Summary

Kvantifisering av tungmetaller og andre uorganiske forurensninger på produktiviteten Mikroalger

Published: July 10, 2015
doi:

Summary

Integration of microalgal cultivation with industrial flue gas will ultimately introduce heavy metals and other inorganic compounds into the growth media. This study presents a procedure used to determine the end fate and impact of heavy metals and inorganic contaminants on the growth of Nannochloropsis salina grown in photobioreactors.

Abstract

Økende etterspørsel etter fornybare drivstoff har forskere undersøker muligheten for alternative råstoffer, for eksempel mikroalger. Iboende fordeler inkluderer høy potensiell avkastning, bruk av ikke-dyrkbar jord og integrasjon med avfallsstrømmer. Nærings kravene til en storskala mikroalger produksjonssystem vil kreve kobling av dyrkingssystemer med industrielt avfall ressurser, for eksempel karbondioksid fra røykgass og næringsstoffer fra avløpsvann. Uorganiske miljøgifter som finnes i disse avfall kan potensielt føre til bioakkumulering i mikroalge biomasse negativt påvirke produktiviteten og begrense sluttbruk. Denne studien fokuserer på eksperimentell evaluering av virkningen og skjebnen til 14 uorganiske forurensninger (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, SE, Sn, V og Zn) på Nannochloropsis salina vekst . Mikroalger ble dyrket i fotobioreaktorer belyst ved 984 umol m sek -2 -1 og holdt ved pH 7 i en vekst media forurenset med uorganiske forurensninger på nivåer forventet basert på sammensetningen funnet i kommersielle kull røykgass systemer. Forurensninger som er tilstede i biomassen og mediet ved slutten av en 7 dagers vekstperiode ble analytisk kvantifisert gjennom kalde dampen atomabsorpsjonsspektrometri for Hg og ved induktivt koblet plasma massespektrometri for As, Cd, Co, Cr, Cu, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V og Zn. Resultatene viser N. salina er en følsom stamme til multi-metall-miljø med en statistisk reduksjon i biomassen yieldwith innføring av slike forurensninger. Teknikkene er presentert her er tilstrekkelig for å kvantifisere algevekst og å bestemme skjebnen av uorganiske forurensninger.

Introduction

Sammenlignet med tradisjonelle landbaserte avlinger mikroalger har vist seg å oppnå høyere biomasse og lipid utbytter på grunn av iboende høyere solar konvertering effektivitet 1,2. Dyrking av mikroalger ved høye produktivitetspriser krever tilførsel av ulike næringsstoffer, inkludert en ekstern karbonkilde. Det forventes at store vekst anlegg vil bli integrert med industrielle avfallsstrømmer som industriell avgass for å minimalisere driftskostnadene, og på samme tid gi miljømessige utbedring. Industrielt avfall karbon er vanligvis i form av gass karbondioksid og kan inneholde forurensninger som har potensial til å negativt påvirke mikroalger produksjon. Spesifikt vil røkgass avledet fra kull har en rekke forurensninger, inkludert men ikke begrenset til, forbrenningsprodukter vann og karbondioksyd, såvel som oksyder av svovel og nitrogen, fint støv, organiske miljøgifter som dioksiner og furaner, og uorganiske conforurensninger slik som tungmetaller. Virkningen av de fleste av disse forurensninger inkludert uorganiske partikler med noen av dem kjent som tungmetaller på mikroalger produktivitet har ikke blitt utforsket. Noen av disse elementene kan være næringsstoffer i passende konsentrasjoner, men ved høyere konsentrasjoner kan de produsere celle dysfunksjon og død 3.

Integreringen av mikroalger med industriell avgass har potensial til direkte å innføre uorganiske forurensninger inn i vekstmediet. Kullbasert røkgass har en rekke uorganiske elementer (for eksempel As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V og Zn) ved forskjellige konsentrasjoner og noen av disse, i lave konsentrasjon, representerer næringsstoffer for mikroalger vekst. Uorganiske forurensninger har en høy affinitet til å binde til mikroalgene og videre bli sorbert internt gjennom nærings transportører. Enkelte uorganiske forurensninger (dvs., Co, Cu, Zn og Mn) er næringsstoffer som utgjør en del av enzymer involvererd i fotosyntese, respirasjon og andre funksjoner 3,4. Imidlertid, i overkant metaller og metalloider kan være giftig. Andre elementer, som for eksempel Pb, Cd, Sn, Sb, Se, As og Hg, er ikke kjent for å støtte cellefunksjon på en hvilken som helst konsentrasjon og representerer ikke-næringsmetaller som kan ha negativ innvirkning på vekstkultur 3,5,6. Tilstedeværelsen av noen av disse forurensninger har potensial til å gi negative effekter på mikroalger cellefunksjon. Videre interaksjonen av flere metaller med mikroalger kompliserer vekst dynamikk, og har potensiale til å påvirke veksten.

Storskala økonomi har vært direkte knyttet til produktivitet dyrking system 7-19. Videre er resirkulering medium i mikroalger vekst system for enten åpne kanal dammer (ORP) eller fotobioreaktorer (PBR) kritisk som den representerer 99,9 og 99,4% av massen, henholdsvis 20. Tilstedeværelsen av uorganiske forurensninger i media kan begrense m instansicroalgae produktivitet og resirkulering av media på grunn av forurensning bygge opp. Denne studien eksperimentelt bestemte virkningen av 14 uorganiske forurensninger (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V og Zn), ved konsentrasjoner som forventes fra integreringen av mikroalgedyrkingssystemer med kull avledet røkgass, på produktiviteten av N. salina vokst i lufttransport PBRs. Forurensningene som brukes i denne undersøkelsen har vist seg å ikke bare være til stede i kullbasert avgass men kommunalt avfallsbasert røkgass, biosolids basert røkgass, kommunalt avløpsvann, produsert vann, svekket grunnvann og sjøvann 21-23. Konsentrasjonene brukt i denne studien er basert på hva som forventes hvis mikroalger vekst systemer ble integrert med en kullbasert CO 2 kilde med en opptakseffektivitet demonstrert i kommersielle PBR systemer 20. Detaljerte beregninger som støtter konsentrasjonene av tungmetaller og uorganiske forurensninger er presentert i Napanet al. 24 analyseteknikker ble brukt for å forstå fordelingen av de fleste av metallene i biomassen, media og miljø. Metodene som presenteres aktivert vurdering av produktivitet potensial for mikroalger i henhold uorganisk forurensning stress og kvantifisering av sin ende skjebne.

Protocol

1. Vekst system Figur 1. Mikroalger vekst system. (A) luft rotometer, (B) CO 2 rotometer, (C) pH-kontroller med solenoid, (D) datalogger, (E) in-line luftfiltre, (F) luftfordeling i mål (G) fluorescerende lys bank, (H) pH-meter, (I)…

Representative Results

Biomasse utbytter Produksjon av N. salina i PBR-systemet brukt i denne studien økte fra 1 g / l -1-8,5 ± 0,19 g / l -1 (N = 12) for kontroll reaktorer og 4,0 ± 0,3 g / l 1 (N = 12) for multi-metal forurenset i syv dager. Forsøkene produsert repeterbare data på tvers tredoble reaktorer og flere partier. Figur 2A viser gjennomsnittlig kultur tetthet med svært liten standard feil basert på prøvetaking fra tre uavhengige PBRs. Fo…

Discussion

Saline mikroalger N. salina kan være vellykket dyrkes i designet vekst system med repeterbare resultater og høye biomasse avkastning. Airlift blandingen tillatt for en godt blandet suspendert kultur med minimal bosetting eller begroing i løpet av de syv dagers vekstperioder. Den minimale lys variasjon over fluorescerende lys banken er også vist å ikke gi merkbare forskjeller i vekst.

Studien viser heavy metal forurenset media ved konsentrasjoner representant for integrasjon med…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge funding from the National Science Foundation (award # 1335550), Utah Water Research Laboratory, Professor Joan McLean and Tessa Guy for their help during the metal/metalloids analysis. The authors also thank Laura Birkhold for her support with the data collection and Danna Olbright.

Materials

Chemicals
Sodium chloride Fisher Scientific S271-3
Calcium chloride dihydrate Fisher Scientific C79-500
Potassium chloride Fisher Scientific P217-500
Sodium meta silicate nonahydrate  Fisher Scientific S408-500
Magnesium sulfate heptahydrate  Fisher Scientific M63-500
Potassium nitrate EMD Chemical PX1520-5
Potassium phosphate monobasic  Fisher Scientific P285-500
Ammonium ferric citrate Fisher Scientific I72-500
Boric acid Fisher Scientific A73-500
Sodium molybdate, dihydrate EMD Chemical SX0650-2
Manganese chloride tetrahydrate Fisher Scientific M87-500
Zinc sulfate heptahydrate Fisher Scientific Z68-500
Cupric sulfate pentahydrate Fisher Scientific C489-500
Biotin  Acros Organics 230090010
Thiamine  Acros Organics 148990100
Vitamin B12  Acros Organics 405920010
Copper (II) chloride dihydrate  Sigma-Aldrich 221783-100G Irritant, Dangerous to the Environment
Lead (II) chloride  Sigma-Aldrich 268690-250G Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium dichromate dihydrate  Sigma-Aldrich 398063-100G Oxidizing, Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Cobalt (II) chloride hexahydrate  Sigma-Aldrich 255599-100G Toxic, Dangerous to the Environment
Nickel (II) chloride hexahydrate  Sigma-Aldrich 223387-500G Toxic, Dangerous to the Environment
Sodium (meta) arsenite  Sigma-Aldrich 71287 Toxic, Dangerous to the Environment
Cadmium chloride  Sigma-Aldrich 202908-10G Highly Toxic, Dangerous to the Environment
Mercury (II) chloride  Sigma-Aldrich 215465-100G Toxic, Dangerous to the Environment
Tin (II) chloride dihydrate Fisher Scientific T142-500 Corrosive. Suitable for Hg analysis. Very hazardous.
Manganese chloride tetrahydrate Fisher Scientific M87-500
Vanadium (V) oxide Acros Organics 206422500 Dangerous to the Environment
Carbon dioxide  Air Liquide I2301S-1 Compressed
Hydrogen peroxide H325-500 Fisher Scientific 30% in water
ICP-MS standard ICP-MS-6020 High Purity Standards
Mercury standard CGHG1-1 Inorganic Ventures 1000±6 µg/mL in 5% nitric acid
Argon Air Liquide Compressed
Helium Air Liquide Compressed, ultra high purity
Hydrogen Air Liquide Compressed, ultra high purity
Nitric acid Fisher Scientific A509-P212 67-70% nitric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Hydrochloric acid Fisher Scientific A508-P212 35% hydrochloric acid, trace metal grade. Caution: manipulate under fume hood.
Equipment
Scientific prevacuum sterilizer Steris 31626A SV-120
Centrifuge Thermo Fisher 46910 RC-6 Plus
Spectrophotometer Shimadzu 1867 UV-1800
pH controller Hanna BL981411 X4
Rotometer, X5 Dwyer RMA-151-SSV T31Y
Rotometer, X5 Dwyer RMA-26-SSV T35Y
Water bath circulator Fisher Scientific 13-873-45A
Compact chiller VWR 13270-120
Freeze dryer Labconco 7752020
Stir plate Fisher Scientific 11-100-49S
pH lab electrode Phidgets Inc 3550
Inductively coupled plasma mass spectrometer Agilent Technologies 7700 Series ICP-MS Attached to autosampler CETAC ASX-520
FIAS 100 Perkin Elmer Instruments B0506520
Atomic absorption spectrometer Perkin Elmer Instruments AAnalyst 800
Cell heater (quartz) Perkin Elmer Instruments B3120397
Microwave Milestone Programmable, maximum power 1200 W
Microwave rotor Milestone Rotor with 24 75 mL Teflon vessels for closed-vessel microwave assisted digestion.
Materials
0.2 micron syringe filter Whatman 6713-0425
0.2 micron syringe filter Whatman 6713-1650
0.45 micron syringe filter Thermo Fisher F2500-3
Polystyrene tubes Evergreen 222-2094-050 17×100 mm w/cap, 16 mL, polysteryne
Octogonal magnetic stir bars Fisher scientific 14-513-60 Magnets encased in PTFE fluoropolymer

Referencias

  1. Dismukes, G. C., Carrieri, D., Bennette, N., Ananyev, G. M., Posewitz, M. C. Aquatic phototrophs: efficient alternatives to land-based crops for biofuels. Curr Opin Biotechnol. 19 (3), 235-240 (2008).
  2. Moody, J. W., McGinty, C. M., Quinn, J. C. Global evaluation of biofuel potential from microalgae. Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (23), 8691-8696 (2014).
  3. Pinto, E., et al. Heavy metal-induced oxidative stress in algae. J Phycol. 39 (6), 1008-1018 (2003).
  4. Gupta, A., Lutsenko, S. Evolution of copper transporting ATPases in eukaryotic organisms. Curr Genomics. 13 (2), 124-133 (2012).
  5. Perales-Vela, H. V., Peña-Castro, J. M., Cañizares-Villanueva, R. O. Heavy metal detoxification in eukaryotic microalgae. Chemosphere. 64 (1), 1-10 (2006).
  6. Sandau, E., Sandau, P., Pulz, O. Heavy metal sorption by microalgae. Acta Biotechnol. 16 (4), 227-235 (1996).
  7. Amer, L., Adhikari, B., Pellegrino, J. Technoeconomic analysis of five microalgae-to-biofuels processes of varying complexity. Bioresour Technol. 102 (20), 9350-9359 (2011).
  8. Benemann, J. R., Goebel, R. P., Weissman, J. C., Augenstein, D. C. Microalgae as a source of liquid fuels. Final Technical Report, US Department of Energy, Office of Research. , (1982).
  9. Benemann, J. R., Oswald, W. J. Report No. DOE/PC/93204–T5 Other: ON: DE97052880; TRN: TRN. Systems and economic analysis of microalgae ponds for conversion of CO2 to biomass. , (1996).
  10. Chisti, Y. Biodiesel from microalgae. Biotechnol Adv. 25 (3), 294-306 (2007).
  11. Davis, R., Aden, A., Pienkos, P. T. Techno-economic analysis of autotrophic microalgae for fuel production. Applied Energy. 88 (10), 3524-3531 (2011).
  12. Jones, S., et al. Process design and economics for the conversion of algal biomass to hydrocarbons: whole algae hydrothermal liquefaction and upgrading. U.S. Department of Energy Bioenergy Technologies Office. , (2014).
  13. Lundquist, T. J., Woertz, I. C., Quinn, N. W. T., Benemann, J. R. A realistic technology and engineering assessment of algae biofuel production. Energy Biosciences Institute. , (2010).
  14. Nagarajan, S., Chou, S. K., Cao, S., Wu, C., Zhou, Z. An updated comprehensive techno-economic analysis of algae biodiesel. Bioresour Technol. 145, 150-156 (2011).
  15. Pienkos, P. T., Darzins, A. The promise and challenges of microalgal-derived biofuels. Biofuels Bioproducts & Biorefining-Biofpr. 3, 431-440 (2009).
  16. Richardson, J. W., Johnson, M. D., Outlaw, J. L. Economic comparison of open pond raceways to photo bio-reactors for profitable production of algae for transportation fuels in the Southwest. Algal Research. 1 (1), 93-100 (2012).
  17. Rogers, J. N., et al. A critical analysis of paddlewheel-driven raceway ponds for algal biofuel production at commercial scales. Algal Research. 4, 76-88 (1016).
  18. Sun, A., et al. Comparative cost analysis of algal oil production for biofuels. Energy. 36 (8), 5169-5179 (2011).
  19. Thilakaratne, R., Wright, M. M., Brown, R. C. A techno-economic analysis of microalgae remnant catalytic pyrolysis and upgrading to fuels. Fuel. 128, 104-112 (2014).
  20. Quinn, J. C., et al. Nannochloropsis production metrics in a scalable outdoor photobioreactor for commercial applications. Bioresour Technol. 117, 164-171 (2012).
  21. Borkenstein, C., Knoblechner, J., Frühwirth, H., Schagerl, M. Cultivation of Chlorella emersonii with flue gas derived from a cement plant. J Appl Phycol. 23 (1), 131-135 (2010).
  22. Douskova, I., et al. Simultaneous flue gas bioremediation and reduction of microalgal biomass production costs. Appl Microbiol Biotechnol. 82 (1), 179-185 (2009).
  23. Israel, A., Gavrieli, J., Glazer, A., Friedlander, M. Utilization of flue gas from a power plant for tank cultivation of the red seaweed Gracilaria cornea. Aquaculture. 249 (1-4), 311-316 (2012).
  24. Napan, K., Teng, L., Quinn, J. C., Wood, B. . Impact of Heavy Metals from Flue Gas Integration with Microalgae Production. , (2015).
  25. Eaton, A. D., Clesceri, L. S., Rice, E. W., Greenberg, A. E. 3. 1. 2. 5. B. Inductively coupled plasma/mass spectrometry (ICP/MS) method. Standard methods for the examination of water and wastewater. , (2005).
  26. Smith, M., Compton, J. S. . Matrix effects in the ICP-MS analysis of selenium in saline water samples. , (2004).
  27. Mehta, S. K., Gaur, J. P. Use of algae for removing heavy metal ions from wastewater: progress and prospects. Crit Rev Biotechnol. 25 (3), 113-152 (2005).
  28. Eaton, A. D., Clesceri, L. S., Rice, E. W., Greenberg, A. E. 3. 1. 2. 0. B. Inductively coupled plasma (ICP) method. Standard methods for the examination of water and wastewater. , (2005).
check_url/es/52936?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Napan, K., Hess, D., McNeil, B., Quinn, J. C. Quantification of Heavy Metals and Other Inorganic Contaminants on the Productivity of Microalgae. J. Vis. Exp. (101), e52936, doi:10.3791/52936 (2015).

View Video