사용자 정의, 실시간 공촛점 스캐닝 이미징 시스템의 전체 구조는 설명합니다. 쉽게 동영상 속도 현미경 및 microendoscopy 사용할 수있는이 시스템은, 비용의 일부로 표준 상용 공촛점 시스템을 사용하여 액세스할 수 없습니다 이미징 형상 및 응용 프로그램의 배열을 허용합니다.
공촛점 현미경은 빠르게, 높은 감도, 복잡한 시스템의 고해상도 광학 sectioning을 지원, 생물학과 생물 의학 과학에서 귀중한 도구가되고있다. 공촛점 현미경은 정기적으로 세포 2-4 생활에서 특정 세포 목표 1, 모니터 역학을 공부하고, 전체 생물 5,6의 입체 진화를 시각화하는, 예를 들어, 사용됩니다. 같은 공촛점 microendoscopes 같은 공촛점 이미징 시스템의 확장은 생체내 7 고해상도 이미징을 허용하고 현재 임상 설정 8,9에서 질병 이미징 및 진단에 적용되고있다.
공촛점 현미경은 간단한 기하학적 광학를 사용하여 소위 "광학 섹션"을 만들어 입체적인 해상도를 제공합니다. 표준 넓은 필드 현미경에서는 시료에서 발생하는 형광는 객관적인 렌즈에 의해 수집되고 검출기에 직접 전달. 수락 동안영상 얇은 샘플 수, 두꺼운 샘플은 객관적 초점 비행기 위 아래에 생성된 형광에 의해 흐려된다. 대조적으로, 공촛점 현미경은 거부하고, 샘플을 가상, 광학 sectioning 수 밖 초점 샘플 고해상도 입체 표현을 빌드하는 빛을.
공촛점 현미경은 검출 빔 경로에 공촛점 조리개를 사용하여이 위업을 달성. 목적으로 샘플의 수집 형광은 스캐닝 미러 통해 기본 이색성 거울, 조심스럽게 이상 스톡스 – 이동 형광 방출을 통과하는 동안에는 레이저 여기 빔과 같은 짧은 파장을 반영하기 위해 선택한 거울을 통해 다시 릴레이입니다. 이 긴 파장 형광 신호는 다음 목적 렌즈의 초점 비행기와 정확하게 활용 비행기에 위치하는 핀홀의 양쪽에 렌즈 한 켤레에 전달됩니다. 객체의 초점 볼륨에서 수집 광자는 collimated 아르객관적인 렌즈로하며 핀홀을 통해 공촛점 렌즈에 의해 초점이 있습니다. 초점 평면 위나 아래에 생성된 형광 따라서 제대로 collimated되지 않습니다, 그리고 현미경 초점에서 단 표시등이 표시되는 광학 섹션을 만들고, 공촛점 핀홀 하나 통과되지 않습니다. (그림 1). 따라서 핀홀 효과적으로 한 제한된 공간 위치 감지 방출 confining, 초점 비행기에서 가상 조리개 역할을합니다.
현대 상업 공촛점 현미경은 비교적 간단하고 접근 이전에 복잡한 이미징 절차를 만드는 사용자에게 완전 자동화된 작업을 제공합니다. 이러한 시스템의 유연성과 전력에도 불구하고, 상업 공촛점 현미경 잘 같은 생체내 이미징 애플 리케이션에서 많은 같은 모든 공촛점 이미징 작업에 적합하지 않습니다. 그들의 요구를 충족하기 위해 맞춤형 이미징 시스템을 만들 수있는 능력이 없다면, 중요한 실험 reac 밖으로 남아있을 수많은 과학자에 H.
이 문서에서는, 우리는 기본 구성 요소에서 사용자 지정, 비디오 속도 공촛점 이미징 시스템의 전체 구조에 대한 단계별 방법을 제공합니다. 직립 현미경은 표준 속도 공진 갈바 노 미러 느린 축 스캔되지만, 빠른 스캔 축을 제공하기 위해 공진 갈바 노 미러를 사용하여 구축됩니다. 목적 렌즈 초점이 정확한 스캔 빔을 만들려면 다음과 거울 네 개의 릴레이 렌즈를 사용하여 소위 telecentric 비행기에 위치합니다. 공촛점 감지는 표준 재고품 photomultiplier 튜브 (PMT)를 사용하여 달성되며, 이미지 캡처와에서 Matrox의 framegrabber 카드 및 포함된 소프트웨어를 사용하여 표시됩니다.
이 비디오 속도 이미징 시스템은 약 8 kHz에서에서 공진 갈바 노 미러 작동을 사용합니다. 최대 전력으로 실행하면 공진 거울은 아주 크게 될 수 있으며, 높은 피치는 충분한 노출 시간 귀찮은 심지어 위험할 수 있습니다. 여기 증명하지지만, 그것은 상당히 시스템 볼륨 및 / 또는 귀마개 적절한 청력 보호 장비를 착용을 줄이기 위해 투명 케이스 내부의 공진 갈바 노 미러를 방어막을 권장합니다.
공진 갈바 노 미러는 sinusoidal 패턴에서 검색합니다. 그러나, framegrabber 카드 신호가 수평 및 수직 방향 모두에서 완전히 선형 스위프 속도를 가정에 참조하십시오. sinusoidal 청소는 검사의 가장자리에 속도가 느려집니다 때문에, 이미지 압축 아티팩트가 빠른 (가로) 이미지 축을 따라 볼 수 있습니다. 이 문제를 최소화하기 위해 한 가지 방법은 의도적으로 공진 갈보 미러 스캔 범위를 드라이브보다 훨씬 큰릴레이 렌즈 직경. 이렇게에서 sinusoidal 스캔 패턴은 거의 선형 스위프 중앙 이미지 왜곡을 최소화, 샘플을 트래버스합니다. 또 다른 방법은 빠른 축을 linearize에 게시 프로세스 이미지 수집하는 것입니다. 이것은 이미지로 알려진 형광 패턴 (예 : 격자 등) 완성하고 수집된 이미지를 unwarps 처리 스크립트를 만들 수있는 알려진 패턴 크기를 사용하실 수 있습니다.
이 특정 스캔 시스템은 종종 수직 지향 비디오 속도 현미경을 필요로 생체내 이미징에의 목적을 위해 설계되었습니다. 세포 이미징 실험을 위해, 거꾸로 현미경 더 일반적으로 사용됩니다. 여기에 제시 디자인은 쉽게 그러한 거꾸로 현미경을 구축하기 위해 변경할 수 있으며 필요하다는 것을 모두가 마지막 2 "직경 미러의 회전이다. 대신 아래 스캔 광선을 직접하기 위해 거울을 orienting의 거울 위쪽으로 광선을 직접하실 수 있습니다. 목적 렌즈 배치t 샘플 무대와 함께 미러에서 동일한 거리는 반전 도형에 이미지를 허용합니다. 이미징 시스템 microendoscopic 이미징에 대해 전적으로 건설하는 경우, 전혀 수직 현미경의 디자인을 "접는"이유가 없습니다. 대신, 전체 검사 시스템은 광학 테이블에 객관적인 렌즈 지향 병렬로 단일 수평 브레드 보드에 만들 수 있습니다.
이것은 대부분의 상용 공촛점 현미경에서 찾을 수로보다 다양한 시스템을 desiring 사용자가 변수 핀홀를 통합하는 것이 좋습니다, 그 위대한 빌드 단순과 정렬의 편의를 위해 제공하고 있지만,이 빌드의 현미경은 고정 핀홀 구성을 사용합니다. 사용자가 방출 강도 변화의 샘플을 보완할 수있는 핀홀의 크기를 조정할 수 있도록함으로써, 이것은 사용자가 더 주어진 샘플에 대한 신호 강도와 해결 사이의 거래와를 최적화 할 수 있습니다.
채널현미경에 대해 선택한 이미지 섬유 oice은 중요하다. 우리가 그들의 가까운 섬유 코어 간격과 낮은 상대 autofluorescence로 인해 스미토모 일관된 이미지 섬유를 사용하는 것이 좋습니다. Fujikura 제조한 이미지 섬유 샘플에서 약한 형광 신호를 압도하고 microendoscope의 궁극적인 감도를 제한할 수 있습니다 autofluorescence 10 높은 금액을 가지고 발견되었습니다. 이와 특별한 설정에 사용되는 8 – 30N으로 스미토모 제조 섬유, 자신의 Fujikura 등가물보다 훨씬 낮은 수준 autofluorescence 있습니다. leeched 섬유 번들이 microendoscopy에 대한 매력적인 것으로 간주 수도 있지만, 그들의 디자인은 일반적으로 섬유 코어 띄엄띄엄 샘플 개체, 잠재적인 이익의 상당 지역을 떠나는 것을 의미합니다 너무 멀리 떨어져 각각의 광섬유 코어를 배치합니다.
마지막으로, 그것은 현미경 여기서 설명하는 동안 체외 및 생체내 applicati의 다양한 유용하게 사용될 수 있다고 지적한다기능하며 완벽한 기능을 갖춘 상용 시스템의 비용의 일부에 대해 만들 수 있습니다, 그것은 전송 빛 감지, 볼 접안 렌즈, 또는 비 공촛점 widefield epifluorescence에 대한 빔 경로 같은 기능을 가지고 있지 않습니다. 그것이 처음부터 이러한 기능을 가진 시스템을 구축 할 수 있지만, 그러한 시스템을 desiring 독자들의 요구를 충족보다는 완전히 새로운 빌드 시작하는 기존의 상용 시스템을 수정하실 수 있습니다.
The authors have nothing to disclose.
저자는이 프로젝트의 지원 ThorLabs 감사하고 싶습니다. AJN은 NSF 대학원 원정대의 지원을 인정하고자합니다.
이 작품은 부분적으로 NIH 원장의 새로운 혁신 보너스 프로그램을 통해 국립 보건원, OD007096 – 01 DP2 부여 번호 1 후원했다. 새로운 혁신 보너스 프로그램에 대한 정보는에 있습니다 http://nihroadmap.nih.gov/newinnovator/ . 저자는 하버드 전자 연구실 사용에 대한 톰 헤이스 감사하고 싶습니다.
Part Name | Manufacturer | Item Number | Specifications | Quantity |
515 nm Band Pass Filter | Chroma | HQ515/50M | 46 FWHM | 1 |
Achromatic Doublet Lens 25.4mm Dia. x 50mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT49-766 | 1 | |
Achromatic Doublet Lens 25.4mm Dia. x 76.2mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT49-768 | 1 | |
Achromatic Doublet Lens 25.4mm Dia. x 88.9mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT49-769 | 2 | |
Achromatic Doublet Lens 50mm Dia. x 300mm FL, MgF2 Coating | Edmund Optics | NT45-179 | 1 | |
8 kHz R High Frequency Optical Scanner | Electro-Optical Products Corporation (EOPC) | SC-30 | 8 kHz | 1 |
AGC Driver | Electro-Optical Products Corporation (EOPC) | ACG:8K | ||
H7422-PA Photosensor Module | Hamamatsu | H7422-PA | Current limiting recommended | 1 |
M9012 Power Supply | Hamamatsu | M9012 | For use with H7422-PA | 1 |
HC PL APO CS Objective | Leica | 11506284 | 10x/0.40 | 1 |
Solios eA/XA Framegrabber Card | Matrox | Solios eA/XA | MIL software required; OEM interconnects recommended | 1 |
12V Power Supply | Meanwell | LPV-100-12 | +12V, 8.5A | 1 |
5x Microscope Objective Lens | Newport | M-5X | 0.10 NA, 25.4 mm Focal Length | 1 |
Coherent Image Fiber | Sumitomo | 8-30N | 1 | |
1/4″-20 Cap Screw and Hardware Kit | ThorLabs | HW-KIT2 | 1 | |
100 μm Mounted Pinhole | ThorLabs | P100S | Ideal for building spatial filters | 1 |
30 mm Cage Cube Clamp | ThorLabs | B6C | 1 | |
30 mm Cage System Cube, 4-Way | ThorLabs | C4W | 1 | |
406 nm, 5 mW, B Pin Code, SM Fiber Pigtailed Laser Diode, FC/PC | ThorLabs | LPS-406-FC | Product obsolete; replaced by LP405-SF10 | 1 |
5-Minute Epoxy, 1 Ounce | ThorLabs | G14250 | 1 | |
6 Axis Kinematic Optic Mount | ThorLabs | K6X | 1 | |
8-32 Cap Screw and Hardware Kit | ThorLabs | HW-KIT1 | 1 | |
8-32 Setscrew and Hardware Kit | ThorLabs | HW-KIT3 | 1 | |
Adapter with External RMS Threads and Internal SM1 Threads | ThorLabs | SM1A4 | 1 | |
Adj. FC/PC and FC/APC Collimator, f = 2.0 mm, ARC: 400-600 nm | ThorLabs | CFC-2X-A | f = 2.0 mm | 1 |
Adjustable Fiber Collimator Adapter, SM1 Threaded | ThorLabs | AD9.5F | 1 | |
Aluminum Breadboard, 12″ x 18″ x 1/2″ | ThorLabs | MB1218 | 1/4″-20 Threaded | 2 |
Benchtop Laser Diode/TEC Controller | ThorLabs | ITC4001 | 1 A/96 W | 1 |
DMLP 425 nm Long-Pass Dichroic Mirror | ThorLabs | DMLP425 | 1 | |
Kinematic Mount for Ø1″ Optics | ThorLabs | KM100 | 3 | |
LD/TEC Mount for ThorLabs Fiber-Pigtailed Laser Diodes | ThorLabs | LM9LP | 1 | |
Lens Mount for Ø18 mm Optics | ThorLabs | LMR18 | One retaining ring included | 1 |
Lens Mounts for 2″ Optics | ThorLabs | LMR2S | With internal and external threading; retainer ring included | 2 |
Mini Series Cage Assembly Rod, 6″ Long, Ø4 mm, Qty. 1 | ThorLabs | SR6 | 4 | |
Ø1.0″ Pedestal Pillar Post, 8-32 Taps, 1″ Long | ThorLabs | RS1P8E | 4 | |
Ø1″ Pillar Post Extension, Length=0.5 | ThorLabs | RS05 | 4 | |
Ø1″ Pillar Post Extension, Length=0.75″ | ThorLabs | RS075 | 4 | |
Ø1″ Protected Silver Mirror, 3.2 mm Thick | ThorLabs | ME1-P01 | 1 | |
Ø1″ SM1 Rotating Adjustable Focusing Element, L = 1″ | ThorLabs | SM1V10 | 1 | |
Ø2″ Protected Silver Mirror, 3.2 mm Thick | ThorLabs | ME2-P01 | 2 | |
P100S – Ø100 μm Mounted Pinhole | ThorLabs | P100S | 1 | |
Polaris Low Drift Ø1″ Kinematic Mirror Mount | ThorLabs | POLARIS-K1 | Low drift | 1 |
SM1 Lens Tube, L = 1″ | ThorLabs | SM1L-10 | One retaining ring included | 4 |
SM1 Threaded 30 mm Cage Plate, 0.35″ Thick | ThorLabs | CP02 | 2 | |
SM1 to M25 Optical Component Threading Adaptor | ThorLabs | SM1A24 | External SM1 Threads and Internal M25.5×0.5 Threads | 1 |
Small Beam Diameter Galvo System | ThorLabs | GVSM001 | 1 | |
Small Clamping Fork | ThorLabs | CF125 | 1/25″ counterbored slot, universal | 15 |
Spatial Filter System | ThorLabs | KT310 | Pinhole sold separately | 1 |
TE-Cooled Mount for 5.6 & 9 mm Lasers | ThorLabs | TCLDM9 | 1 | |
Vertical Bracket for Breadboards | ThorLabs | VB01 | Each | 2 |
Plan-Apochromat | Zeiss | 1101-957 | 20x/0.75 NA | 1 |