Простой и надежный метод изоляции и культуры нервных стволовых клеток из выброшенных человеческого плода корковой ткани описано. Культуры, полученные из известных человеческих неврологические расстройства могут быть использованы для характеристики патологических клеточных и молекулярных процессов, а также обеспечит платформу для оценки фармакологической эффективности.
Нервные стволовые клетки (NSCs) проживают вместе нейроэпителия зоны желудочков во время развития кортикальной пластинки. Эти ранние предшественники в конечном счете привести к промежуточной прародителей и позже, различных нервных и глиальных клеток подтипов, которые образуют кору головного мозга. Способность генерировать и расширить человеческие NSCs (так называемые нейросферы) из выброшенных нормальной эмбриональной ткани обеспечивает средства, с которыми непосредственно изучать функциональные аспекты нормального человеческого развития НСК 1-5. Этот подход может также быть направлена на генерацию NSCs от известных неврологических расстройств, тем самым предоставив возможность определить болезненные процессы, которые изменяют предшественников пролиферации, миграции и дифференциации 6-9. Мы сосредоточились на выявлении патологических механизмов в человеческом Вниз NSCs синдром, который может способствовать болезни фенотип ускоренного Альцгеймера 10,11. Ни в естественных условиях, ни в лабораторных мышах может повторить идентичных репертуар генов, расположенных на хромосомы человека 21.
Здесь мы используем простой и надежный способ, чтобы изолировать синдромом Дауна NSCs из абортированных человеческих эмбриональных коры и вырастить их в культуру. Методология предусматривает конкретные аспекты уборки ткани, рассечение с ограниченными ориентиры анатомические, сортировки клеток, покрытий и пассажи человека NSCs. Мы также предоставляем некоторые основные протоколы для индукции дифференциации человеческого NSCs в более избирательным подтипа клетки.
Существуют различные подходы к культуре свежей ткани и производство человеческих клеточных линий. Исторически сложилось так, свежей ткани были собраны и культурным сразу генерировать различные типы клеток в центральной нервной системе. Этот подход, однако, четко ограничено количест?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была выполнена при частичной поддержке Национального института здоровья: HD054347 и NS063997-01 к VLS. Эта работа также была частично поддержана Стволовые Эмпайр-Стейт-Сотовый фонд через Нью-Йорк Департамент здравоохранения штата Договор № C024324 для VLS. Мнения, высказанные здесь, являются исключительно автору и не обязательно отражают точку зрения Стволовые Эмпайр-Стейт-Сотовый совета штата Нью-Йорк Департамент здравоохранения, и штата Нью-Йорк. VLS является Дорис Дьюк Клинические Ученый развитием получателя премии. Мы также благодарим профессора Тимоти Вартанян за его дар Anti-O1, Анти-O4 антител.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
---|---|---|---|
KNOCKOUT DMEM/F12 | Invitrogen | 12660-012 | Dissociation medium |
Stem Pro NSC SFM | Invitrogen | A10509-01 | Culture medium |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen | 10091-148 | Frozen medium |
Hanks solution (-Ca2+, -Mg2+) | Invitrogen | 14175-095 | Dissociation medium |
DMSO | Sigma-Aldrich | D2650 | Frozen medium |
EDTA | Sigma-Aldrich | 431788 | Dissociation medium |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 158127 | Fixation solution |
bFGF | R&D | 234-FSE | Differentiation medium |
SHH | R&D | 1845-SH | Differentiation medium |
PDGF-AA | R&D | 221-AA | Differentiation medium |
B27 | Invitrogen | 17504-044 | Differentiation medium |
Mouse Anti-MAP2 | Sigma-Aldrich | M2320 | 1:200 |
Rabbit Anti-DCX | Cell signaling | 4604s | 1:200 |
Rabbit Anti-GFAP | DAKO | Z0334 | 1:200 |
Rabbit Anti-S100B | DAKO | Z0311 | 1:200 |
Rabbit Anti-O1 | gifts of Professor Timothy Vartanian* | 1:50 | |
Rabbit Anti-O4 | Gifts of Professor Timothy Vartanian* | 1:50 | |
40μm cell strainer | BD Falcon | 352340 |
* Timothy Vartanian, MD, PhD, Department of Neurology and Neuroscience, Weill Cornell Medical College, New York, USA