Summary

电子显微镜对胚胎的制备果蝇胚胎心管

Published: December 21, 2009
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Summary

我们描述了一个固定,包埋过程,切片,和后期成像<em>果蝇</em> Trasmission电子显微镜对胚胎的心管的胚胎。这种技术可以让心脏管腔的可视化以及基底膜,哪条线路的心腔。

Abstract

的形态发生<em>果蝇</em>胚胎心管已成为一个有价值的模型系统,为研究胚胎发育过程中细胞迁移,细胞与细胞粘附和细胞形态的变化。研究这种结构所面临的挑战之一,就是心管的管腔,以及膜的功能,心管的形成是至关重要的,很难想象在整装胚胎,由于体积小,心管和内部lumenal的空间相对胚胎。透射电子显微镜的使用,使这些结构的放大倍率较高,并给出了截面,这就容易揭示管腔的大小和形状的胚胎研究的优势。在这段视频中,我们详细可靠的固定的过程中,嵌入,和后期切片<em>果蝇</em>胚胎,以形象化的心脏管腔以及重要的细胞结构,包括细胞与细胞间的路口和基底膜。

Protocol

刚准备一个含有20毫升的玻璃闪烁瓶12.5%戊二醛在50MM Cacodylate缓冲液(pH7.4)固定液的解决方案2毫升。加入正庚烷8毫升大力动摇。允许分开的两个阶段。到一个干净的闪烁瓶中取出上相含戊二醛饱和的正庚烷,地点和预留。这将是固定液。 收集0-20小时的胚胎,利用胚胎收集室,这是一个可移动的网格插入的小篮子。 50%的漂白粉溶液中浸泡2-3分钟胚胎取出的外蛋壳膜,或直到胚​​胎浮到表面的漂白剂。彻底冲洗用纸巾上ddH20和杂交胚胎。 使用镊子,拿起覆盖dechorionated胚胎和成的固定液,使胚胎下降网格的网格插入。允许胚胎修正为1.5小时,在4 ° C,而在一个Nutator混合。 准备一个培养皿内衬双面胶带。从固定液使用巴斯德吸管取出胚胎和他们放到录音的Petri dish.Transfer表面少量的胚胎在固定液固定液庚,以防止溶解的磁带的粘合剂。摇动培养皿中的胚胎单层。直到庚蒸发的防护罩放置在培养皿。加入足够的PBS + 0.1%Tween20到胚胎。手devitellinize后期阶段的16个胚胎解剖显微镜下用钝器钨针。恢复到1.5 ml离心管巴斯德吸管的胚胎。在此离心管进行步骤5-7。 冲洗胚胎0.1M Cacodylate缓冲液,pH 7.4,然后在0.1M Cacodylate缓冲液,pH 7.4在室温下1小时,含1%四氧化锇溶液后修复。冲洗0.1M Cacodylate缓冲液,pH值7.4的胚胎。 在乙醇和丙酮梯度脱水胚胎。胚胎脱水用50%乙醇10分钟,70%乙醇10分钟。然后在90%丙酮脱水10分钟,和两个100%丙酮,每次10分钟的步骤。 删除丙酮,然后开始加入1:1的EPON Spurr树脂渗透的过程:丙酮混合胚胎。微波三分钟使用Pelco的功能弹性临微波真空压力下,同时保持样品。申请一个额外的5分钟后,已经结束的微波真空压力的样品。交易所1:1树脂,丙酮100%EPON – Spurr树脂和微波真空压力下。交易所的100%EPON – Spurr树脂最后的时间,和微波真空压力下。 使用巴斯德吸管,胚胎转移的离心管,以硅树脂嵌入模具。成一排,这样的胚胎后结束与模具的锥形边缘对齐,对齐胚胎。烘烤在70 ° C烘箱过夜。 取出样品,准备切片。 开始切割1μm的部分,用金刚石HISTO刀和里克特Ultracut发送切片。请注意,当第一个胚胎部分达到。从这一点来说,削减100μm的进样。删除部分使用循环,并到载玻片的地方。简要地热的一个热点板块的部分。使用一滴亚甲蓝染色部分。在光学显微镜下识别心腔。 切割使用90纳米钻石超45 °刀和里克特Ultracut发送切片部分。拿起一个铜栅上的多个部分。 网格3%的铀,50%的乙醇10分钟饱和醋酸染色,然后在双蒸水冲洗三次。然后,电网染色柠檬酸铅中含有氢氧化钠颗粒创建一个CO 2,自由的环境室(中10毫升双蒸水和100ml 10M NaOH溶液溶解0.04gms)为2.5分钟。电网双蒸水冲洗三次。 节用JEOL 1200EX电子显微镜检查,在80KV,AMT数码相机拍摄的。

Discussion

果蝇胚胎的心管的形态发生,已成为一个有价值的模型系统,为研究胚胎发育过程中的细胞粘附和细胞形态的变化。在研究这种结构所面临的挑战之一是,很难想象在整装胚胎的心管的管腔。在这个视频演示的技术,这是从前面描述的程序1-2适应,已被证明是有效和可靠地分析大量的基因型心管和管腔形成3的成功。

Acknowledgements

我们的心管形成的工作是支持由美国国家科学基金会的资助(奖励编号0744165)SGK

Referencias

  1. Tepass, U., Hartenstein, V. The Development of Cellular Junctions in the Drosophila embryo. Dev. Biol. 161, 563-596 (1994).
  2. Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, S. . Drosophila Protocols. , (2000).
  3. Santiago-Martinez, E., Soplop, N. H., Patel, R., Kramer, S. G. Repulsion by Slit and Roundabout prevents Shotgun/E-cadherin-mediated cell adhesion during Drosophila heart tube lumen formation. J. Cell Biol. 182, 241-248 (2008).

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Citar este artículo
Soplop, N. H., Patel, R., Kramer, S. G. Preparation of embryos for Electron Microscopy of the Drosophila embryonic heart tube. J. Vis. Exp. (34), e1630, doi:10.3791/1630 (2009).

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