Summary

Un poco costoso, test comportamentale scalabile per la misurazione etanolo sedazione sensibilità e tolleranza Rapid in<em> Drosophila</em

Published: April 15, 2015
doi:

Summary

Straightforward assays for measuring ethanol sensitivity and rapid tolerance in Drosophila facilitate the use of this model organism for investigating these important ethanol-related behaviors. Here, a relatively simple, scalable assay for measuring ethanol sensitivity and rapid tolerance in flies is described.

Abstract

L'uso di alcol disturbo (AUD) è una sfida di salute gravi. Nonostante una grande componente ereditaria per AUD, pochi geni sono stati inequivocabilmente implicati nella loro eziologia. Il moscerino della frutta, Drosophila melanogaster, è un modello potente per esplorare i meccanismi molecolari alla base genetica comportamenti alcol-correlati e detiene quindi una grande promessa per l'identificazione e la comprensione della funzione dei geni che influenzano AUD. L'uso del modello Drosophila per questi tipi di studi dipende dalla disponibilità di saggi che misurano affidabile risposte comportamentali a etanolo. Questo rapporto descrive un test adatto per valutare la sensibilità etanolo e tolleranza rapida in mosche. Etanolo sensibilità misurata in questo saggio è influenzata dal volume e la concentrazione di etanolo utilizzato, una varietà di manipolazioni genetiche precedentemente riportati, e anche la lunghezza di tempo in linea sono alloggiati senza cibo immediatamente prima del test. Al contrario, etanolo sensitivity misurata in questo dosaggio non è influenzato dal vigore di movimentazione mosca, sesso in linea, e la supplementazione di mezzo di crescita con antibiotici o lieviti vivi. Tre metodi diversi per quantificazione sensibilità etanolo sono descritte, tutto conduce a risultati sostanzialmente indistinguibili sensibilità etanolo. La natura scalabile di questo test, in combinazione con la sua semplicità complessiva di set-up e relativamente a basso costo, lo rendono adatto per l'analisi piccola e grande scala genetica della sensibilità etanolo e tolleranza rapida in Drosophila.

Introduction

L'uso di alcol disturbo (AUD) è un problema di salute enorme in tutto il mondo (rivisto in 1). Sebbene i meccanismi di guida lo sviluppo di AUD sono complesse, questi disturbi hanno una notevole componente genetica (ad esempio, 2). La grande ereditabilità di AUD e le risposte comportamentali conservati in etanolo in molte specie (recensito in 3,4) hanno generato un forte interesse ad utilizzare organismi modello genetici per studiare il coinvolgimento di specifici geni nei comportamenti etanolo legate verso una migliore comprensione delle basi molecolari di AUD. Il moscerino della frutta, Drosophila melanogaster, è emerso come organismo modello principale per esplorare i meccanismi molecolari-genetica dei comportamenti etanolo correlati (recensito in 3,4). Studi in mosche hanno evidenziato i ruoli per diverse vie di segnalazione nelle risposte comportamentali a etanolo (recensito in 5). Curiosamente, alcuni dei geni e dei percorsi che influenzare respons comportamentalies a etanolo in linea sono stati implicati in roditori comportamenti etanolo correlati e / o AUD umana (ad esempio, 6-14). La conservazione di meccanismi di guida comportamenti etanolo legate tra le specie, insieme con la suite di strumenti genetici disponibili nel sistema modello Drosophila, sottolineano l'utilità del modello di mosca della frutta per studiare la genetica di risposte comportamentali a etanolo.

Sensibilità 15,16 e tolleranza (rivisto in 17) di etanolo negli esseri umani è legato allo sviluppo di AUD. Entrambe queste risposte comportamentali a etanolo può essere modellato in linea attraverso una serie di test di laboratorio (rivisto in 3,4). Tutti i saggi mosca noti gli autori sono basati su uno dipendente dal tempo etanolo-indotta sedazione / incoordinazione o di recupero in funzione del tempo da etanolo sedazione.

In un precedente articolo dal nostro gruppo sulla genetica della sensibilità etanolo e rtolleranza APID in Drosophila, un test comportamentale basato su etanolo sedazione vapore indotta di mosche è stato utilizzato 18. Test in questo test è stato avviato con il trasferimento dal vivo adulti vola senza anestesia svuotare fiale alimentari, intrappolando le mosche nelle fiale con una spina di acetato di cellulosa, aggiungendo etanolo verso l'alto (cioè, lato non volo) del tappo di acetato di cellulosa, e sigillare la fiala contenente mosche, spina acetato di cellulosa e di etanolo con un tappo di silicone (vedi schema in Figura S3, riferimento 18). Più fiale che rappresentano diversi gruppi di mosche sono state valutate in parallelo, aumentando la velocità di questo test. Fiale sono stati dati un codice anonimo e sperimentatori sono stati accecati per gruppo di trattamento per prevenire la distorsione intenzionale nella valutazione della sedazione. In un esperimento standard mosche in fiale erano picchiettare leggermente ad intervalli di 6 min e, dopo un recupero di 30 secondi, il numero di mosche sedati in ogni flacone è stato contato e converted per cento mosche attivi. Mosche assorbiti vapori di etanolo dal tappo di acetato di cellulosa in modo dipendente dal tempo, causando un aumento progressivo in etanolo interno 18 e sedazione (riferimento cf 18 e Figure 1A e 1B in questo rapporto). La sedazione in questo test è stato operativamente definita come mosche (i) in piedi in assenza di camminare o (ii) che giace sulla schiena, con o senza sbattere le ali. Qui, questo dosaggio etanolo sedazione è descritta in dettaglio, ulteriore ottimizzazione operativa che riguardano l'uso è previsto, e il test viene utilizzato per indirizzare il contributo delle opzioni integrazione alimentare sulla sensibilità fly sedazione.

Protocol

1. Giorno Prima Assay Raccogliere mosche in fiale alimenti freschi in gruppi di 11 (sesso unico) in breve (1-5 minuti) CO 2. Consentire mosche di recuperare O / N in fiale alimentari in uno spazio ambiente controllato (tipicamente 25 ° C, 60% umidità relativa, 12 hr luce / buio ciclo). Preparare la soluzione di etanolo (s) diluendo puro (100%) di etanolo in purificato (≥18 MW) di acqua a concentrazione finale (s) appropriato per l'esperimento previsto. Lasciare la soluzi…

Representative Results

I dati grezzi di questa analisi etanolo sedazione sono i numeri di mosche che vengono sedati in funzione del tempo di esposizione al vapore etanolo. I dati grezzi sono convertiti in linea attivi cento in funzione del tempo (dati primario, figure 1A, B, D – F). La sensibilità all'etanolo sedazione dai dati primari può essere quantificata come sedazione Tempo 50 (ST50), il tempo necessario per il 50% di mosche per diventare sedato o aea sotto la curva (AUC), via interpolazione curva…

Discussion

Test semplice che riproducibile quantificare fenotipi significativi sono di grande valore per l'analisi del comportamento. Il lavoro qui descritto affronta diversi aspetti pratici di un test per misurare la sensibilità etanolo sedazione e tolleranza rapida in Drosophila. Sebbene non sia un obiettivo di questo lavoro, analisi comportamentali sono facilitate mantenendo l'ambiente e lo sfondo costante genetico per soggetti di prova all'interno di uno studio. Inoltre, i confronti dovrebbero generalment…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

These studies were supported by grants from the National Institutes of Health, National Institute for Alcoholism and Alcohol Abuse to M.G. (P20AA017828, R01AA020634, P50 AA022537). The authors thank Jill Bettinger for helpful discussions and Jacqueline DeLoyht for technical assistance.

Materials

food vials VWR 89092-772 narrow
Flugs Genesee/flystuff.com 49-102 narrow
silicone stopper Fisher Scientific 09-704-1l #4
ethanol Pharmaco-Aaper 111000200 200 proof

Referencias

  1. Rehm, J., et al. Global burden of disease and injury and economic cost attributable to alcohol use and alcohol-use disorders. Lancet. 373, 2223-2233 (2009).
  2. Prescott, C. A., Kendler, K. S. Genetic and environmental contributions to alcohol abuse and dependence in a population-based sample of male twins. The American journal of psychiatry. 156, 34-40 (1999).
  3. Devineni, A. V., Heberlein, U. The evolution of Drosophila melanogaster as a model for alcohol research. Annual review of neuroscience. 36, 121-138 (2013).
  4. Scholz, H., Mustard, J. A. Invertebrate Models of Alcoholism. Current topics in behavioral neurosciences. 13, 433-457 (2011).
  5. Rodan, A. R., Rothenfluh, A., Reilly, M. T., Lovinger, D. M. . Functional Plasticity and Genetic Variation: Insights into the Neurobiology of Alcoholism. 91, (2010).
  6. Schumann, G., et al. Genome-wide association and genetic functional studies identify autism susceptibility candidate 2 gene (AUTS2) in the regulation of alcohol consumption. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 7119-7124 (2011).
  7. Corl, A. B., et al. Happyhour, a Ste20 family kinase, implicates EGFR signaling in ethanol-induced behaviors. Cell. 137, 949-960 (2009).
  8. Moore, M. S., et al. Ethanol intoxication in Drosophila: Genetic and pharmacological evidence for regulation by the cAMP signaling pathway. Cell. 93, 997-1007 (1998).
  9. Scholz, H., Franz, M., Heberlein, U. The hangover gene defines a stress pathway required for ethanol tolerance development. Nature. 436, 845-847 (2005).
  10. Riley, B. P., et al. Alcohol dependence is associated with the ZNF699 gene, a human locus related to Drosophila hangover, in the Irish affected sib pair study of alcohol dependence (IASPSAD) sample. Molecular psychiatry. 11, 1025-1031 (2006).
  11. Morozova, T. V., et al. Alcohol sensitivity in Drosophila: translational potential of systems genetics. Genética. 183, 733-745 (2009).
  12. Ogueta, M., Cibik, O., Eltrop, R., Schneider, A., Scholz, H. The influence of Adh function on ethanol preference and tolerance in adult Drosophila melanogaster. Chemical senses. 35, 813-822 (2010).
  13. Han, S., et al. Integrating GWASs and human protein interaction networks identifies a gene subnetwork underlying alcohol dependence. American journal of human genetics. 93, 1027-1034 (2013).
  14. Lind, P. A., et al. A genomewide association study of nicotine and alcohol dependence in Australian and Dutch populations. Twin Res Hum Genet. 13, 10-29 (2010).
  15. Schuckit, M. A. Low level of response to alcohol as a predictor of future alcoholism. The American journal of psychiatry. 151, 184-189 (1994).
  16. Schuckit, M. A., Smith, T. L. An 8-year follow-up of 450 sons of alcoholic and control subjects. Archives of general psychiatry. 53, 202-210 (1996).
  17. Tabakoff, B., Cornell, N., Hoffman, P. L. Alcohol tolerance. Ann Emerg Med. 15, 1005-1012 (1986).
  18. Chan, R. F., et al. Contrasting Influences of Drosophila white/mini-white on Ethanol Sensitivity in Two Different Behavioral Assays. Alcohol Clin Exp Res. 38, 1582-1593 (2014).
  19. Eddison, M., et al. arouser reveals a role for synapse number in the regulation of ethanol sensitivity. Neuron. 70, 979-990 (2011).
  20. Wen, T., Parrish, C. A., Xu, D., Wu, Q., Shen, P. Drosophila neuropeptide F and its receptor, NPFR1, define a signaling pathway that acutely modulates alcohol sensitivity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 2141-2146 (2005).
  21. Bhandari, P., Kendler, K. S., Bettinger, J. C., Davies, A. G., Grotewiel, M. An assay for evoked locomotor behavior in Drosophila reveals a role for integrins in ethanol sensitivity and rapid ethanol tolerance. Alcohol Clin Exp Res. 33, 1794-1805 (2009).
  22. Bhandari, P., et al. Chloride intracellular channels modulate acute ethanol behaviors in Drosophila, Caenorhabditis elegans and mice. Genes, brain, and behavior. 11, 387-397 (2012).
  23. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila. Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).
  24. Chen, J., Wang, Y., Zhang, Y., Shen, P. Mutations in Bacchus reveal a tyramine-dependent nuclear regulator for acute ethanol sensitivity in Drosophila. Neuropharmacology. 67, 25-31 (2013).
  25. Lasek, A. W., Giorgetti, F., Berger, K. H., Tayor, S., Heberlein, U. Lmo genes regulate behavioral responses to ethanol in Drosophila melanogaster and the mouse. Alcohol Clin Exp Res. 35, 1600-1606 (2011).
  26. Maples, T., Rothenfluh, A. A simple way to measure ethanol sensitivity in flies. J Vis Exp. , e2541 (2011).
  27. Rothenfluh, A., et al. Distinct behavioral responses to ethanol are regulated by alternate RhoGAP18B isoforms. Cell. 127, 199-211 (2006).
  28. Rothenfluh, A., Troutwine, B. R., Ghezzi, A., Atkinson, N. S., Nohronha, A. Ch. 23. Neurobiology of Alcohol Dependence. 23, 467-495 (2014).
  29. Jones, M. A., Grotewiel, M. Drosophila as a model for age-related impairment in locomotor and other behaviors. Experimental gerontology. 46, 320-325 (2010).
  30. Martin, I., Grotewiel, M. S. Oxidative damage and age-related functional declines. Mechanisms of ageing and development. 127, 411-413 (2006).
  31. Devineni, A. V., Heberlein, U. Acute ethanol responses in Drosophila are sexually dimorphic. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109, 21087-21092 (2012).

Play Video

Citar este artículo
Sandhu, S., Kollah, A. P., Lewellyn, L., Chan, R. F., Grotewiel, M. An Inexpensive, Scalable Behavioral Assay for Measuring Ethanol Sedation Sensitivity and Rapid Tolerance in Drosophila. J. Vis. Exp. (98), e52676, doi:10.3791/52676 (2015).

View Video