Dieser Artikel beschreibt eine Methode, um eine dreidimensionale (3D) Struktur der spiralförmig montiert Moleküle mittels Kryo-Elektronenmikroskopie erhalten. In diesem Protokoll, verwenden wir HIV-1 Capsid Baugruppen für die detaillierte 3D-Rekonstruktion Verfahren zum Erreichen einer Dichte Karte durch die iterative helikale Realraum Rekonstruktion Methode zu illustrieren.
Cryo-Elektronenmikroskopie (Kryo-EM), mit Bildverarbeitung kombiniert, ist eine zunehmend mächtiges Werkzeug zur Strukturaufklärung von makromolekularen Proteinkomplexen und Baugruppen. In der Tat haben einzelne Partikel Elektronenmikroskopie 1 und zweidimensionale (2D) Elektronenkristallographie 2 haben sich relativ Routine Methoden und eine Vielzahl von Strukturen gelöst mit diesen Methoden. Zur gleichen Zeit hat der Bildverarbeitung und dreidimensionale (3D) Rekonstruktion der Helix-Objekte schnell entwickelt, vor allem, die iterative helikale Realraum Wiederaufbau (IHRSR)-Methode 3, die einzelnen Partikel-Analyse-Tools verwendet in Verbindung mit helikalen Symmetrie. Viele biologische Einheiten Funktion in filamentösen oder spiralförmige Formen, einschließlich Aktinfilamente 4, Mikrotubuli 5, Amyloid-Fasern 6, Tabak-Mosaik-Virus 7 und Bakterien Geißeln 8, und weil ein 3D-Dichte Karte eine spiralförmige Einheit aus einer Projektion erreicht werden kann Bild, im Vergleich zu den vielen Bildern für die 3D-Rekonstruktion eines nichthelikalen Objekt erforderlich, mit dem IHRSR Methode, Strukturanalyse eines solchen flexiblen und ungeordneten spiralförmigen Anordnungen ist nun erreichbar.
In diesem Video-Artikel bieten wir Ihnen detaillierte Protokolle für die Erlangung eines 3D-Dichte Karte eine helikale Protein Montage (HIV-1 Capsid 9 ist unser Beispiel), einschließlich der Protokolle für die Kryo-EM Probenvorbereitung, niedrige Dosis Datenerhebung durch Kryo-EM, Indexierung von Schraubenfedern Beugungsmuster und Bildverarbeitungs-und 3D-Rekonstruktion mit IHRSR. Im Vergleich zu anderen Techniken, bietet Kryo-EM optimale Probe Erhaltung unter nahezu natürlichen Bedingungen. Die Proben werden in einer dünnen Schicht aus glasigem Eis eingebettet, durch schnelles Einfrieren und abgebildet in Elektronenmikroskopen bei der Temperatur flüssigen Stickstoffs, unter niedrig dosiertem Bedingungen, um die Strahlung zu minimieren. Beispielbilder sind unter nahezu natürlichen Bedingungen zu Lasten der Low-Signal und geringem Kontrast in der aufgezeichneten Aufnahmen erhalten. Glücklicherweise hat der Prozess der helikalen Wiederaufbau weitgehend automatisiert, mit Ausnahme der Indizierung der spiralförmigen Beugungsmuster. Hier beschreiben wir einen Ansatz zur Index Helix-Struktur und bestimmen helikale Symmetrie (helikale Parameter) aus digitalisierten Aufnahmen, ein wesentlicher Schritt für die 3D-helikale Wiederaufbau. Kurz gesagt, erhalten wir einen ersten 3D-density map durch die Anwendung der IHRSR Methode. Diese erste Karte wird dann iterativ durch die Einführung von Beschränkungen für die Ausrichtung Parameter der einzelnen Segmente und damit die Kontrolle ihrer Freiheitsgrade verfeinert. Eine weitere Verbesserung ist durch die Korrektur für die contrast transfer function (CTF) des Elektronenmikroskops (Amplitude und Phase-Korrektur) und durch die Optimierung der helikale Symmetrie der Anordnung erreicht.
Wir präsentieren eine Reihe von Protokollen ein einfacher Ansatz bieten, um 3D-Strukturen von Helix Objekte zu erhalten. Mit dem beschriebenen Verfahren haben wir eine 3D-Struktur von HIV-1 Capsid Montage aus einer einzigen Röhre Bild (176 Segmente). Höhere Auflösung Strukturen können durch darunter mehr Bilddaten erreicht werden.
Es gibt mehrere kritische Punkte zur optimalen Datenerfassung und-analyse: Erstens, bei der Vorbereitung eines Kryo-EM-Probe sollte die Probelösung entfernt ausgelöscht werden, so dass eine gleichmäßige, dünne Schicht aus Lösung, die etwas dicker als die Stichprobengröße ist. Es gibt verschiedene Möglichkeiten, um die Probe-Blot. Bei bakteriellen Zellen und röhrenförmigen Proben, wie zum Beispiel HIV-1 CA Montage, Löschpapier aus einseitig, vor allem aus der Rückseite, am besten geeignet ist.
Zweitens muss die Händigkeit der Helix bestimmt werden, da dies nicht durch spiralförmige Indizierung oder Rekonstruktion durchgeführt werden. Eine gängige Praxis ist, Gefrierätztechnik, von Rotary Shadowing 18 bis Händigkeit bestimmen gefolgt verwenden. Händigkeit kann auch post-Rekonstruktion bestimmt werden, wenn die Auflösung der Dichte Karte ist ausreichend hoch, die 3D Atommodelle der einzelnen Komponenten sollten gut in der Dichte Karte, wenn eine korrekte Händigkeit angenommen. Andernfalls sollte die Händigkeit angenommen werden.
Drittens sollte ein Wiener-Filter bei der Bildverarbeitung eingesetzt werden, sowohl für Phase und Amplitude Korrektur, um rauscharme Verstärkung zu reduzieren. Da die CTF aus einem einzigen Bild hat immer Nulldurchgänge, ist ein Teil der Informationen im reziproken Raum verloren. Daher ist es notwendig, mehrere Projektion Daten-Sets enthalten zur 3D-Rekonstruktion, die jeweils abgebildeten an verschiedenen defocus Werte.
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren bedanken sich bei Dr. Gongpu Zhao und Danxia Ke für technische Unterstützung danken. Wir danken Drs. Edward Egelman und Niko Grigorieff für die gemeinsame Nutzung ihrer Bildverarbeitungssoftware. Wir erkennen auch die Mitarbeiter, die Strukturbiologie Kryo-EM-Anlage und Beowulf Cluster-und Grid an der University of Pittsburgh School of Medicine zu unterstützen. Diese Arbeit wurde von GM082251 und GM085043 unterstützt.
Name | Source | Comments |
Glow-discharge device 100X | Glow-discharge device 100X | |
Tecnai Polara F30 microscope with a Field Emission Gun | FEI, Hillsboro, OR | |
Gatan 4K x 4K CCD camera | Gatan, Pleasanton, CA | |
Plunge-freezing device | Home-made manual gravity plunger | |
Quantifoil R2/1 200 mesh holely-carbon copper grids | Quantifoil Micro Tools, Jena, Germany | |
EM software EMAN | http://blake.bcm.edu/EMAN/ | |
EM software IHRSR | http://people.virginia.edu/~ehe2n/ | Programs available from Edward H. Egelman |
EM software Spider | http://www.wadsworth.org/spider_doc/spider/docs/spider.html | |
MRC based helical processing software | http://www.riken.jp/biostrmech/index.html | Programs available from Koji Yonekura |
CTFFIND3/CTFTILT and Real-space helical refinement software | http://emlab.rose2.brandeis.edu/software |