диоксида углерода и может содержать примеси, которые потенциально могут отрицательно повлиять производства микроводорослей. В частности, дымовой газ получают из угля будет иметь различные загрязнений, включая, но не ограничиваясь ими продуктов сгорания воды и углекислого газа, а также оксиды серы и азота, мелкой пыли, органических примесей, таких как диоксины и фураны, и неорганического Contaminants, такие как тяжелые металлы. Влияние большинства этих загрязнителей, включая неорганических с некоторыми из них известен как тяжелых металлов на продуктивность микроводорослей не были изучены. Некоторые из этих элементов могут быть питательные вещества в соответствующих концентрациях, однако при более высоких концентрациях они могут производить дисфункцию клеток и даже смерть 3.

Интеграция микроводорослей с промышленной дымовых газов имеет потенциал непосредственно вводить неорганические загрязнения в ростовой среде. Уголь на основе дымовых газов имеет целый ряд неорганических элементов (например, As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V и Zn) в различных концентрациях, некоторые из которых, в странах с низким концентрация, представляют питательные вещества для роста микроводорослей. Неорганические загрязняющие вещества с высоким сродством связывается с микроводорослей и дополнительно сорбируются внутри через питательных перевозчиков. Некоторые неорганические загрязнители (т.е., Co, Cu, Zn и Mn) питательные вещества, которые являются частью ферментов включаютd в процессе фотосинтеза, дыхания и других функций 3,4. Тем не менее, в избыточных металлов и металлоидов может быть токсичным. Другие элементы, такие как Pb, Cd, Sn, Sb, Se, As и Hg, не известны для поддержки функции клеток в любой концентрации и представляют собой средства питательных веществ металлов, которые могут негативно повлиять на 3,5,6 роста культуры. Наличие любого из этих загрязняющих веществ имеет потенциал для производства негативное воздействие на функции клеток микроводоросли. Кроме того, взаимодействие нескольких металлов с микроводорослей усложняет динамику роста и имеет потенциал, чтобы влиять рост.

Крупномасштабные экономика были непосредственно связаны с производительностью системы культивирования 7-19. Кроме того, средний утилизация в системе роста микроводорослей для открытых водоемах либо направляющими (ОВП) или фотобиореакторах (PBR) является критическим, поскольку он представляет 99,9 и 99,4% от массы, соответственно 20. Наличие неорганических загрязнений в средствах массовой информации в конечном счете может ограничить мПроизводительность icroalgae и переработка СМИ в связи с загрязняющей накопления. Это исследование экспериментально определили влияние 14 неорганические загрязнители (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V и Zn), в концентрациях, ожидаемых от интеграции систем выращивания микроводорослей с угля происходит дымового газа, на продуктивность N. Салина вырос в НРБ воздушных перевозок. Загрязняющие вещества, используемые в данном исследовании было показано, что не только присутствовать в угольной дымовых газов, но твердых бытовых отходов на основе дымовых газов, на основе биогенного топочного газа, городских сточных вод, добываемой воды, нарушение грунтовых вод и морской воды 21-23. Концентрации, используемые в данном исследовании, основаны на том, что можно было бы ожидать, если бы системы роста микроводорослей были интегрированы с угольной основе СО 2 источника с захвата эффективности продемонстрировано в коммерческих системах PBR 20. Подробные расчеты, поддерживающие концентрации тяжелых металлов и неорганических загрязнений представлены в Napanи др. 24 Аналитические методы были использованы, чтобы понять распределение большинства металлов в биомассе, средства массовой информации и среды. Методы, представленные включен оценку производительности потенциала микроводорослей в неорганической загрязнений стресса и количественного их конечного судьбы.

Protocol

1. Система Рост Рисунок 1. Система микроводорослей роста. () Воздуха rotometer, (Б) СО 2 rotometer, (С) контроллер рН с соленоида (D) регистратор данных (E) в линию воздушных …

Representative Results

Доходность биомассы Производство N. заИпа в системе PBR, используемого в этом исследовании выросли с 1 г / л -1 до 8,5 ± 0,19 г / л-1 (N = 12) для управления реакторами и 4,0 ± 0,3 г / л -1 (N = 12) мульти-металл загрязнены в течение 7 дней. Эксперименты производятся повтор?…

Discussion

Соленая микроводорослей Н. Салина можно с успехом выращивать в проектируемой системе роста с повторяемых результатов и высоких урожаев биомассы. Воздушные перевозки перемешивание допускается для хорошо смешанной приостановлено культуры с минимальной оседания или обрастания в …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge funding from the National Science Foundation (award # 1335550), Utah Water Research Laboratory, Professor Joan McLean and Tessa Guy for their help during the metal/metalloids analysis. The authors also thank Laura Birkhold for her support with the data collection and Danna Olbright.

Materials

Chemicals
Sodium chloride Fisher Scientific S271-3
Calcium chloride dihydrate Fisher Scientific C79-500
Potassium chloride Fisher Scientific P217-500
Sodium meta silicate nonahydrate  Fisher Scientific S408-500
Magnesium sulfate heptahydrate  Fisher Scientific M63-500
Potassium nitrate EMD Chemical PX1520-5
Potassium phosphate monobasic  Fisher Scientific P285-500
Ammonium ferric citrate Fisher Scientific I72-500
Boric acid Fisher Scientific A73-500
Sodium molybdate, dihydrate EMD Chemical SX0650-2
Manganese chloride tetrahydrate Fisher Scientific M87-500
Zinc sulfate heptahydrate Fisher Scientific Z68-500
Cupric sulfate pentahydrate Fisher Scientific C489-500
Biotin  Acros Organics 230090010
Thiamine  Acros Organics 148990100
Vitamin B12  Acros Organics 405920010
Copper (II) chloride dihydrate  Sigma-Aldrich 221783-100G Irritant, Dangerous to the Environment
Lead (II) chloride  Sigma-Aldrich 268690-250G Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium dichromate dihydrate  Sigma-Aldrich 398063-100G Oxidizing, Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Cobalt (II) chloride hexahydrate  Sigma-Aldrich 255599-100G Toxic, Dangerous to the Environment
Nickel (II) chloride hexahydrate  Sigma-Aldrich 223387-500G Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium (meta) arsenite  Sigma-Aldrich 71287 Toxic, Dangerous to the Environment
Cadmium chloride  Sigma-Aldrich 202908-10G Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Mercury (II) chloride  Sigma-Aldrich 215465-100G Toxic, Dangerous to the Environment
Tin (II) chloride dihydrate Fisher Scientific T142-500 Corrosive. Suitable for Hg analysis. Very hazardous.
Manganese chloride tetrahydrate Fisher Scientific M87-500
Vanadium (V) oxide Acros Organics 206422500 Dangerous to the Environment
Carbon dioxide  Air Liquide I2301S-1 Compressed
Hydrogen peroxide H325-500 Fisher Scientific 30% in water
ICP-MS standard ICP-MS-6020 High Purity Standards
Mercury standard CGHG1-1 Inorganic Ventures 1000±6 µg/mL in 5% nitric acid
Argon Air Liquide Compressed
Helium Air Liquide Compressed, ultra high purity
Hydrogen Air Liquide Compressed, ultra high purity
Nitric acid Fisher Scientific A509-P212 67-70% nitric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Hydrochloric acid Fisher Scientific A508-P212 35% hydrochloric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Equipment
Scientific prevacuum sterilizer Steris 31626A SV-120
Centrifuge Thermo Fisher 46910 RC-6 Plus
Spectrophotometer Shimadzu 1867 UV-1800
pH controller Hanna BL981411 X4
Rotometer, X5 Dwyer RMA-151-SSV T31Y
Rotometer, X5 Dwyer RMA-26-SSV T35Y
Water bath circulator Fisher Scientific 13-873-45A
Compact chiller VWR 13270-120
Freeze dryer Labconco 7752020
Stir plate Fisher Scientific 11-100-49S
pH lab electrode Phidgets Inc 3550
Inductively coupled plasma mass spectrometer Agilent Technologies 7700 Series ICP-MS Attached to autosampler CETAC ASX-520
FIAS 100 Perkin Elmer Instruments B0506520
Atomic absorption spectrometer Perkin Elmer Instruments AAnalyst 800
Cell heater (quartz) Perkin Elmer Instruments B3120397
Microwave Milestone Programmable, maximum power 1200 W
Microwave rotor Milestone Rotor with 24 75 mL Teflon vessels for closed-vessel microwave assisted digestion.
Materials
0.2 micron syringe filter Whatman 6713-0425
0.2 micron syringe filter Whatman 6713-1650
0.45 micron syringe filter Thermo Fisher F2500-3
Polystyrene tubes Evergreen 222-2094-050 17×100 mm w/cap, 16 mL, polysteryne
Octogonal magnetic stir bars Fisher scientific 14-513-60 Magnets encased in PTFE fluoropolymer

Referencias

  1. Dismukes, G. C., Carrieri, D., Bennette, N., Ananyev, G. M., Posewitz, M. C. Aquatic phototrophs: efficient alternatives to land-based crops for biofuels. Curr Opin Biotechnol. 19 (3), 235-240 (2008).
  2. Moody, J. W., McGinty, C. M., Quinn, J. C. Global evaluation of biofuel potential from microalgae. Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (23), 8691-8696 (2014).
  3. Pinto, E., et al. Heavy metal-induced oxidative stress in algae. J Phycol. 39 (6), 1008-1018 (2003).
  4. Gupta, A., Lutsenko, S. Evolution of copper transporting ATPases in eukaryotic organisms. Curr Genomics. 13 (2), 124-133 (2012).
  5. Perales-Vela, H. V., Peña-Castro, J. M., Cañizares-Villanueva, R. O. Heavy metal detoxification in eukaryotic microalgae. Chemosphere. 64 (1), 1-10 (2006).
  6. Sandau, E., Sandau, P., Pulz, O. Heavy metal sorption by microalgae. Acta Biotechnol. 16 (4), 227-235 (1996).
  7. Amer, L., Adhikari, B., Pellegrino, J. Technoeconomic analysis of five microalgae-to-biofuels processes of varying complexity. Bioresour Technol. 102 (20), 9350-9359 (2011).
  8. Benemann, J. R., Goebel, R. P., Weissman, J. C., Augenstein, D. C. Microalgae as a source of liquid fuels. Final Technical Report, US Department of Energy, Office of Research. , (1982).
  9. Benemann, J. R., Oswald, W. J. Report No. DOE/PC/93204–T5 Other: ON: DE97052880; TRN: TRN. Systems and economic analysis of microalgae ponds for conversion of CO2 to biomass. , (1996).
  10. Chisti, Y. Biodiesel from microalgae. Biotechnol Adv. 25 (3), 294-306 (2007).
  11. Davis, R., Aden, A., Pienkos, P. T. Techno-economic analysis of autotrophic microalgae for fuel production. Applied Energy. 88 (10), 3524-3531 (2011).
  12. Jones, S., et al. Process design and economics for the conversion of algal biomass to hydrocarbons: whole algae hydrothermal liquefaction and upgrading. U.S. Department of Energy Bioenergy Technologies Office. , (2014).
  13. Lundquist, T. J., Woertz, I. C., Quinn, N. W. T., Benemann, J. R. A realistic technology and engineering assessment of algae biofuel production. Energy Biosciences Institute. , (2010).
  14. Nagarajan, S., Chou, S. K., Cao, S., Wu, C., Zhou, Z. An updated comprehensive techno-economic analysis of algae biodiesel. Bioresour Technol. 145, 150-156 (2011).
  15. Pienkos, P. T., Darzins, A. The promise and challenges of microalgal-derived biofuels. Biofuels Bioproducts & Biorefining-Biofpr. 3, 431-440 (2009).
  16. Richardson, J. W., Johnson, M. D., Outlaw, J. L. Economic comparison of open pond raceways to photo bio-reactors for profitable production of algae for transportation fuels in the Southwest. Algal Research. 1 (1), 93-100 (2012).
  17. Rogers, J. N., et al. A critical analysis of paddlewheel-driven raceway ponds for algal biofuel production at commercial scales. Algal Research. 4, 76-88 (1016).
  18. Sun, A., et al. Comparative cost analysis of algal oil production for biofuels. Energy. 36 (8), 5169-5179 (2011).
  19. Thilakaratne, R., Wright, M. M., Brown, R. C. A techno-economic analysis of microalgae remnant catalytic pyrolysis and upgrading to fuels. Fuel. 128, 104-112 (2014).
  20. Quinn, J. C., et al. Nannochloropsis production metrics in a scalable outdoor photobioreactor for commercial applications. Bioresour Technol. 117, 164-171 (2012).
  21. Borkenstein, C., Knoblechner, J., Frühwirth, H., Schagerl, M. Cultivation of Chlorella emersonii with flue gas derived from a cement plant. J Appl Phycol. 23 (1), 131-135 (2010).
  22. Douskova, I., et al. Simultaneous flue gas bioremediation and reduction of microalgal biomass production costs. Appl Microbiol Biotechnol. 82 (1), 179-185 (2009).
  23. Israel, A., Gavrieli, J., Glazer, A., Friedlander, M. Utilization of flue gas from a power plant for tank cultivation of the red seaweed Gracilaria cornea. Aquaculture. 249 (1-4), 311-316 (2012).
  24. Napan, K., Teng, L., Quinn, J. C., Wood, B. . Impact of Heavy Metals from Flue Gas Integration with Microalgae Production. , (2015).
  25. Eaton, A. D., Clesceri, L. S., Rice, E. W., Greenberg, A. E. 3. 1. 2. 5. B. Inductively coupled plasma/mass spectrometry (ICP/MS) method. Standard methods for the examination of water and wastewater. , (2005).
  26. Smith, M., Compton, J. S. . Matrix effects in the ICP-MS analysis of selenium in saline water samples. , (2004).
  27. Mehta, S. K., Gaur, J. P. Use of algae for removing heavy metal ions from wastewater: progress and prospects. Crit Rev Biotechnol. 25 (3), 113-152 (2005).
  28. Eaton, A. D., Clesceri, L. S., Rice, E. W., Greenberg, A. E. 3. 1. 2. 0. B. Inductively coupled plasma (ICP) method. Standard methods for the examination of water and wastewater. , (2005).
check_url/es/52936?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Napan, K., Hess, D., McNeil, B., Quinn, J. C. Quantification of Heavy Metals and Other Inorganic Contaminants on the Productivity of Microalgae. J. Vis. Exp. (101), e52936, doi:10.3791/52936 (2015).

View Video