В этом протоколе подробно описывается хирургическая процедура для проведения операций на спинном мозге, а также для имплантации и закрепления оптического хвостовика над спинным мозгом у грызунов.
Нейромодуляция может обеспечить диагностическое, модулирующее и терапевтическое применение. В то время как в головном мозге была проведена обширная работа, модуляция спинного мозга остается относительно неизученной. По своей природе нежная и подвижная ткань спинного мозга накладывает ограничения, которые затрудняют точную имплантацию нейронных зондов. Несмотря на последние достижения в области нейромодуляционных устройств, в частности гибкой биоэлектроники, возможности расширения их использования в спинном мозге были ограничены хирургическими сложностями имплантации устройств. В этой статье мы предлагаем ряд хирургических протоколов, разработанных специально для имплантации специально изготовленного оптоэлектронного устройства, которое взаимодействует со спинным мозгом у грызунов. Здесь подробно описаны шаги по размещению и закреплению оптического хвостовика на определенном сегменте спинного мозга с помощью двух различных методов хирургической имплантации. Эти методы оптимизированы для широкого спектра устройств и приложений, которые могут требовать или не требовать прямого контакта со спинным мозгом для оптической стимуляции. Чтобы прояснить методологию, сначала обращаются к анатомии позвонков для определения заметных ориентиров, прежде чем делать разрез кожи. Продемонстрированы хирургические шаги по обеспечению оптического стержня над шейным отделом позвоночника у грызунов. Затем описываются процедуры фиксации оптоэлектронного устройства, подключенного к оптическому хвостовику, в подкожном пространстве вдали от спинного мозга, сводя к минимуму ненужный прямой контакт. Поведенческие исследования, сравнивающие животных, получающих имплантаты, с теми, кто подвергался фиктивным операциям, показывают, что оптические голени не оказали негативного влияния на функцию задних или передних конечностей через семь дней после имплантации. Настоящая работа расширяет инструментарий нейромодуляции для использования в будущих исследованиях, направленных на изучение различных вмешательств в спинной мозг.
Спинной мозг способствует целому ряду основных функций центральной нервной системы, от координации двигательного поведения до регулирования гомеостатических процессов, таких как дыхание 1,2. Для выяснения роли сложной сети схем через спинной мозг требуются интерфейсы, будь то для электрической стимуляции, записи, доставки лекарств или оптической стимуляции в целевые области 3,4,5,6. Несмотря на то, что были разработаны устройства, позволяющие проводить такие опросы 7,8,9,10,11, для их хронической имплантации в спинной мозг требуются специализированные хирургические методы4. В частности, спинной мозг и связанные с ним позвонки имеют повышенную восприимчивость к механическим деформациям, вызванным естественными движениями, такими как разгибание и сгибание 8,12,13. Эти уникальные характеристики спинного мозга делают сложной задачу обеспечения того, чтобы имплантированные зонды оставались стабильными, функциональными и закрепленными в определенном сегменте в течение длительных периодов времени.
В настоящем описании описан хирургический протокол для установки и фиксации оптического хвостовика в целевом сегменте спинного мозга (рисунок 1A). Поскольку, в частности, было показано, что взаимодействие с шейным отделом создает уникальныепроблемы9, этапы имплантации специально демонстрируются в шейном отделе С5. Предполагается, что сложность шейного отдела позвоночника возникает из-за его более глубокого расположения и обилия мускулатуры, характеристики, которая не так заметна вдоль остальной части спинного мозга. Несмотря на это, процедуры, описанные в этом протоколе, разработаны таким образом, чтобы быть адаптированными к операциям в различных областях спинного мозга. Пошаговые инструкции по обнаружению и идентификации сегментов спинного мозга с использованием ярко выраженных анатомических «ориентиров», идентифицируемых по поверхности кожи (рисунок 1B). Затем протокол разъясняет два метода хирургической имплантации: один предназначен для зондов, требующих прямого контакта со спинным мозгом, а другой — для зондов, которые могут не требовать прямого контакта. Описанные шаги предназначены для воспроизведения любым исследователем, имеющим подготовку в области хирургии выживания грызунов.
Этот протокол включает в себя пошаговые инструкции по имплантации оптоэлектронного устройства (18 мм x 13 мм) с прикрепленным гибким оптическим стержнем над шейным уровнем C5. Имплантируемое устройство закреплено подкожно каудально к C5 и состоит из микромасштабного светодиодного индикатора (μLED), который загорается при возникновении оптической стимуляции спинного мозга, обеспечивая живую обратную связь о функциональности устройства. Влияние имплантированного оптического стержня на естественную моторную функцию оценивали на грызунах, получивших имплантаты, и сравнивали с грызунами с фиктивными операциями. Результаты показывают, что зонды не оказывают негативного влияния на естественную функцию задних и передних конечностей животного через семь дней после имплантации.
Нейромодуляция и терапевтические вмешательства в спинной мозг часто требуют размещения зондов в точных, целевых сегментах 3,4,7,13. Учитывая присущую спинному мозгу подвижность, зонд должен быть надежно закреплен для проведения хронических исследований. В зависимости от конкретного применения, может быть важно контролировать, находится ли зонд в физическом контакте со спинным мозгом, или контакт можно сократить, чтобы уменьшить воспалительную реакцию тканей, когда это возможно. Поэтому описаны хирургические этапы для каждого из двух методов. В протоколе подробно описано, как разместить зонд в шейном сегменте спинного мозга в точке C5. Тем не менее, используя описанный ориентир для Т2 или Т10 спинного мозга, зонд может быть аналогичным образом размещен в точном месте над грудным или поясничным отделом, отсчитывая позвонки от Т2 или Т10 соответственно, после того, как они будут открыты. Кроме того, чтобы свести к минимуму повреждение тканей спинного мозга, мы закрепили корпус устройства, который часто больше и жестче по сравнению с подключенным зондом, в подкожном пространстве вдали от спинного мозга.
Существует несколько критических моментов при имплантации устройства, которое сопряжено с зондом. Во-первых, крайне важно определиться с местоположением корпуса устройства до цементирования зонда. Это обеспечивает оптимальное расстояние между наконечником щупа и корпусом устройства, чтобы снизить натяжение щупа, а также избежать увеличения длины щупа, которая может, например, привести к скручиванию или смещению щупа. По сути, цель состоит в том, чтобы убедиться, что длина зонда аналогична расстоянию от подкожного пространства, где размещается корпус устройства, до целевой области спинного мозга, где зонд цементируется. Проводя процедуры терминальной хирургии, в которых тестируются зонды различной длины, можно определить оптимальный размер для целевого сегмента.
Для сохранения стерильности с устройством следует обращаться осторожно, чтобы не допустить контакта с наружным слоем кожи во время введения в подкожный карман. Такой контакт может нарушить стерильность устройства, что потенциально может привести к послеоперационной инфекции. Кроме того, важно свести к минимуму величину усилия, прилагаемого к устройству при удержании его щипцами, чтобы предотвратить повреждение его покрытия, которое обычно представляет собой тонкий защитный, изолирующий и стерильный слой20,21. Снятие покрытия может резко сократить срок службы устройства, например, за счет короткого замыкания цепи, поражения животного электрическим током и/или провоцирования воспалительной реакции в организме. Обращение с устройством с помощью щипцов с пластиковым наконечником может помочь уменьшить такие осложнения.
При наложении швов на мягкие ткани важно избегать наложения швов на подкожную жировую клетчатку. Как было замечено в предварительных испытаниях, жировые прослойки не являются надежной точкой крепления для швов, поскольку они склонны к разрыву. Вместо этого корпус устройства пришивали к соседнему мышечному слою в подкожном пространстве с использованием нерассасывающихся швов для постоянного размещения устройства в теле. С другой стороны, при креплении зонда к остистым отросткам важно перед нанесением цемента убедиться, что участок, к которому крепится зонд, сухой. Влажная кость/зонд продлевает время отверждения и может привести к полному провалу процесса.
Существуют некоторые важные соображения, связанные с имплантируемым устройством, которые необходимо тщательно учесть перед операцией по имплантации. (1) Электрически активные части устройства должны быть герметизированы изоляционным пассивирующим слоем. Любая депривация в пассивирующем слое может привести к сбою в работе устройства. (2) Имплантат должен быть тщательно стерилизован в соответствии с протоколом содержания животных. (3) Соединение между устройством и нейронными зондами или стимулирующими хвостовиками должно быть надежно сформировано. Соединение будет проходить через повторяющиеся механические нагрузки из-за постоянных движений животного. (4) Нейронные зонды или стимулирующие хвостовики, прикрепленные к устройству, должны быть достаточно гибкими и растягивающимися, чтобы избежать защелкивания в различных точках.
Описанный протокол может быть распространен на имплантацию устройств в животные модели различных размеров. После определения анатомических ориентиров описанные хирургические методы могут быть методически настроены для закрепления любых нейронных зондов или стимулирующих хвостовиков на целевых сегментах спинного мозга и имплантации связанных с ними модулей управления. Однако, в зависимости от применения, различные устройства могут иметь различные размеры, материалы и толщину по сравнению с тем, которое имплантировано в этой статье; Например, устройства, подключенные к внешнему модулю управления, требуют дополнительных требований. Кроме того, следует отметить, что, хотя этот протокол предназначен для оптогенетической стимуляции, другие нейромодулирующие приложения, такие как доставка лекарств или электростимуляция/запись, требуют несколько иных хирургических процедур. В частности, эти приложения требуют субдуральной имплантации для обеспечения прямого контакта со спинным мозгом ниже твердой мозговой оболочки7. Тем не менее, для оптогенетики интимный контакт с тканью, как правило, не является необходимым, поскольку твердая мозговая оболочка грызуна не препятствует проникновению света, что позволяет размещать источники света эпидурально.
The authors have nothing to disclose.
S.S. частично финансируется за счет четырехлетней докторской стипендии Университета Британской Колумбии. A.M. частично поддерживается стипендией Канады для выпускников магистратуры Канадского института исследований в области здравоохранения (CIHR). D.S. признает финансирование от Стипендиальной премии Майкла Смита в области исследований в области здравоохранения Британской Колумбии. Эта работа была частично профинансирована Фондом правительства Канады «Новые рубежи в исследованиях – Трансформация» (NFRFT-2020-00238). Схема на рисунке 1 была сгенерирована с использованием Biorender.com, а 3D-модель была получена с разрешения sketchfab.com.
Adson Forceps | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Alm 3 Point Retractor | Fine Science Tools | 17010-10 | |
Buprenorphine / Vetergesic | CDMV | 124918 | Manufacturer provides at 0.3 mg/mL but must be diluted to 0.03 mg/kg for use in rats |
Chlorhexidine 2% Solution | Partnar | PCH-020 | |
Curved Long Hemostat Forceps | KaamKaaj Tools | 14.5 | Curved Long Hemostat Forceps with A Stainless Steel Ratchet Locking Tweezer |
CVD Parylene Machine: SCS Labcoter 2 | Specialty Coating Systems | PDS 2010 | |
Dental Cement – Catalyst | Parkell, Inc | S371 | |
Dental Cement – Metabond | Parkell, Inc | S398 | |
Dental Cement – Powder | Parkell, Inc | S396 | |
Forceps with Replaceable Plastic Tips | Fine Science Tools | 11980-13 | |
Friedman-Pearson Rongeurs | Fine Science Tools | 16121-14 | |
Isoflurane USP | Fresenius Kabi | CP0406V2 | Provided at 5% for induction and 2% for mainentance through precision vaporizer |
Isopropyl Alcohol 70% | McKesson | 350600 | |
Lacri-Lube Sterile Eye Ointment | Refresh | ||
Long Evans Rats | Charles River Laboratories | 6 | |
Low temperature solder paste | Chip Quik Inc. | 11.38 | |
Magnets | Radial Magnets, Inc. | 0.53 | Magnet Neodymium Iron Boron (NdFeB) N35 (3.00 mm x 1.00 mm) |
Olsen-Hegar Needle Holders with Suture Cutters | Fine Science Tools | 12002-12 | |
PDMS: SYLGARD 184 | Sigma Aldrich | 761036 | |
Scalpel Blades – #15 | Fine Science Tools | 10015-00 | |
Scalpel Handle – #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Solder flux | Chip Quik Inc. | 14.25 | |
Stereotaxic Frame | David Kopf Instruments | Model 900 | |
Sterile Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL-S | |
UV Flashlight | Vansky | 19.99 | |
Wireless Charger | Nilkin | NKT06 | |
Wireless Charging coil | TDK Corporation | WT202012-15F2-ID |
.