Summary

Генерация мышиный кардиостимулятор клеточных агрегатов на основе ES-Cell-программирования в комбинации с Myh6-промоутер-Selection

Published: February 17, 2015
doi:

Summary

Этот протокол описывает, как производить функциональную пазухи узловой ткани из мышиных плюрипотентных стволовых клеток (ЭСК). T-Box3 (Tbx3) избыточная экспрессия плюс сердца Миозин-тяжелых цепей (Myh6), промотор выбор антибиотика приводит к высокой чистоты кардиостимулятор клеточных агрегатов. Эти "наведенных синусового-тела" ("iSABs") содержат более 80% клеток водителя ритма, обнаруживают сильно повышенные показатели избиение и способны ходить миокарда Экс Vivo.

Abstract

Лечение "синдром слабости синусового узла" основывается на искусственных кардиостимуляторов. Они несут опасностей, таких как отказ и инфекций батареи. Кроме того, им не хватает гормона реагирования и в целом процедура дорогостоящим. "Биологические водители ритма", полученные от ЧОК может стать альтернативой, но типично содержание клеток водителя ритма в эмбриональные тельца (ЭТ) является крайне низким. Описанный протокол соединяет "вперед программирование" мышиных ЭСК через синусового узла индуктора Tbx3 с Myh6-промоутер основе выбора антибиотиков. Это дает кардиомиоцитов агрегатов в соответствии> 80% физиологически функциональных клеток водителя ритма. Эти "наведенных синусового-органы" ("iSABs") спонтанно сокращается с еще неохваченных частот (400-500 BPM), соответствующих узловых клеток, выделенных из мышиных сердцах и в состоянии ходить мышиный миокарда Экс Vivo. Использование описанного протокола высокой чистоты синусовогоузловые отдельные клетки могут быть получены, которые используются, например, для экстракорпорального тестирования на наркотики. Кроме того, iSABs, полученные в соответствии с настоящим Протоколом, может стать важным шагом на пути сердца тканевой инженерии.

Introduction

Термин "синдром слабости синусового узла" суммирует несколько заболевания, приведшие к ухудшению системы кардиостимулятор. Она включает в себя патологический, симптоматическая синусовая брадикардия, синоатриальной блок, синус арест, а также синдром тахикардия, брадикардия. Таким образом, "больной синдром пазухи" часто сопровождается общими сердечных заболеваний, таких как ишемическая болезнь сердца, кардиомиопатии или миокардита. В настоящее время, терапевтические подходы основаны на имплантации кардиостимуляторов электрических. Однако, это идет вместе с рядом рисков, таких как инфекции и неисправности аккумулятора. В целом, частота осложнений прежнему очень высок у пациентов, имеющие имплантированные искусственного водителя ритма. Кроме того, в отличие от эндогенного стимулятора, эти устройства не отвечают на стимуляцию гормонов.

Будущее альтернативой может рассчитывать на наличие "биологических кардиостимуляторов", для которых ЧОК может служитьв качестве подходящего клеточного источника и которые также весьма ценным для экстракорпорального тестирования на наркотики. Тем не менее, основная проблема заключается в очень редких появления пазухи узловых клеток в эмбриональных органов (EBS) – это, как правило, не превышает ~ 0,5% 1.

Ранее было показано, что "вперед программирование" на конкретные кардиомиоцитов подтипов осуществимо с помощью сверхэкспрессии различных ранних сердечно-сосудистых факторов транскрипции, таких как мезодермы конкретных-задней 1 (MesP1) и NK2 транскрипции фактора связаны, локус 5 (Nkx2.5) 2, 3. Для обычного размера и функции синусового узла (SAN), Т-поле транскрипционный фактор Tbx3 имеет решающее значение, которое, как было показано, чтобы инициировать программу гена стимулятором и контролировать дифференциации SAN 4. Хотя это расширение появление функциональных клеток водителя ритма, содержание еще не превышает ~ 40% в течение всей популяции клеток кардиомиоцитов.

Таким образом, дополнительный Myh6-промоутер на основе антибиотиков выбора шага 5 была введена нами. В конечном итоге это приводит к еще незаметно кардиомиоцитов агрегаты ("индуцированные синоатриального органов;" iSABs »), которые обладают существенно увеличена избиение частоты (> 400 ударов в минуту) в пробирке, впервые аппроксимирующей тех, мышиного сердца и сопоставимы в пробирке выращивают синус узловые клетки, выделенные из мышиного сердца 6. Под администрации Изопреналин опередив даже частоты 550 уд будут достигнуты. Примечательно, что iSABs состоят из более чем 80% функциональных узловых клеток Как видно из обширного физиологического анализа 7. В последнее время несколько подходов для создания пазухи узловые клетки с помощью прямого перепрограммирования 19, поверхностных маркеров 14 или медикаментозное лечение с малых молекул 16,17 описанных. Тем не менее, ни один из этих методов не привело к такой высокой чистоты клеток водителя ритма и бить частотах, близких к мышиным онискусство как это наблюдается в iSABs.

Кроме того, в Экс Vivo модели культивируемых взрослых мышей ломтиками желудочковой которые потеряли их самопроизвольное биение деятельности, iSABs способны интегрироваться в ломтик ткани, тем самым оставаясь спонтанно активны и энергично ходить ломтики сердца к сокращений 7. Подробный протокол для генерации этих iSABs описано в этой статье.

Protocol

1. Рекомендации Перед началом Не используйте ЭСК загрязненных микоплазмы, потому что они не будут дифференцировать должным образом в синусового узла клеток. Тест на загрязнение микоплазмой перед началом протокола. Делайте это, используя набор ПЦР для быстрого, высокочувствитель…

Representative Results

Описанный протокол позволяет генерировать iSABs с бьющимся частотой около 450 ударов в минуту от СРП (показано в фильме), который находится рядом с частотой биений мыши сердца. После диссоциации iSABs (шаг 2.8.8) наблюдаемые отдельные клетки показывают типичную форму клеток синусового узла (шпи…

Discussion

Способность производить стволовых клеток, полученных кардиостимулятор клетки может позволить воссоздания надлежащего сердечного ритма в смысле «биологических кардиостимуляторов". Кроме того, тестирование на наркотики в пробирке будет извлечь пользу из их наличия. ЧОК может прив?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number
Iscove's liquid medium with stable glutamine Biochrom AG FG 0465
DMEM liquid medium without Na-pyruvate, with stable glutamine Biochrom AG FG 0435
CLS type IV, CLS IV Biochrom AG C4-22
Non-essential amino acids Biochrom AG K 0293
FBS Superior Biochrom AG S 0615
Sodium pyruvate (100 mM) Biochrom AG L 0473
G 418-BC liquid (ready-to-use solution), sterile Biochrom AG A 2912
Reagent reservoir PP f.multichannel pip. 60ml,sterile Brand 703409
Accutase eBioscience,Inc. 00-4555-56
Eppendorf Xplorer/Xplorer plus, electronic pipette Eppendorf 4861000155
Falcon Cell Strainer 40µm Falcon 352340
Penicillin/Streptomycin  GE Healthcare P11-010
Petri Dishes Greiner BioOne 663102
DPBS without Ca and Mg PAN-Biotech P04-36500
Fetal bovine serum PAN-Biotech P30-3302
Leukemia inhibitory factor Phoenix Europe GmbH LIF-250
Quadratic petri dishes Roth PX67.1
Gelatin from cold water fish skin SigmaAldrich G7765
2-Mercaptoethanol SigmaAldrich M3148 
1-Thioglycerol SigmaAldrich M6145
Tissue culture dishes TPP 93100
Tissue culture flask TPP 90076
Tissue culture test plates (24 well) TPP 92424

Referencias

  1. Wobus, A. M., Wallukat, G., Hescheler, J. Pluripotent mouse embryonic stem cells are able to differentiate into cardiomyocytes expressing chronotropic responses to adrenergic and cholinergic agents and Ca2+ channel blockers. Differentiation. 48 (3), 173-182 (1991).
  2. David, R., et al. MesP1 drives vertebrate cardiovascular differentiation through Dkk-1-mediated blockade of Wnt-signalling. Nat Cell Biol. 10, 338-345 (2008).
  3. David, R., et al. Forward programming of pluripotent stem cells towards distinct cardiovascular cell types. Cardiovasc Res. 84 (2), 263-272 (2009).
  4. Hoogaars, W. M., et al. Tbx3 controls the sinoatrial node gene program and imposes pacemaker function on the atria. Genes Dev. 21 (9), 1098-1112 (2007).
  5. Klug, M. G., Soonpaa, M. H., Koh, G. Y., Field, L. J. Genetically selected cardiomyocytes from differentiating embronic stem cells form stable intracardiac grafts. J Clin Invest. 98 (1), 216-224 (1996).
  6. Marger, L., et al. Pacemaker activity and ionic currents in mouse atrioventricular node cells. Channels (Austin). 5 (3), 241-250 (2011).
  7. Jung, J. J., et al. Programming and isolation of highly pure physiologically and pharmacologically functional sinus-nodal bodies from pluripotent stem cells). Stem cell reports. 2 (5), 592-605 (2014).
  8. Maltsev, V. A., Wobus, A. M., Rohwedel, J., Bader, M., Hescheler, J. Cardiomyocytes differentiated in vitro from embryonic stem cells developmentally express cardiac-specific genes and ionic currents. Circulation research. 75 (2), 233-244 (1994).
  9. He, J. Q., Ma, Y., Lee, Y., Thomson, J. A., Kamp, T. J. Human embryonic stem cells develop into multiple types of cardiac myocytes: action potential characterization. Circ Res. 93 (1), 32-39 (2003).
  10. Yanagi, K., et al. Hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated channels and T-type calcium channels confer automaticity of embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. Stem cells. 25 (11), 2712-2719 (2007).
  11. Barbuti, A., et al. Molecular composition and functional properties of f-channels in murine embryonic stem cell-derived pacemaker cells. J Mol Cell Cardiol. 46 (3), 343-351 (2009).
  12. Ma, J., et al. High purity human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: electrophysiological properties of action potentials and ionic currents. American journal of physiology. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (5), H2006-H2017 (2011).
  13. David, R., Franz, W. M. From pluripotency to distinct cardiomyocyte subtypes. Physiology (Bethesda). 27 (3), 119-129 (2012).
  14. Scavone, A., et al. Embryonic stem cell-derived CD166+ precursors develop into fully functional sinoatrial-like cells). Circ Res. 113 (4), 389-398 (2013).
  15. Morikawa, K., et al. Identification, isolation and characterization of HCN4-positive pacemaking cells derived from murine embryonic stem cells during cardiac differentiation. Pacing Clin Electrophysiol. 33 (33), 290-303 (2010).
  16. Wiese, C., et al. Formation of the sinus node head and differentiation of sinus node myocardium are independently regulated by Tbx18 and Tbx3. Circ Res. 104 (3), 388-397 (2009).
  17. Kleger, A., et al. Modulation of calcium-activated potassium channels induces cardiogenesis of pluripotent stem cells and enrichment of pacemaker-like cells. Circulation. 122 (18), 1823-1836 (2010).
  18. Bakker, M. L., et al. T-box transcription factor TBX3 reprogrammes mature cardiac myocytes into pacemaker-like cells. Cardiovasc Res. 94 (3), 439-449 (2012).
  19. Kapoor, N., Liang, W., Marban, E., Cho, H. C. Direct conversion of quiescent cardiomyocytes to pacemaker cells by expression of Tbx18. Nat Biotechnol. 31 (1), 54-62 (2013).
  20. Johns, D. C., et al. Adenovirus-mediated expression of a voltage-gated potassium channel in vitro (rat cardiac myocytes) and in vivo (rat liver). A novel strategy for modifying excitability. J Clin Invest. 96 (2), 1152-1158 (1995).
  21. Nuss, H. B., Marban, E., Johns, D. C. Overexpression of a human potassium channel suppresses cardiac hyperexcitability in rabbit ventricular myocytes. J Clin Invest. 103 (6), 889-896 (1999).

Play Video

Citar este artículo
Rimmbach, C., Jung, J. J., David, R. Generation of Murine Cardiac Pacemaker Cell Aggregates Based on ES-Cell-Programming in Combination with Myh6-Promoter-Selection. J. Vis. Exp. (96), e52465, doi:10.3791/52465 (2015).

View Video