Ce protocole détaille une procédure chirurgicale pour effectuer une chirurgie de la moelle épinière et pour implanter et fixer une tige optique sur la moelle épinière chez les rongeurs.
La neuromodulation peut fournir des applications diagnostiques, modulatrices et thérapeutiques. Bien que des travaux approfondis aient été menés dans le cerveau, la modulation de la moelle épinière reste relativement inexplorée. Le tissu de la moelle épinière, intrinsèquement délicat et mobile, impose des contraintes qui rendent difficile l’implantation précise de sondes neurales. Malgré les progrès récents dans les dispositifs de neuromodulation, en particulier la bioélectronique flexible, les possibilités d’étendre leur utilisation dans la moelle épinière ont été limitées par les complexités chirurgicales de l’implantation du dispositif. Ici, nous fournissons une série de protocoles chirurgicaux adaptés spécifiquement à l’implantation d’un dispositif optoélectronique sur mesure qui s’interface avec la moelle épinière chez les rongeurs. Les étapes de mise en place et d’ancrage d’une tige optique sur un segment spécifique de la moelle épinière via deux méthodes d’implantation chirurgicale différentes sont détaillées ici. Ces méthodes sont optimisées pour une gamme variée de dispositifs et d’applications, qui peuvent ou non nécessiter un contact direct avec la moelle épinière pour la stimulation optique. Pour élucider la méthodologie, l’anatomie vertébrale est d’abord référencée pour identifier les points de repère proéminents avant de faire une incision cutanée. Les étapes chirurgicales pour fixer une tige optique sur la colonne cervicale chez les rongeurs sont démontrées. Des procédures sont ensuite décrites pour fixer le dispositif optoélectronique connecté à la tige optique dans un espace sous-cutané éloigné de la moelle épinière, minimisant ainsi les contacts directs inutiles. Des études comportementales comparant les animaux recevant les implants à ceux subissant des chirurgies fictives indiquent que les tiges optiques n’ont pas affecté négativement la fonction des membres postérieurs ou antérieurs sept jours après l’implantation. Le présent travail élargit la boîte à outils de neuromodulation pour une utilisation dans de futures études visant à étudier diverses interventions de la moelle épinière.
La moelle épinière facilite une gamme de fonctions essentielles du système nerveux central, de la coordination des comportements moteurs à la régulation des processus homéostatiques tels que la respiration 1,2. L’élucidation du rôle du réseau sophistiqué de circuits à travers la moelle épinière nécessite des interfaces, que ce soit pour la stimulation électrique, l’enregistrement, l’administration de médicaments ou la stimulation optique vers des zones ciblées 3,4,5,6. Bien que des dispositifs aient été développés pour permettre de tels interrogatoires 7,8,9,10,11, des techniques chirurgicales spécialisées sont nécessaires pour leur implantation chronique dans la moelle épinière4. En particulier, la moelle épinière et les vertèbres associées ont une susceptibilité accrue aux déformations mécaniques causées par des mouvements naturels tels que l’extension et la flexion 8,12,13. Ces caractéristiques uniques de la moelle épinière rendent intrinsèquement difficile de s’assurer que les sondes implantées restent stables, fonctionnelles et fixées à un segment spécifique sur de longues périodes.
Dans le présent document, un protocole chirurgical est décrit pour l’insertion et la fixation d’une tige optique dans un segment ciblé de la moelle épinière (Figure 1A). Étant donné qu’il a été démontré que l’interfaçage avec la région cervicale en particulier présente des défis uniques9, les étapes d’implantation sont spécifiquement démontrées sur la région cervicale C5. On postule que la complexité de la colonne cervicale provient de son positionnement plus profond et de l’abondance de la musculature, une caractéristique moins proéminente le long du reste de la moelle épinière. Quoi qu’il en soit, les procédures décrites dans ce protocole sont conçues pour être adaptables aux chirurgies dans diverses régions de la moelle épinière. Des instructions par étapes sont fournies pour localiser et identifier les segments de la moelle épinière à l’aide de « repères » anatomiques prononcés identifiables sur la peau (figure 1B). Le protocole élucide ensuite deux techniques d’implantation chirurgicale : l’une adaptée aux sondes qui nécessitent un contact direct avec la moelle épinière, et l’autre pour les sondes qui peuvent ne pas nécessiter de contact direct. Les étapes décrites sont conçues pour être reproduites par tout chercheur ayant une formation en chirurgie de survie des rongeurs.
Ce protocole comprend des instructions étape par étape pour l’implantation d’un dispositif optoélectronique (18 mm x 13 mm) avec une tige optique flexible attachée au-dessus du niveau cervical C5. Le dispositif implantable est fixé sous-cutanéement caudale à C5 et se compose d’un indicateur de diode électroluminescente à micro-échelle (μLED), qui s’allume lors d’une stimulation optique de la moelle épinière, fournissant un retour en direct sur le fonctionnement du dispositif. L’effet de la tige optique implantée sur la fonction motrice naturelle a été évalué sur des rongeurs ayant reçu des implants et a été comparé à des rongeurs ayant subi des chirurgies fictives. Les résultats indiquent que les sondes n’affectent pas négativement la fonction naturelle des membres postérieurs et antérieurs de l’animal sept jours après l’implantation.
La neuromodulation et les interventions thérapeutiques de la moelle épinière nécessitent souvent le placement de sondes dans des segments précis et ciblés 3,4,7,13. Compte tenu de la mobilité inhérente de la moelle épinière, la sonde doit être sécurisée de manière fiable pour permettre des études chroniques. En fonction de l’application spécifique, il peut être important de contrôler si la sonde est en contact physique avec la moelle épinière ou si le contact peut être réduit pour réduire la réponse inflammatoire du tissu lorsque cela est possible. Par conséquent, les étapes chirurgicales de chacune des deux méthodes sont décrites. Le protocole détaille spécifiquement comment placer une sonde dans le segment cervical de la moelle épinière en C5. Néanmoins, en utilisant le point de repère décrit pour T2 ou T10 de la moelle épinière, la sonde peut être placée de la même manière à un endroit précis sur la région thoracique ou lombaire en comptant les vertèbres à partir de T2 ou T10, respectivement, une fois qu’elles sont exposées. De plus, pour minimiser les lésions du tissu de la moelle épinière, nous avons fixé le corps de l’appareil, qui est souvent plus grand et plus rigide que la sonde connectée, dans un espace sous-cutané à l’écart de la moelle épinière.
Il y a quelques points critiques à l’implantation du dispositif couplé à la sonde. Tout d’abord, il est essentiel de décider de l’emplacement du corps de l’appareil avant de cimenter la sonde. Cela permet d’optimiser la distance entre la pointe de la sonde et le corps de l’appareil afin de réduire la tension sur la sonde et d’éviter d’avoir une longueur de sonde supplémentaire, ce qui peut, par exemple, provoquer une torsion ou un déplacement de la sonde. Essentiellement, l’objectif est de s’assurer que la longueur de la sonde est similaire à la distance entre l’espace sous-cutané où le corps du dispositif est placé et la région de la moelle épinière ciblée où la sonde est cimentée. En effectuant des procédures de chirurgie terminale dans lesquelles différentes longueurs de sonde sont testées, la taille optimale peut être déterminée pour un segment ciblé.
Pour maintenir la stérilité, le dispositif doit être manipulé avec précaution afin d’éviter tout contact avec la couche externe de la peau lors de l’insertion dans la poche sous-cutanée. Un tel contact peut compromettre la stérilité de l’appareil, ce qui peut entraîner une infection postopératoire. De plus, il est important de minimiser la quantité de force appliquée à l’appareil lorsque vous le tenez avec une pince pour éviter d’endommager son revêtement, qui est généralement une fine couche protectrice, isolante et stérile20,21. Le retrait du revêtement peut réduire considérablement la durée de vie de l’appareil, par exemple en raccourcissant le circuit, en provoquant un choc électrique chez l’animal et/ou en provoquant une réponse inflammatoire dans le corps. La manipulation de l’appareil avec des pinces à pointe en plastique peut aider à réduire ces complications.
Lors de la suture du dispositif sur les tissus mous, il est important d’éviter de suturer sur le tissu adipeux sous-cutané. Comme observé dans les essais préliminaires, les couches de graisse ne sont pas un point d’ancrage fiable pour les sutures car elles sont sujettes à la rupture. Au lieu de cela, le corps du dispositif a été suturé à une couche musculaire adjacente dans l’espace sous-cutané à l’aide de sutures non résorbables pour le placement permanent du dispositif dans le corps. D’autre part, lors de la fixation de la sonde aux apophyses épineuses, il est important de s’assurer que le site auquel la sonde est fixée est sec avant d’appliquer le ciment. L’os/sonde humide prolonge le temps de durcissement et peut entraîner l’échec complet du processus.
Il y a certaines considérations critiques associées à un dispositif implantable qui doivent être soigneusement prises en compte avant la chirurgie d’implantation. (1) Les parties électriquement actives de l’appareil doivent être encapsulées par une couche de passivation isolante. Toute privation dans la couche passivante peut entraîner une défaillance fonctionnelle du dispositif. (2) L’implantable doit être soigneusement stérilisé conformément au protocole de l’établissement pour les animaux. (3) La jonction entre l’appareil et les sondes neurales ou les tiges de stimulation doit être solidement formée. La connexion subira des contraintes mécaniques reproductibles en raison des mouvements constants des animaux. (4) Les sondes neurales ou les tiges de stimulation fixées à l’appareil doivent être suffisamment souples et extensibles pour éviter de se casser en divers points.
Le protocole décrit peut être étendu à des dispositifs d’implantation dans des modèles animaux de différentes tailles. Après avoir identifié les repères anatomiques, les méthodes chirurgicales décrites peuvent être méthodiquement personnalisées pour fixer des sondes neurales ou des tiges de stimulation sur des segments ciblés de la moelle épinière et implanter leurs modules de contrôle associés. Cependant, selon l’application, différents appareils peuvent avoir des tailles, des matériaux et des épaisseurs différents de celui implanté dans ce papier ; Par exemple, les appareils connectés à un module de commande externe nécessitent des considérations supplémentaires. De plus, il convient de noter que si ce protocole est conçu pour la stimulation optogénétique, d’autres applications neuromodulatrices, telles que l’administration de médicaments ou la stimulation/enregistrement électrique, nécessitent des procédures chirurgicales légèrement différentes. Plus précisément, ces applications nécessitent une implantation sous-durale pour assurer un contact direct avec la moelle épinière sous la dure-mère7. Cependant, pour l’optogénétique, le contact intime avec les tissus est généralement inutile car la dure-mère de rongeur n’entrave pas de manière significative la pénétration de la lumière, ce qui permet de placer les sources lumineuses de manière épidurale10.
The authors have nothing to disclose.
S.S. est financé en partie par une bourse de doctorat de quatre ans de l’Université de la Colombie-Britannique. A.M. est en partie financée par une bourse d’études supérieures du Canada à la maîtrise des Instituts de recherche en santé du Canada (IRSC). D.S. reconnaît le financement de la bourse Michael Smith Health Research British Columbia Scholar. Ces travaux ont été financés en partie par le Fonds Nouvelles frontières en recherche – Transformation (NFRFT-2020-00238) du gouvernement du Canada. Le schéma de la figure 1 a été généré à l’aide de Biorender.com, et le modèle 3D a été obtenu avec la permission de sketchfab.com.
Adson Forceps | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Alm 3 Point Retractor | Fine Science Tools | 17010-10 | |
Buprenorphine / Vetergesic | CDMV | 124918 | Manufacturer provides at 0.3 mg/mL but must be diluted to 0.03 mg/kg for use in rats |
Chlorhexidine 2% Solution | Partnar | PCH-020 | |
Curved Long Hemostat Forceps | KaamKaaj Tools | 14.5 | Curved Long Hemostat Forceps with A Stainless Steel Ratchet Locking Tweezer |
CVD Parylene Machine: SCS Labcoter 2 | Specialty Coating Systems | PDS 2010 | |
Dental Cement – Catalyst | Parkell, Inc | S371 | |
Dental Cement – Metabond | Parkell, Inc | S398 | |
Dental Cement – Powder | Parkell, Inc | S396 | |
Forceps with Replaceable Plastic Tips | Fine Science Tools | 11980-13 | |
Friedman-Pearson Rongeurs | Fine Science Tools | 16121-14 | |
Isoflurane USP | Fresenius Kabi | CP0406V2 | Provided at 5% for induction and 2% for mainentance through precision vaporizer |
Isopropyl Alcohol 70% | McKesson | 350600 | |
Lacri-Lube Sterile Eye Ointment | Refresh | ||
Long Evans Rats | Charles River Laboratories | 6 | |
Low temperature solder paste | Chip Quik Inc. | 11.38 | |
Magnets | Radial Magnets, Inc. | 0.53 | Magnet Neodymium Iron Boron (NdFeB) N35 (3.00 mm x 1.00 mm) |
Olsen-Hegar Needle Holders with Suture Cutters | Fine Science Tools | 12002-12 | |
PDMS: SYLGARD 184 | Sigma Aldrich | 761036 | |
Scalpel Blades – #15 | Fine Science Tools | 10015-00 | |
Scalpel Handle – #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Solder flux | Chip Quik Inc. | 14.25 | |
Stereotaxic Frame | David Kopf Instruments | Model 900 | |
Sterile Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL-S | |
UV Flashlight | Vansky | 19.99 | |
Wireless Charger | Nilkin | NKT06 | |
Wireless Charging coil | TDK Corporation | WT202012-15F2-ID |
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