Summary

Flat Mount beeldvorming van de huid van muizen en de toepassing ervan op de Analyse van Haarzakje Patterning en Sensorische Axon morfologie

Published: June 25, 2014
doi:

Summary

Zoogdierhuid bevat een divers scala aan structuren – zoals haarfollikels en zenuwuiteinden – die onderscheidend patronen van ruimtelijke organisatie vertonen. Het analyseren van de huid als een platte berg maakt gebruik van de 2-dimensionale geometrie van dit weefsel tot volledige dikte van hoge-resolutie afbeeldingen van de huid structuren te produceren.

Abstract

Huid is een zeer heterogeen weefsel. Intra-dermale structuren omvatten haarzakjes, haarspier spieren, epidermale specialisaties (zoals Merkel cel clusters), talgklieren, zenuwen en zenuwuiteinden, en haarvaten. De ruimtelijke ordening van deze structuren wordt streng gecontroleerd op microscopische schaal – zoals gezien, bijvoorbeeld in de geordende celtypen binnen een haarfollikel – en op microscopische schaal – zoals gezien door de bijna identieke oriëntaties van duizenden haren follikels binnen een lokaal gebied van de huid. Visualisering deze structuren zonder fysieke snijden de huid mogelijk door de 2-dimensionale geometrie van dit orgaan. In dit protocol, laten we zien dat de huid van muizen kan worden ontleed, vaste, gepermeabiliseerde, gekleurd, en verduidelijkt als een intacte twee dimensionaal object, een platte berg. Het protocol zorgt voor eenvoudige visualisatie van de huid structuren in hun geheel door de volledige dikte van grote delen van de huid door optical snijden en wederopbouw. Foto's van deze structuren kunnen ook worden geïntegreerd met informatie over de positie en oriëntatie ten opzichte van het lichaam assen.

Introduction

De huid is een van de grootste organen in het lichaam, met belangrijke functies in somato-sensatie, isolatie / thermoregulatie, en immuunsysteem 1. Het begrijpen van de moleculaire en cellulaire basis van de ontwikkeling en functie van de huid is geweest van langdurige interesse vanwege het fundamentele belang van de huid als een biologisch systeem en de relevantie ervan voor dermatologie. Zoogdierhuid bevat een verscheidenheid aan meercellige structuren, met inbegrip gelaagde lagen van keratinocyten, dermale bindweefsel, verschillende soorten van haarzakjes, talgklieren, haarspier spieren, bloedvaten, en minstens een dozijn verschillende klassen van afferente (sensorische) en efferente zenuw vezels (figuur 1). Verschillende gebieden van het lichaam geassocieerd met typisch verschillende huidtypes. In de meeste zoogdieren, is vrijwel het gehele lichaamsoppervlak bedekt met huid die dicht zit vol met haarfollikels. [Mensen en naakte mol ratten vormen uitzonderingen op eis patroon.] Haar ontbreekt in de palmaire oppervlak van de handen en voeten, die ook worden geassocieerd met gespecialiseerde epidermale patronen (dermatoglyphs), exocriene klieren, en sensorische zenuwuiteinden. De cellulaire en moleculaire gebeurtenissen die de groei, differentiatie en ruimtelijke rangschikking van cellen in de haarfollikel regelen van bijzonder belang aangezien elke follikel vertoont, in het klein, veel essentiële kenmerken van organogenese 2. Deze functies omvatten het bestaan ​​van stamcellen en een stamcel niche, nauwkeurig gechoreografeerde cel migraties, en de assemblage van meercellige structuren uit embryologically verschillende componenten.

Dit artikel beschrijft methoden voor het ontleden, het bevestigen, etikettering, en imaging muis huid als een intacte twee-dimensionale vel, aangeduid als een "geheel mount" of "flat mount 'voorbereiding. Aangezien muis huid is relatief dun, is het mogelijk om beeld door de volledige dikte van afgeplatte skin met conventionele confocale microscopie. De flat mount aanpak zoogdierhuid beeldvorming is technisch voordelig omdat het omzeilt de noodzaak van fysieke snijden, waardoor structuren volledig te worden gereconstrueerd door optische sectie. Aangezien bijna de gehele huid wordt behandeld als een object, het vlakke zet benadering vergemakkelijkt ook de beeldvorming van meerdere gebieden van het lichaamsoppervlak met behoud van informatie over de positie en oriëntatie ten opzichte van het lichaam assen. Tenslotte structuren binnen de huid zijn typisch in patronen die regelmatig herhaald, waardoor de verzameling afbeeldingen vergemakkelijken van meerdere vertegenwoordigers van een bepaalde structuur. Deze kenmerken zijn bekend neurobiologists die via de retina, een tweedimensionaal gedeelte van het centrale zenuwstelsel die soortgelijke voordelen heeft voor onderzoek naar neuronale morfologie 3 werken.

De vlakke montage aanpak hier beschreven is van bijzondere utility voor het bestuderen structuren die ruimtelijke organisatie vertonen op grotere schaal in het tweedimensionale vlak van de huid. Een voorbeeld van grootschalige ruimtelijke organisatie is de gecoördineerde polariteit van de haarzakjes en haren-follikel geassocieerd structuren – Merkel cel clusters, haarspier spieren, talgklieren en zenuwuiteinden 4. Haarzakjes georiënteerd onder een hoek ten opzichte van het vlak van de huid, en de component van de follikel vector die in de 2-dimensionale vlak van de huid ligt meestal vertoont een oriëntatie ten opzichte van het lichaam assen die nauwkeurig bepaald voor elk positie op het lichaam. Bijvoorbeeld, haarzakjes op de rug punt van rostraal caudaal en haren op het dorsale oppervlak van de voeten wijzen van proximale naar het distale. Haarfollikel oriëntatie wordt gecontroleerd door vlakke celpolariteit signalering (PCP, ook wel weefsel polariteit 5). Dit signaleringssysteem werd ontdekt in Drosophila waar een kleineset van kern PCP genen werd gevonden om de oriëntatie van cuticulair haren en haren te controleren. Drie zoogdieren orthologa van kern PCP genen – frizzled homoloog 6 (Fzd6, ook wel aangeduid als Fz6), cadherine EGF LAG uit zeven cycli G-receptor type 1 (Celsr1), en vang-achtige 2 (Vangl2) – spelen analoge rollen in zoogdiercellen huid, het coördineren van de oriëntaties van de haarzakjes met het lichaam assen. Studies Fz6 knockout muizen (Fzd6 tm1Nat, hierna Fz6 – / -) blijkt dat de primaire defect bij afwezigheid van PCP signalering een eerste randomisatie of desorganisatie van haarfollikel oriëntatie, zonder effect op de intrinsieke structuur van de follikels 6-8. Een tweede niet-PCP systeem werkt later plaatselijke aanpassing van nabijgelegen follikels, wat leidt tot de productie van grootschalige haar patronen zoals spiralen en bosjes bevorderen.

Een tweede voorbeeld van grootschaligeruimtelijke organisatie in de huid is te zien in de morfologie van sensorische axon priëlen. Sensorische neuronen die de huid innerveren hebben hun cellichamen in de dorsale wortel en trigeminus ganglia. Deze neuronen detecteren temperatuur, pijn, jeuk en diverse soorten mechanische vervormingen botst op de huid en haren 9. Ze kunnen worden ingedeeld in subtypes gebaseerd op axon diameter en geleidingssnelheid, eindstandige zenuwuiteinde structuur en de patronen van expressie van receptoren, kanalen en andere moleculen. Vanwege de hoge dichtheid van innervatie in de huid, analyses die gepaard visualiseren alle axonen (bijvoorbeeld anti-neurofilament immunokleuring) of zelfs alle axonen van een klasse (wanneer men een enkel celtype wordt gekenmerkt door expressie van een fluorescerende reporter) onthult algemeen een dichte opeenstapeling van axonen die het onmogelijk maakt om de morfologie van een individuele as definiëren. Om dit probleem te omzeilen, hebben we gebruik uiterst schaars genetisch gerichte lAbeling naar dorsale huid monsters waarin afzonderlijke goed geïsoleerde axon priëlen worden gevisualiseerd door de expressie van een histochemische verslaggever, menselijke placenta alkalische fosfatase 10 te produceren. Deze aanpak maakt het eenduidige visualisatie van individuele axon prieel morfologie en een definitie van de soorten somatosensorische neuron op basis van morfologische criteria.

Protocol

Deze studie werd uitgevoerd in strikte overeenstemming met de aanbevelingen in de gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren van de National Institutes of Health. Alle dieren werden behandeld volgens de goedgekeurde institutionele Animal Care en gebruik Comite (IACUC) protocol MO11M29 van de Johns Hopkins Medical Institutions. Raadpleeg uw plaatselijke Institutional Animal Care en gebruik Comite richtlijnen voor goedgekeurde methoden van euthanasie. Draag handschoenen, labjas en veiligheidsbril bij het hanteren va…

Representative Results

Helderveld beeldvorming van huid flatmounts kan worden gebruikt om beelden cutane sensorische afferenten (Figuur 3A 10) en de haarfollikels patronen gebaseerd op melaninepigmentatie (figuur 4). Confocale beeldvorming van huid flatmounts kan worden gebruikt om de geometrie van (1) Merkel cell clusters, zichtbaar gemaakt met anti-cytokeratine-6 ​​of AM kleurstofopname (figuren 3I-L), (2) haarspier spieren, zichtbaar gemaakt met anti-definiëren gladde spier…

Discussion

Beheersing van de dissectie hierboven beschreven methoden vereist alleen geduld, een vaste hand en een paar goede dissectie-instrumenten. De dorsale huid dissectie is relatief eenvoudig, maar de staart en de voet huid dissecties – vooral bij vroege postnatale leeftijden – zijn meer uitdagend. Bij vroege prenatale leeftijden (bijvoorbeeld voor E15), de huid moeilijk te verwijderen zonder scheuren. Gunstig voor veel studies van groei en patroonvorming van huidstructuren bij muizen, de belangrijke gebeurtenissen p…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Dr. Amir Rattner for helpful comments on the manuscript. Supported by the Howard Hughes Medical Institute.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
5-bromo-4-chloro-indolyl phosphate (BCIP) Roche 11383221001
AM1-43 Biotium 70024
AM4-65 Biotium 70039
Benzyl alcohol Sigma 402834
Benzyl benzoate Sigma  B-6630
Confocal microscope Zeiss LSM700
Cy3-alpha smooth muscle actin antibody Sigma  C6198 1:400
Cytokeratin-8  Developmental Studies Hybridoma Bank TROMA-I-c 1:500
Dissecting microscope
Dissection tools  Fine Science Tools scissors and forceps
Electric razor
Fluoromount G EM Sciences 17984-25
Formalin Sigma HT501320
Glass dishes Pyrex  6 cm and 10 cm diameter
Glass plates Amersham Biosciences SE202P-10 10 cm x 8 cm x 1 mm
Hair remover  Nair
Horizontal rotating platform  Hoefer PR250 Orbital shaker
Insect pins Fine Science Tools  26002-20
Ketamine/xylazine Sigma K113
Nitroblue tetrazolium (NBT) Roche  11383213001
Oil Red O Sigma O0625
Paraformaldehyde Sigma  P6148
Razor Blades VWR 55411-055
Secondary antibodies  Invitrogen Alexa-dye conjugated 
Sylgard-184 Fisher Scientific NC9020938
Tissue culture plastic dishes 10 cm diameter
Tissue culture plates 6- and 12-well 

Referencias

  1. Burns, T., Breathnach, S., Cox, N., Griffiths, C. . Rook’s Textbook of Dermatology. 8th ed. , (2010).
  2. Lee, J., Tumbar, T. Hairy tale of signaling in hair follicle development and cycling. Semin. Cell Dev. Biol. 23, 906-916 (2012).
  3. Masland, R. H. The neuronal organization of the retina. Neuron. 76, 266-280 (2012).
  4. Chang, H., Nathans, J. Responses of hair follicle-associated structures to loss of planar cell polarity signaling. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 110, (2013).
  5. Wallingford, J. B. Planar cell polarity and the developmental control of cell behavior in vertebrate embryos. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 28, 627-653 (2012).
  6. Guo, N., Hawkins, C., Nathans, J. Frizzled6 controls hair patterning in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 101, 9277-9281 (2004).
  7. Wang, Y., Badea, T., Nathans, J. Order from disorder: Self-organization in mammalian hair patterning. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 103, 19800-19805 (2006).
  8. Wang, Y., Chang, H., Nathans, J. When whorls collide: the development of hair patterns in frizzled 6 mutant mice. Development. 137, 4091-4099 (2010).
  9. Lumpkin, E. A., Caterina, M. J. Mechanisms of sensory transduction in the skin. Nature. 445, 858-865 (2007).
  10. Wu, H., Williams, J., Nathans, J. Morphologic diversity of cutaneous sensory afferents revealed by genetically directed sparse labeling. Elife. 1, (2012).
  11. Bianchi, N., Depianto, D., McGowan, K., Gu, C., Coulombe, P. A. Exploiting the keratin 17 gene promoter to visualize live cells in epithelial appendages of mice. Mol. Cell. Biol. 25, 7249-7259 (2005).
  12. Alonso, L., Fuchs, E. The hair cycle. J. Cell Sci. 119, 391-393 (2006).
  13. Braun, K. M., Niemann, C., Jensen, U. B., Sundberg, J. P., Silva-Vargas, V., Watt, F. M. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 30, 5241-5255 (2003).
  14. Badea, T. C., Wang, Y., Nathans, J. A noninvasive genetic/pharmacologic strategy for visualizing cell morphology and clonal relationships in the mouse. J. Neurosci. 23, 2314-2322 (2003).
  15. Rotolo, T., Smallwood, P. M., Williams, J., Nathans, J. Genetically-directed, cell type-specific sparse labeling for the analysis of neuronal morphology. PLoS One. 3, (2008).
  16. Devenport, D., Fuchs, E. Planar polarization in embryonic epidermis orchestrates global asymmetric morphogenesis of hair follicles. Nat. Cell Biol. 10, 1257-1268 (2008).
  17. Li, L., et al. The functional organization of cutaneous low-threshold mechanosensory neurons. Cell. 147, 1615-1627 (2011).
  18. Meyers, J. R., et al. Lighting up the senses: FM1-43 loading of sensory cells through nonselective ion channels. J. Neurosci. 23, 4054-4065 (2003).
  19. Fujiwara, H., et al. The basement membrane of hair follicle stem cells is a muscle cell niche. Cell. 144, 577-589 (2011).
  20. Orsini, M. W. Technique of preparation, study and photography of benzyl-benzoate cleared material for embryological studies. J. Reprod. Fertil. 3, 283-287 (1962).
  21. Ke, M. T., Fujimoto, S., Imai, T. SeeDB: a simple and morphology-preserving optical clearing agent for neuronal circuit reconstruction. Nat. Neurosci. 16, 1154-1161 (2013).
  22. Kuwajima, T., Sitko, A. A., Bhansali, P., Jurgens, C., Guido, W., Mason, C. ClearT: a detergent- and solvent-free clearing method for neuronal and non-neuronal tissue. Development. 140, 1364-1368 (2013).
  23. Hama, H., et al. Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain. Nat. Neurosci. 14, 1481-1488 (2011).
  24. Aal Ertürk, ., et al. Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO. Nat. Protoc. 7, 1983-1995 (2012).
  25. Chung, K., Deisseroth, K. CLARITY for mapping the nervous system. Nat. Methods. 10, 508-513 (2013).

Play Video

Citar este artículo
Chang, H., Wang, Y., Wu, H., Nathans, J. Flat Mount Imaging of Mouse Skin and Its Application to the Analysis of Hair Follicle Patterning and Sensory Axon Morphology. J. Vis. Exp. (88), e51749, doi:10.3791/51749 (2014).

View Video