トマト/ GFP-FLP / FRT法は、ショウジョウバエの生活にモザイク視細胞を可視化することを含む。これは、数日または数週間の網膜における光受容体の個々の細胞の運命を追跡するために使用することができる。この方法は、網膜変性および神経変性疾患または光受容細胞の発生の研究に最適です。
ショウジョウバエの眼は、開発し、神経変性の研究のためのモデルとして広く使用されている。強力な有糸分裂組換え技術により、クローンの分析に基づいて、優雅な遺伝子スクリーニングは、幼虫期における眼の発達と感光体(PR)の分化に関与するシグナル伝達経路の同定につながっている。ここでは生体成体ショウジョウバエの眼における急速なクローンの分析のために使用することができるトマト/ GFP-FLP / FRT法を記載している。蛍光光受容細胞はflipase媒介組換えによって生成されたモザイククローンを網膜上で、角膜中和法で撮像する。この方法は、網膜の古典的な組織学的切片上のいくつかの主要な利点を有する:それはハイスループットスクリーニングのために使用することができ、PRの生存および機能を調節する因子を同定するための有効な方法を証明している。なお、同一の生体アニムにPR変性の動態分析のために使用することができるら、数週間にわたって、大人のハエにおける広報生存または機能のための特定の遺伝子のための要件を実証すること。この方法はまた、このような平面細胞極性の確立が影響しているもののような発達の変異体において、細胞自律性の問題に対処するために有用である。
ショウジョウバエの網膜は、極性の明確に定義された軸( 図1B)と正確に編成されている約800個眼単位( 図1A)、から構成されている。 8光受容細胞(PRS)と錐体細胞、色素細胞や毛細胞1,2を含む12アクセサリー細胞、各ユニットは20セルが含まれています。 PRの2つのクラスは、それらが発現するロドプシン(Rhの)のタイプに基づいて区別される。 6外側のPR(R1-6)体Rh1を発現し、台形パターン( 図1C)に配置されている。台形の中央に、2の内側のPR(R7/R8)は、ロドプシンの4つの可能なタイプ(RH3、RH4、RH5またはRH6)を発現し、R7はR8の3の上に位置するように編成されています。
2,500以上の遺伝子が目のDEVE含むプロセスのワイドパネルの研究のための非常に強力なモデルを証明しているショウジョウバエの眼4の形態形成に関与しているlopment、広報採用、分化、平面内細胞極性、形態形成、生存、アポトーシスおよび視覚伝達5-9。
ショウジョウバエの眼に取り組んで研究者たちは、何年にもわたって、網膜を画像化し、体系的な遺伝子スクリーニングを実施するための技術を開発した。イメージする最も簡単な方法は、大人の網膜は、固定化された動物( 図1A)で角膜を見ることです。角膜の構造は電子顕微鏡を走査することによって正確に可視化することができるとURCFGコンソーシアム(によって大規模遺伝子スクリーニングに使用したhttp://www.bruinfly.ucla.edu )10。これは、多くの場合、開発や細胞生存率の初期段階を制御する遺伝子の変異により誘導されたような目の粗さや光沢などの角膜構造の世界的な形態学的変化を、可視化するための非常に有効なアプローチである。しかし、角膜の世界的な可視化は、SUはありません広報感桿分体の形態形成や成人のPR生存率および機能を調節する因子を同定するfficient。このような分析は、網膜11から13の接線半薄い樹脂切片の位相差顕微鏡に基づいた広報の整合性をより徹底的な調査を必要とする。この技術は、変異体のPRに赤色顔料14,15の欠如により同定することができるモザイクの分析に適している。
モザイク変異体クローンはまた、蛍光顕微鏡16,17上に緑色蛍光タンパク質(GFP)信号の欠如に基づいて、蛹または成体網膜の全載解剖で可視化することができる。これら2つの技術が非常に有用であるが、どちらも労力と時間がかかり、したがって、大規模なスクリーニングには適していない。我々は、他の迅速なPR分析を容易にするために、蛍光タンパク質を産生18,19のPRのイメージングのための角膜中和技術の使用を開発した。この技術では、変異体クローンは、モザイク成体ショウジョウバエクローンにおける顔料(+ w)の赤色の自己蛍光に基づいて同定することができる。しかし、この方法は、細胞自律性に対処するために必要な単一細胞の解像度が19を発行提供しない。私たちは、有糸分裂組換え20と角膜中和による蛍光タンパク質のイメージングを組み合わせたトマト/ GFP-FLP / FRT法を開発することにより、この問題を克服した。この方法は、単細胞解像度(で、高スループット、モザイククローンにおける突然変異のPRの迅速かつ正確な同定を可能にするhttp://www.ens-lyon.fr/LBMC/ApoDrosoDatabase/ )。これは、 ショウジョウバエ生体内週間の期間にわたって個々のPRを以下のために、動力学的分析において使用するのに適している。私たちは、モザイクの目の簡単な運動の分析での使用のためにここトマト/ GFP-FLP / FRT方法とヒントを説明します。
ショウジョウバエの眼が広く発生、増殖および生存を調節するシグナル伝達経路を解読するために使用されている。 1990年代初頭に、遺伝子スクリーニング多数のPR現像25-27の初期段階中に必要な経路を同定するために実施した。遺伝子スクリーニングの効率は、モザイククローン21内の機能喪失変異を試験することができる有糸分裂組換え技術により大幅に増加した。したがって、胚致死突然変異の役割は、体系的にそうでないヘテロ接合ハエの目にはホモ接合変異体のクローンでテストすることができた。ほとんどのモザイクの上映は、早期のPR募集、分化、軸索突起や開発幼虫や蛹10,25-31で発生する形態形成に焦点を当てている。今日まで、唯一のモザイク画面がelectroretinを介して視覚的反応を監視することによって、成体PR機能の調節のメカニズムを調べているogramは32をレコーディング。トマト/ GFP-FLP / FRT方法及び突然変異動物の生体内での時間経過解析を実行する可能性により、我々は成体PRの生存を調節する因子を同定するための新規な方法を設計し20,24として機能している。
トマト/ GFP-FLP / FRT法は樹脂包埋目の古典的な組織学的切片上のいくつかの主要な利点があります。まず、この方法は、はるかに速く安く、組織学的方法より実行しやすい、( 試薬および器具の表を参照)、適切な水浸漬を目的とした蛍光顕微鏡が使用可能であることを条件とする。第二に、トマト/ GFP-FLP / FRT方法は、ミニ白色導入遺伝子を有する、例えば、(+ wはUAS)Pの表現として、導入遺伝子発現と組み合わせて使用することができる。トマト/ GFP-FLP / FRT系、Pでのw +は、クローン検出のために使用される組織切片、とは対照的に(UAS、+ w)はクローンdで干渉しないトマト蛍光タンパク質に基づくetection。 (+ W UAS-FATP)Pを用いてトランスジェニックハエは、FATP変異型のPR( 図7)の救助を視覚化することができました。第三に、トマト/ GFP-FLP / FRTに基づいて、失われたのPRの遺伝子型の曖昧さであることを含めてクローン解析のすべてのタイプのキー落とし穴。確かに、それはPRがあるため、特定の遺伝子の機能の欠如のため、または、特に変異体クローンの境界で細胞非自律的な効果の存在しないかどうかは不明である。トマト/ GFP-FLP / FRTの方法によれば、数週間の期間にわたって同じ動物で、野生型と変異型のPRに従うことによって、変性のために、この問題を回避しています。我々は運動することで、個々のPRの運命を追跡することができました別のFATP変異ハエ( 図6)で分析する。同じクローンが原因周囲の野生型クローンの正確な形状で、異なる時間に与えられた動物において認識することができる。我々は明確な示すことができた不足しているすべてのPRはPRを内FATP変異体の役割は細胞自律的であることを示す、FATPを突然変異体であったことをLY。したがって、速度論的解析におけるPRの損失を監視することによって、それが成人発症変性のモデルでのPRの遺伝子型を決定することが可能である。最後に、トマト/ GFP-FLP / FRT法は、PCP 20の設立を規制する因子の同定のための非常に強力なことが証明された。のセクションを必要とせずに、極性表現型のモザイク個眼多数の得点の可能性は、PCPの確立のためのPRの要求の急速な決定を容易にする。それにもかかわらず、PRの整合性の細かい分析は、位相差電子顕微鏡法に続いて、伝統的な切片が必要となる。
結論として、トマト/ GFP-FLP / FRT法は、VISなどのPR発生過程および成体の広報機能の調節因子を同定するための効率的なモザイクのスクリーニングのための新しい可能性を開きますUAL応答および生存性。
The authors have nothing to disclose.
UMS3444バイオサイエンスのPLATIMとDroso – ツールの施設、リヨン、フランス。 BMの研究は財団からの補助金によって支えられてはCNRS(ATIP)からLAルシェルシュMédicaleを注ぎ、ANR-12-BSV1-0019から01。 PDは網膜フランス協会とリヨン高等師範学校(フランス)によってサポートされていました。 CLはラ·リーグ国立コントルル癌学会によってサポートされていました。
Reagent | |||
Agarose | Euromedex | D5-E | Regular agarose is used to immobilize the flies |
Petri dish | BD Falcon | 353001 | 35 x 10 mm, 1.37 x 0.39 inch |
Cold-ice water | To maintain the flies anesthetized | ||
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Equipment | |||
Dissecting microscope | Dutcher | SMZ645 | |
Water Bath | Julabo | 9550102 | To keep the agarose solution at warm temperature |
40X Water objective | Zeiss | 420967-9900-000 | Water dipping objective for the confocal microscope |