Bu makale kriyo-elektron mikroskobu ile helisel monte moleküllerin üç boyutlu (3D) yapısı elde etmek için bir yöntem açıklanır. Bu protokol, HIV-1 kapsid meclisleri iteratif sarmal gerçek uzay rekonstrüksiyon yöntemi ile bir yoğunluk haritası ulaşmak için ayrıntılı 3 boyutlu rekonstrüksiyon prosedürü göstermek için kullanın.
Görüntü işleme ile birlikte Cryo-elektron mikroskobu (cryo-EM), makromoleküler protein kompleksleri ve meclislerinin yapısı tayini için giderek daha güçlü bir araç. Aslında, tek parçacık elektron mikroskobu (2D) iki boyutlu elektron kristalografisi 2 nispeten rutin metodolojileri ve çok sayıda yapılar haline gelmiştir 1 ve bu yöntemler kullanılarak çözüldü. Aynı zamanda, görüntü işleme ve helis nesneleri üç boyutlu (3B) rekonstrüksiyonu, özellikle sarmal sarmal simetri ile birlikte tek parçacık analiz araçları kullanır gerçek-uzay rekonstrüksiyon (IHRSR) yöntemiyle 3, iteratif hızla gelişmiştir. Sarmal bir varlık 3D yoğunluk haritası, tek bir projeksiyon elde edilebilir, çünkü pek çok biyolojik varlıklar, ipliksi ya da sarmal formları da dahil olmak üzere aktin filamentler 4, mikrotüplerin 5, amiloid lifleri 6, tütün mozaik virüsü 7, ve bakteri kamçısı 8, ve fonksiyon IHRSR yöntemi ile sarmal olmayan bir nesnenin 3D yeniden inşası için gerekli olan çok sayıda resim, esnek ve düzensiz sarmal meclislerinin yapısal analizi ile karşılaştırıldığında görüntü, şimdi ulaşılabilir.
Bu video makalede, cryo-EM cryo-EM numune hazırlama, düşük doz veri toplama protokoller de dahil olmak üzere bir sarmal protein montaj 3D yoğunluk haritası (HIV-1 kapsid 9 bizim örneğimizde), indeksleme elde etmek için detaylı protokolleri sarmal kırınım desenleri ve IHRSR kullanarak görüntü işleme ve 3 boyutlu rekonstrüksiyon. Diğer tekniklerle karşılaştırıldığında, cryo-EM yakın doğal koşullar altında en iyi örnek koruma sunar. Örnekleri vitreus buz ince bir tabaka halinde hızlı dondurma, gömülü ve radyasyon hasarı en aza indirmek için düşük doz koşulları altında, sıvı azot sıcaklığında elektron mikroskopları imaged. Örnek görüntüler, düşük sinyal ve düşük kontrast kaydedilen mikrograflar pahasına yakın yerli koşullar altında elde edilir. Neyse ki, helisel yeniden yapılanma sürecini büyük ölçüde sarmal kırınım endeksleme dışında, otomatik olmuştur. Burada bir yaklaşım anasayfası sarmal yapısını tanımlamak ve sayısallaştırılmış mikrograflar, 3D helisel yeniden inşası için önemli bir adım sarmal simetriler (helisel parametreleri) belirlemek. Kısaca, biz IHRSR yöntemi uygulayarak ilk 3D yoğunluk haritası edinin. Bu ilk harita sonra iteratif böylece özgürlük derece kontrol, her segment hizasını parametreleri için kısıtlamalar getirerek rafine edilir. Elektron mikroskobu (genlik ve faz düzeltme) kontrast transfer fonksiyonu (CTF) düzelterek ve montaj sarmal simetri optimize ederek daha da iyileştirilmesi sağlanır.
Biz sarmal nesnelerin 3D yapılar elde etmek için basit bir yaklaşım sağlamak için bir dizi protokoller mevcut. Açıklanan prosedürleri kullanarak, tek bir tüp görüntü (176 parça), HIV-1 kapsid montaj 3 boyutlu bir yapı elde etti. Yüksek çözünürlüklü yapıları, daha fazla görüntü verilerinin de dahil elde edilebilir.
En uygun veri toplama ve analiz için pek çok kritik nokta vardır: Birincisi cryo-EM örneğinin hazırlanması sırasında, örnek çözümü örneklem büyüklüğü biraz daha kalın bir çözüm üniforma, ince bir tabaka bırakarak uzakta, lekelenen olmalıdır. Örnek blot için birkaç farklı yolu vardır. Bakteri hücreleri ve HIV-1 CA montaj gibi borulu örnekler, özellikle arka-yan, bir tarafı blot için çok uygundur.
İkincisi, sarmalın ellilik bu sarmal indeksleme ya da yeniden yapılamaz olarak tespit edilmesi gerekiyor. Döner ellilik belirlemek için 18 gölgeleme takip dondurma yakma, ortak bir uygulama kullanmak için. Ellilik, yoğunluk haritası çözünürlük yeterince yüksek olduğunda da yeniden yapılandırma sonrası tespit edilebilir, doğru bir ellilik varsayılır bileşenleri tek tek 3 boyutlu atom modelleri de yoğunluk haritasına uygun olmalıdır. Aksi takdirde, bunun tam tersi ellilik kabul edilmelidir.
Üçüncü olarak, Wiener filtresi, gürültüyü amplifikasyon azaltmak için, her iki faz ve genlik düzeltme için görüntü işleme sırasında kullanılan olmalıdır. Tek bir görüntü CTF her zaman sıfır geçişleri bu yana, karşılıklı alan bilgilerin bir kısmını kaybetmiş. Bu nedenle, farklı odak dışı değerleri 3D rekonstrüksiyon, her görüntülü dahil birden fazla projeksiyon veri setleri için gereklidir.
The authors have nothing to disclose.
Yazarlar, teknik destek için Dr. Gongpu Zhao ve Danxia Ke teşekkür etmek istiyorum. Biz Dr teşekkür ederim. Edward ve görüntü işleme yazılımları paylaşmak için Egelman ve Niko Grigorieff. Ayrıca, Yapısal cryo-EM tesis Biyoloji ve University of Pittsburgh Tıp Okulu Beowulf ve ızgara destek personeli kabul etmiş sayılırsınız. Bu çalışma GM082251 ve GM085043 tarafından desteklenmiştir.
Name | Source | Comments |
Glow-discharge device 100X | Glow-discharge device 100X | |
Tecnai Polara F30 microscope with a Field Emission Gun | FEI, Hillsboro, OR | |
Gatan 4K x 4K CCD camera | Gatan, Pleasanton, CA | |
Plunge-freezing device | Home-made manual gravity plunger | |
Quantifoil R2/1 200 mesh holely-carbon copper grids | Quantifoil Micro Tools, Jena, Germany | |
EM software EMAN | http://blake.bcm.edu/EMAN/ | |
EM software IHRSR | http://people.virginia.edu/~ehe2n/ | Programs available from Edward H. Egelman |
EM software Spider | http://www.wadsworth.org/spider_doc/spider/docs/spider.html | |
MRC based helical processing software | http://www.riken.jp/biostrmech/index.html | Programs available from Koji Yonekura |
CTFFIND3/CTFTILT and Real-space helical refinement software | http://emlab.rose2.brandeis.edu/software |