Determinação da contagem de células de mamíferos, tamanho de célula e Saúde célula usando o Moxi Z Mini contador de células automatizado

1. Preparação de Amostras Dilui-se a suspensão de células com ORFLO diluente ou um diluente apropriado, de modo que a concentração de células está dentro da gama de funcionamento do instrumento (3.000 a 500.000 células / mL para Tipo cassete M, ou 3.000 a 2.500.000 células / mL para cassete Tipo S). Uma diluição de 1:5 a 1:20 (Tipo cassete M) ou não de diluição a 1:5 de diluição (cassete de Tipo S) é recomendado para linhas de células de mamífero mais, mas uma diluição adequada dependerá do tipo de célula ea densidade de semeadura. O volume necessário para uma contagem exacta é de cerca de 75 uL. 2. Amostras em execução Vire a Z Moxi pressionando o botão de energia ea tela inicial será exibida. Pressione a bandeja para baixo e insira uma cassete no Z. Moxi O Pipetar 75μL de amostra … tela será exibida. Pipetar uma amostra de 75 uL na porta de preenchimento do cassete (oval azulidentificada como 1 ou 2, dependendo de qual final da cassete foi inserido no instrumento). Estes são cassetes descartáveis, que podem ser utilizados para 2 testes. Nota: Coloque a ponta da pipeta directamente para o carregamento bem a ~ 45 ° de ângulo de modo que a ponta é capturado sob o lábio frontal do poço. Quando dispensar, é importante que o vácuo não "chegar à frente» da distribuição do fluido, como poderia causar bolsas de ar para introduzir a cassete. Recomenda-se a ter um grânulo pequeno (o tamanho de entrada poço) de forma fluida sobre o poço durante a distribuição. Para a contagem de células de mamíferos mais, toque na tela em qualquer lugar para começar. Para contagem de partículas muito pequenas (4 a 8 mM diâmetro médio de Tipo M e 3-8 mM diâmetro médio para o Tipo S), o Z Moxi pode ser executado no modo de partícula pequena. Nota: o tipo cassete é indicado na barra preta na parte superior da tela. Neste modo, Moxi Z define a escala de diâmetro de 2 a 10 uM como o padrão e executa a contagem de ucantar parâmetros otimizados para a detecção de pequenas células. Pressione o botão Modo TOQUE AQUI Pequenas partículas (quadrado preto) para iniciar o teste e executar neste modo. O Z Moxi começará o teste e os resultados da contagem de células estará completa em aproximadamente 8 segundos (cassete de tipo M) ou 15 segundos (cassete de Tipo S). O ajuste de curvas e cálculos MVI começar automaticamente e requerem apenas alguns segundos adicionais. Quando um ajuste adequado é encontrado, os resultados será então automaticamente no ecrã. Para fazer Gating o modo de aquisição padrão, pressione o botão Curve Fit Conde para alternar para o modo de aquisição electrónica. Neste ponto, a cassete pode ser removido da unidade. 3. Gerenciando dados Se a escala AutoMode está desligado, os resultados são exibidos inicialmente para uma contagem de curva em uma escala de 2-34 mM diâmetro (tipo cassete M) ou 2-26 μm (cassete Tipo S). Se a escala Automode está ligado, em seguida, o Z Moxi automaticamente dimensionar o eixo horizontal (eixo x) para o intervalo que é mais próxima da largura da população curva de ajuste assegurando ao mesmo tempo de todos os dados da curva de ajuste é exibido. Se a escala AutoMode está desligado, para exibir manualmente os resultados em uma resolução maior, toque no ícone mM 2-26 (Tipo M) ou o ícone mM 2-18 (tipo S). Nota: O tipo cassete é indicado na caixa de azul na parte superior esquerda da tela. Isto é recomendado quando a contagem de células menores ou partículas de melhorar as capacidades de ajuste de curvas, bem como a capacidade do usuário para discriminar visualmente nuances dos dados. Ao aumentar a resolução horizontal, o botão de escala vai ajustar dinamicamente para permitir a bicicleta entre as faixas disponíveis para o eixo x escala: 2-34, 2-26, 2-18 e 2-10 M para a cassete Tipo M, ou 2 -26, 2-18, e 2-10 mm para a cassete de Tipo S. Esta funcionalidade só está dispoble imediatamente após uma contagem de células. Contar as informações (células / ml) para a curva de ajuste de uma região ou gated é exibida numa caixa preta sob o lado esquerdo do histograma. Informações de tamanho significa célula é exibida na caixa preta sob o lado direito do histograma. O valor MVI é exibida uma caixa azul na parte superior direita do histograma. Se o teste foi executado em modo de partícula pequena, o MVI não se aplica e será exibido como "MVI = SPM". Além disso, se a concentração de células está fora da gama de funcionamento MVI, uma mensagem de "MVI = fora do intervalo" será exibida. Para salvar o histograma atual, toque no ícone Feito. Isto salva os dados com o nome de "Test XXX" onde XXX é o número de teste correspondente. Para manualmente a porta do histograma, toque para alternar o Curve Fit contagem botão resultados. Isso faz com que Gating o modo de aquisição padrão. Em seguida, deslize cada marcador gating azul para definir as portas ou toque ªsetas de e esquerda e direita (estes aparecem ao tocar o marcador gating azul) para ajustes finos portão Somente as células entre os marcadores são contados. A escala de histograma vertical é ajustada automaticamente com base na amplitude população ajuste de curva. Para ajustar essa escala vertical, passe a tela para cima ou para baixo na região do histograma. Toque no botão Gated Conde resultados para voltar a exibição para o modo de ajuste de curva e fazer modo de ajuste de curva padrão o modo de aquisição. Em seguida, pressione o ícone Feito para salvar os resultados e voltar à tela inicial. Para excluir os resultados, pressione o ícone Excluir a qualquer momento para excluir permanentemente os resultados do teste. 4. Análise dos dados adquiridos previamente Para abrir um teste salvo, pressione o ícone Histograma na tela inicial. Ícones para até nove histogramas salvos será exibida na tela.Pressione o ícone apropriado para o teste de interesse ou pressione o Page Up ou Page Down ícones para ver mais resultados do teste. Cada histograma será aberto tanto no modo de contagem Curve Fit ou modo Contagem Gated, dependendo de como ele foi salvo. No modo de contagem Gated, marcadores gating pode ser posicionada conforme desejado, deslizando cada marcador gating azul de forma independente. Portão automático por tocar no pico desejado. Toque para alternar entre o Conde Gated e modos de Contagem Curve Fit. Pressione os ícones de zoom e desfazer o zoom para ajustar a escala vertical do histograma. A escala vertical também pode ser alterado pelo verticalmente, passando o dedo sobre a tela para cima (para aumentar) ou para baixo (para diminuir). Pressione o ícone Excluir para excluir permanentemente os resultados do teste. Pressione o ícone Feito parafechar os resultados do teste e retornar à tela inicial. (Nota: visão ampliada não será salvo.) 5. Transferindo Dados para um PC Os dados podem ser transferidos para um PC usando o aplicativo Moxichart Orflo ou através de transferência USB, ligando o Moxi Z cabo USB a um PC ou Mac. Para transferência Bluetooth (MoxiChart), primeiro determinar o ID da unidade Bluetooth pressionando o ícone Bluetooth na tela inicial da unidade Z Moxi. No computador, abra o aplicativo MoxiChart e clique no ícone Bluetooth no canto superior direito. Em seguida, escolha o dispositivo que corresponde à identificação de Bluetooth do Z Moxi e selecione uma pasta de destino para os arquivos enviados. Moxichart irá transferir automaticamente todos os arquivos para o diretório especificado por meio da conexão Bluetooth. Arquivos transferidos por Bluetooth (MoxiChart) ou USB pode ser aberto e análisezed diretamente com o aplicativo ou MoxiChart, porque elas são formatadas. csv, que pode ser diretamente aberto no Microsoft Excel ou outros programas de análise de dados para análise adicionalmente / custom. 6. Os resultados representativos Para avaliar a precisão e exactidão do Z Moxi, as contagens de células HEK-293, células HeLa, CHO-K1, leveduras, Jurkat E6-1 células, as células PC12, e precisão-calibrada suspensões grânulo com concentrações que variam de 0-500,000 células / mL (Tipo cassete M) e 0-2-2.5e 6 células / ml (cassete de Tipo S) foram contadas e comparadas usando um Coulter Z2 e Z. Moxi Todas as células de mamíferos foram obtidos a partir da American Type Culture Collection (ATCC) e cultivadas como descrito anteriormente 7-11. Resumidamente, as células foram cultivadas em suspensão em 75 mm 2 frascos de cultura de tecidos com meios essenciais de RPMI 1640 (Jurkat E6-1, PC12), (HEK-293, HeLa) MEM células, ou F12K (CHO-K1) células. Todos os meios foram suplementados com10% de soro fetal de bovino e 100 U Estreptomicina ug penicillin/100. Os frascos foram mantidos em estufa a 37 ° C com 5% de CO 2. As células foram passadas a cada 3 dias. Células de levedura (X5, C. albicans, Vin 13) foram doadas e utilizadas imediatamente, tal como previsto. As concentrações amostra inicial de ~ de 500.000 células / mL para o tipo de dados M cassete e ~ 2-2.5e 6 células / ml para a cassete de Tipo S foram estabelecidos utilizando o Z2 Coulter. Subsequentes níveis de concentração teóricos foram preparados através de diluições em série, com tampões fisiológicos (Isoton II ou Solução Salina Equilibrada de Hank). Para cada concentração, amostras idênticas foram medidos por ambos os sistemas e traçada contra o outro. Como visto na Figura 2, houve uma forte correlação linear (Tipo M r 2> 0,9886, Tipo S r 2> 0,9781) entre as contagens para todas as amostras. As concentrações foram também comparadas com as concentrações esperadas / teórico de células com ambos o Z Moxi eo Z2 ( <strong> Figura 3) e, novamente, demonstrou forte correlação linear (Tipo M r 2> 0,9758, Type S r 2> 0,9774). Para avaliar a precisão, HEK-293 e as contagens de células HeLa foram realizadas utilizando o Z2 Coulter, Moxi Z, e um hemocitómetro. O coeficiente médio de variação (CV, n = 19) das contagens de células utilizando o Z Moxi (Tipo cassete M), Coulter Z2 e um hemocitómetro foram calculados com CV é medido a partir de 5 contagens separadas nos 200.000-300.000 células / intervalo ml. O pequeno média CV (Figura 4) do Z Moxi é comparável à do Z2 e é representativo do nível elevado de precisão apenas atingível com Coulter tecnologias baseadas contagem. Dimensionamento de precisão do instrumento foi avaliada Z Moxi próximo através da medição de precisão adquiridos, esferas de poliestireno calibrados. Medições de partículas de tamanho médios (n = 5) de Moxi Z foram plotadas contra os tamanhos fabricante relatados. Como pode ser visto in Figura 5, as medições Moxi Z emparelhado consistentemente os valores fabricante, com uma alta correlação linear (r 2 = 0,9989). Além do tamanho e informações de contagem, Moxi Z fornece um reagente sem avaliação geral de saúde de mamíferos em cultura celular com um índice relatado Viabilidade Moxi (MVI) valor. Este índice é gerada a partir de uma relação entre o número de células na população de interesse em relação às contagens de partículas totais. Para demonstrar as capacidades de medição MVI, leituras MVI (tipo cassete M) foram comparados com manual padrão e citometria de fluxo técnicas ao vivo / morto de medição. As populações de morto (<10% viável) HEK-293 e as células HeLa foram criados através de incubações durante a noite das células vivas em um fluoreto de sódio em nutrientes livre, contendo diluente (Isoton II, Beckman Coulter) a 37 ° C. Controlados os níveis de viabilidade teóricas foram preparadas por mistura ratiometrically concentrações conhecidas de células vivas e mortas. Ressoluções ulting foram analisadas para os níveis de viabilidade em duplicado com contagens de ambos os hemocitômetro e medições citómetro de fluxo. Medições foram feitas utilizando hemocitómetro uma mistura 50/50 tradicional de 0,1% solução de azul de tripano e as células. Medições de citometria de fluxo foram feitas usando um citómetro de goiaba PCA (Merck), utilizando o reagente Viacount eo fabricante-especificado protocolo (Merck). Como mostrado na Figura 6, os valores de correlação de Pearson coeficiente (r 2) "do ajustamento linear dos dados MVI a percentagens hemocitômetro análogos de viabilidade de células HEK" e células HeLa foram r 2 = 0,9937 e R2 = 0,9728, respectivamente. Estes resultados demonstram que esta abordagem proporciona informação sobre a saúde cultura através de uma ampla gama de viabilidade de células que se comparam favoravelmente com as medições vivos / mortos obtidos utilizando um citómetro de fluxo ou hemocitómetro. Tabelas e Figuras (De Dittami et al, 2011.) 15: <p class= "Jove_content"> Figura 1. De película fina de contagem Coulter: A corrente eléctrica é passada através da zona da célula de detecção da cassete de película fina. Como células de fluxo único ficheiro através da CSZ, os aumentos na tensão momentâneas são medidos pelo Z. Moxi Figura 2. Contagens Moxi Z são comparáveis ​​a Coulter Z2 contagens. Contagens idênticas de suspensões de células e talão foram contadas utilizando tanto um Z2 Coulter ea Z. Moxi Média de valores de contagem (n = 3-4) das contagens de Moxi Z foram traçados em relação à Coulter correspondentes Z2 contagens e valores de R 2 do ajuste linear foram determinados. A) Tipo cassete M – intervalo de concentração de 0 – 500.000 células / ml. B) cassete Tipo S – faixa de concentração de 0 – 2-2.5e 6 / Bares ml.Error indicam ± 1 desvio padrão. <p class="jove_content"> Figura 3. Medições de concentração vs Moxi Z concentrações celulares teóricos. A) Tipo cassete M – valores concentração teórica foram preparados a partir de diluições em série de um período inicial de 500.000 células / ml de amostra B) Tipo S cassete -. Valores concentração teórica foram preparados a partir de diluições em série de uma 2 – inicial 2.5e 6 células / ml de amostra. Barras de erro indicam ± desvio padrão 1. Figura 4. Coeficiente de variação para o Z2 Coulter, Z Moxi (Tipo cassete M), e hemocitómetro. O coeficiente médio de variação (CV, n = 19) de HEK-293 e as contagens de células HeLa para cada abordagem foram calculados com CV medidos a partir de 5 separado contagens de HEK-293 e células HeLa no 200.000 – 300.000 células / ml alcance. Barras de erro indicam ± desvio padrão 1. <p class = "jove_content"> Figura 5. Precisão das medições de tamanho de partículas usando Moxi Z-Moxi Z mediram o tamanho do grânulo (cassetes M) vs fabricante informou tamanho das partículas. Barras de erro indicam ± desvio padrão 1. Figura 6. Avaliação da Cultura Saúde usando MVI – Comparação entre medidas de MVI (cassetes M) e PCA Goiaba viabilidade Viacount contra visuais, azul-tripan contagens de viabilidade coradas utilizando um hemocitômetro.