Summary

Injeção intracraniana da adeno-associado vetores virais

Published: November 17, 2010
doi:

Summary

Aqui apresentamos a injeção intracraniana de vetores de AAV para a rotulagem fluorescentes de neurônios e células gliais no córtex visual.

Abstract

Injeção intracraniana de vetores virais projetadas para expressar uma proteína fluorescente é uma técnica de rotulagem versátil para visualização de subgrupos específicos de células em diferentes regiões do cérebro in vivo e em secções do cérebro. Ao contrário da injeção de corantes fluorescentes, rotulagem viral oferece segmentação de tipos de células individuais e é menos caro e demorado do que estabelecer linhas de ratinhos transgénicos. Nesta técnica, um vetor adeno-associado (AAV) viral é injetado intracraniana usando coordenadas estereotáxica, uma micropipeta e uma bomba automatizada para entrega preciso de AAV para a área desejada com o mínimo dano ao tecido circundante. Parâmetros de injeção pode ser adaptado para experimentos individuais, ajustando a idade do animal em injeção, injeção de localização, volume de injeção, a taxa de injeção, sorotipo AAV eo promotor dirigindo a expressão do gene. Dependendo das condições de escolhido, virally induzida a expressão do transgene pode permitir a visualização de grupos de células, as células individuais ou multa processos celulares, até o nível das espinhas dendríticas. O experimento mostrado aqui representa uma injeção de double-stranded AAV expressando a proteína fluorescente verde para a rotulagem de neurônios e células gliais no córtex visual primário do mouse.

Protocol

1. Manuseio e Armazenamento de vírus Uma protecção adequada e técnicas de manejo devem ser escolhidos com base no nível de biossegurança do vírus para ser usado. Estas práticas podem ser encontrados em Biossegurança em Microbiologia e Biomédica ª edição Laboratories 5, disponível no site do CDC ( http://www.cdc.gov/od/OHS/biosfty/bmbl5/bmbl5toc.htm ). O uso de vetores AAV é aprovado para o Nível de Biosseguran…

Discussion

Virally mediada entrega do gene tem um grande potencial para o estudo de processos neurológicos e tratamento de distúrbios cerebrais 1,2,3. A grande versatilidade desta técnica também pode ser explorada para fluorescente rótulo células para geração de imagens tanto de vitro como in vivo 4. Aqui demonstramos um procedimento detalhado para a transdução de neurônios e células gliais no córtex visual do rato usando um double-stranded do vírus adeno-associação expressan…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho só foi possível por concessões do NIH (EY012977), um Prémio Carreira na de Ciências Biomédicas da Burroughs Wellcome Fund, a Fundação Whitehall, e da Fundação Sloan (AKM).

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Stoelting Mouse and Neonatal Rat Adaptor   Stoelting 51625 Regular stereotax for securing animals for surgery may be substituted
Extra Fine Bonn Scissors, 8.5cm, straight tip, cutting edge 13mm   Fine Science Tools 14084-08  
Eye Dressing Forceps, 10cm, tip width 0.5mm, curved   Fine Science Tools 11152-10  
Dumont #5/45 Forceps- Dumoxel Standard Tip, 11cm, angled   Fine Science Tools 11251-35 Extra-fine tipped forceps for performing craniotomy
Standard Pattern Forceps, straight, 2.5mmx1.35mmtip, 12cm   Fine Science Tools 11000-12  
Microtorque Control Box and Tech2000 handpiece   Ram Products, Inc. TECH2000ON/OFF Dental drill
Micro Drill Stainless Steel Burrs 1.4mm tip diameter   Fine Science Tools 19008-14  
Wiretrol micropipettes, to deliver 1-5 Ul   VWR International/ Drummond 5-000-1001 or 53480-287  
Mineral oil   VWR International 29447-338  
Manual Micromanipulator and Tilting Base (right-handed)   World Precision Instruments, Inc. M3301-M3-R Used for determining stereotaxic co-ordinates
UltraMicroPump (UMP3) (one) with SYS-Micro4 Controller   World Precision Instruments, Inc. UMP3-1  
Sutures   VWR International 95056-952  
P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller   Sutter Instruments P-97  
Tobradex       Available from your institution’s veterinary services

Referencias

  1. Kaplitt, M. G., Leone, P., Samulski, R. J., Xiao, X., Pfaff, D. W., O’Malley, K. L., During, M. J. Long-term gene expression and phenotypic correction using adeno-associated virus vectors in the mammalian brain. Nat Genet. 8, 148-154 (1994).
  2. Harding, T. C., Dickinson, P. J., Roberts, B. N., Yendluri, S., Gonzalez-Edick, M., Lecouteur, R. A., Jooss, K. U. Enhanced gene transfer efficiency in the murine striatum and an orthotopic glioblastoma tumor model, using AAV-7- and AAV-8-pseudotyped vectors. Hum Gene Ther. 17, 807-820 (2006).
  3. Lo, W. D., Qu, G., Sferra, T. J., Clark, R., Chen, R., Johnson, P. R. Adeno-associated virus-mediated gene transfer to the brain: duration and modulation of expression. Hum Gene Ther. 10, 201-213 (1999).
  4. Lowery, R. L., Zhang, Y., Kelly, E. A., Lamantia, C. E., Harvey, B. K., Majewska, A. K. Rapid long-term labeling of cells in the developing and adult rodent visual cortex using double-stranded adeno-associated viral vectors. Dev Neurobiol. 69, 674-688 (2009).

Play Video

Citar este artículo
Lowery, R. L., Majewska, A. K. Intracranial Injection of Adeno-associated Viral Vectors. J. Vis. Exp. (45), e2140, doi:10.3791/2140 (2010).

View Video