ここでは、ステンドグラスの取り付けプロトコルを提示<em>ショウジョウバエ</em>共焦点顕微鏡を用いて断面のイメージングを可能にする直立姿勢における胚。
いくつかのよく知られた形態形成の勾配と細胞の動きが背/腹軸に沿って起こる<em>ショウジョウバエ</em>胚。しかし、そのようなプロセスを表示するために使用される現在の技術は幾分限られている。以下のプロトコールは、固定とラベルの付いたマウントするための新しい手法を説明します<em>ショウジョウバエ</em>共焦点イメージングと冠状表示するための胚。このメソッドは二つのグリセリンゼリーマウントメディアの層、そして直立に配置イメージングゼリーストリップの間に胚を埋め込むから成ります。胚を挟むための最初のステップは、スライド上のグリセリンゼリーの薄い寝具をすることです。次に、胚は、慎重にこの表面上に整列し、ゼリーの二層で覆われている。第二層が固化した後、ゼリーのストリップを切断し、イメージングのために直立反転されています。選択肢は、使用する顕微鏡のスタンドのタイプに応じて胚を視覚化するために記載されています。背腹軸に沿ってすべてのセルが単一の共焦点Z -平面内に結像されているので、私たちの手法は、正確な測定と光退色せずに蛍光シグナルまたは縦置き胚の3D再構成に共通の光散乱の比較が可能になります。
それは、スライス2または通常蛍光stainingsに対して有害であるミクロトーム処理、ために埋め込 まれたメディアの使用のいずれかの慎重な手の郭清を必要とするので、 ショウジョウバエの胚の断面の画像を取ることは、挑戦することができます。また、共焦点顕微鏡で作られたZ -スタックは、断面の画像の3D再構成を作るために使用することができます。しかし、正確な三次元再構成と光退色問題のあるなるためにいくつかの薄い共焦点スライスを作るために時間がかかるがそれです。縦にマウントされているイメージング胚もタンパク質またはmRNA発現レベル1の定量化を目的と蛍光シグナルの正確な測定を行う複雑胚の深いセクションに到達したときに発生する光の散乱であるもう一つの懸念。たとえ2光子共焦点顕微鏡で、光散乱はまだ限られるため、サンプルの最適な透明性のためにマウントメディアの選択を行った胚の真ん中に卵黄物質の不透明度、に起因する問題です。
これらの問題を回避するために、垂直に位置決め胚のイメージング"に関するエンド"と呼ばれる新しい技術は、最近、画像の両方のライブと固定試料4に開発されました。本稿では、 その場プローブ3 で複数で汚れている任意のサイズと形状の固定された胚や組織の簡単な準備と可視化を可能にする縦置きでマウント胚のための新しいプロトコルを開発しました。我々の手法は、その中に整列胚を包むために使用されるゼラチン状の一貫性と取り付けメディアを使用して構成されています。埋め込まれた胚を含むこのマウントメディアのカットブロックは共焦点顕微鏡、任意のタイプのイメージングの前に直立に配置することができます。
ゼリーに胚を埋め込むと垂直に配置することによって、我々は、胚の背腹軸に沿って細胞が同時に記載されている共焦点顕微鏡を使用して、水平方向の断面を活用することができます。これは、光散乱および縦置き胚の従来のZ -スタック再建で発生する蛍光染料の光退色の問題以来、定量化の目的のために大幅な改善は、現在解消されています。反対側の背腹の位置にあるセルが同時に同じ焦点Z位置で結像されているのでこのように、背腹軸に沿った遺伝子発現やタンパク質レベルの定量は、正確です。さらに、記載された方法は、私たちはDVの軸6に沿って異なる位置にあるセルを視覚化するために、複雑な計算アンロールの方法を使用せずに3 – D胚から背腹軸を介して完全な2次元画像を取得することができます。
重要なステップのいくつかは、ゼリーの2つの層の間の分裂を避けるために、胚を合わせ後に余分なグリセリンを除去含まれています。しかし、サンプルがあまりにも脱水の場合は、結果として得られる画像は不格好になると不正な形態を持つことになります。胚の周りゼリーの培地は角度ではなく、ストレートカットされている場合に加えて、、、結果として得られるイメージは、90度以外の角度で胚の不正確なポジショニングのために、形状の小さい丸とより多くの卵子の表示されることがあります。ゼリーは前方/後方端部に胚に密接に十分にカットされていない場合は最後に、、それは客観の作動距離は主にゼリーではなく胚に集中するために使用されるので、適切な画像を得ることは不可能である。
イメージング後半gastrulating胚は慎重にそれらを整列させる前に、スコープの下に関心の段階をソートするときに必要になることがありますもう一つの重要なステップ。通常、胚は縦位置で最も簡単に認識できる形態学的特性に応じてステージングされます。
この方法で作ることができる別の変更の中に蛍光染料の光退色を防ぐためにゼリーの二層にアンチフェード試薬(例えば、p -フェニレンジアミンまたはPPD)に含めることです。
The authors have nothing to disclose.
著者は、デボラハリスとダニエルマッケイには特にお世話になります。この作品のサポートは、生物学科とCWRUの芸術と科学の大学で、生物科学における学部教育の支援のためのハワードヒューズの助成金番号52005866によって提供されていました。
Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
Glycerin Jelly mounting media | Electron Microscopy Sciences Company | 17998-10 | Contains low concentration of phenol as preservative and should be used in hood or in well ventilated area. Recipe for making your own media is described in Zander, 1997. | |
Zeiss LSM 700 Confocal | Zeiss | The following objectives were used: Plan-Apo 20x 0.8 M27 (WD 0.55mm); EC Plan-Neofluar 40x 1.3 oil (WD 0.21mm); LD Plan-Neofluar 0.6 Korr 40X (WD 2.9mm). | ||
Phosphate buffered saline with 0.1% Tween 20 (PBT) | ||||
Glass microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-7 | ||
Glass cover slips | Electron Microscopy Sciences | 72204-02 | Size 1 ½ (specific for the objectives used in this work). | |
Glass cover slips (for making supports) | Fisherfinest | 12-544-10 | Use four coverslips glued with superglue. | |
Dissection microscope | M5 Wild Heerbrugg Wild Makroskop | M420 | ||
Razor blade | Steel back single edge industrial blades | |||
Spatula | Fisher | 21-401-10 | ||
Hypodermic needles | Fisher | 1482610 | 26 Gauge | |
Pipettes | Labnet |