该方案提供了一种可重复的方法,用于可视化福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 组织标本中的基因扩增。
局灶性基因扩增,如染色体外 DNA (ecDNA),在癌症发展和治疗耐药性中起着重要作用。虽然基于测序的方法能够无偏倚地鉴定 ecDNA,但基于细胞遗传学的技术,如荧光 原 位杂交 (FISH),对于鉴定临床标本中的 ecDNA 来说仍然具有时间和成本效益。FISH 在福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 组织样本中的应用为检测扩增基因提供了一种独特的途径,特别是当活体样本无法进行核型检查时。然而,这种技术缺乏共识程序。该协议为进行 FISH 检测 FFPE 组织样品中的基因扩增(包括 ecDNA)提供了全面、完全优化的分步说明,这些挑战提出了该协议旨在克服和标准化的独特挑战。通过遵循该协议,研究人员可以可重复地获取高质量的成像数据以评估基因扩增。
局灶性癌基因扩增的研究至关重要,因为它会驱动癌症的形成、进展和治疗耐药性 1。重要的是,癌基因和免疫调节基因可能扩增为染色体外 DNA (ecDNA),其不对称遗传促进了癌症的遗传异质性 2,3。ecDNA 与治疗耐药性和不良临床结果有关 4,5,6。
福尔马林固定石蜡包埋 (FFPE) 组织标本是病理学实验室的大量档案资源,为回顾性研究提供了丰富的信息。然而,由于固定过程中的核酸片段化、降解和交联,通过 PCR 或测序从 FFPE 标本中提取分子数据具有挑战性7。在可用于 FFPE 组织分子分析的一系列技术中,荧光 原位 杂交 (FISH) 已被证明可有效显示特定 DNA 序列8。
尽管现代分子诊断技术取得了进步,但 FISH 在单细胞水平上可视化和定量基因扩增的能力为肿瘤发生和临床结果的分子机制提供了有价值的见解。通过使用与目标靶基因互补的荧光标记探针,FISH 可以方便地解析癌基因的定位,并可能推断出单个细胞内癌基因扩增(如 ecDNA)的形式,否则这是不可能的或昂贵的。因此,FISH 提供了一种评估肿瘤异质性和克隆进化的经济方法9。此外,自动化、成像和计算分析的进步促进了 FISH 数据的高通量分析,从而能够对大型组织队列中的基因扩增进行稳健的定量10。
然而,将 FISH 应用于 FFPE 组织存在固有的挑战,包括交联伪影和背景自发荧光。克服这些障碍需要仔细优化每个程序,以确保准确和可重复的结果。本文为应用 FISH 研究 FFPE 组织样品中的基因扩增提供了一个分步、完全优化的方案。使用靶向 ERBB2 (HER2) 基因位点的探针,我们证明 FISH 可以稳健地检测乳腺癌患者 FFPE 样本中的 ERBB2 扩增状态。甚至可以估计 ERBB2 是否被扩增为 ecDNA。通过综合现有文献和我们的实验结果,我们阐明了基于 FISH 的分析的方法学考虑、技术挑战和潜在陷阱。我们还讨论了基因扩增分析在各种癌症类型中的临床相关性,强调了其预后意义和个性化治疗策略的潜力。
综上所述,本文强调了 FISH 作为研究 FFPE 组织标本中基因扩增的宝贵工具的重要性,为肿瘤生物学提供了无与伦比的见解,并指导了肿瘤学的临床决策。随着与互补分子检测的不断完善和整合,基于 FISH 的分析有望进一步增强我们对癌症发病机制的理解,并在精准医学时代改善患者的预后。
FISH 是一种快速且经济实惠的细胞遗传学诊断选择。特别是在确定癌症中是否存在 ecDNA 时,FISH 证据仍然是金标准1。FFPE 组织中的 FISH 可以快速确定患者活检标本中的基因状态,从而可以更快地诊断和跟踪整个疾病进展过程中的变化。该技术对于测试已经收集用于病理学的临床样本特别有价值。
该协议涉及几个关键步骤。第一步是彻底脱蜡。残留的石蜡会破坏 FISH 杂交。如果样品在第 2 步后仍然呈蜡状,则应再次用新鲜的二甲苯或其替代品处理。
其次,蛋白质提取和消化至关重要。这些过程不仅增强了 DNA 对 FISH 探针的可及性,还显着减少了自发荧光。该方案包括三个脱蛋白步骤。虽然用 0.2 N HCl 和 10 mM 柠檬酸处理很简单,但蛋白酶 K 消化可能需要优化。过度消化是使用蛋白酶 K 时最常见的错误,导致细胞核呈晕状。缩短消化时间将改善细胞核形态。此外,建议不要同时消解 4 个以上的样品,以尽量减少第一个样品和最后一个样品之间的时间差。需要注意的是,即使是完整的细胞核也可能在高倍率和高分辨率显微镜下表现为光晕。这是因为原子核不在同一焦平面上。因此,建议采用多个 Z 堆栈并执行最大投影来检查核形态。
最后,建议淬灭自发荧光。尽管酸提取和蛋白酶 K 消化可以显著降低蛋白质衍生的背景,但荧光代谢物仍可能影响成像质量。
虽然 FISH 在识别局灶性基因扩增方面提供了无与伦比的空间分辨率,但它也有局限性。首先,与基于 PCR 或下一代测序 (NGS) 的方法相比,含量和通量较低。通常,无需专用设备,即可将 1 到 3 个不同颜色的 FISH 探针应用于单个玻片。尽管如此,自动化技术的进步使高内涵和高通量 FISH(例如 原位 测序21)成为可能。其次,FISH 探针设计需要先验信息。识别癌症中复发性局灶性扩增事件的持续努力使创建用于实验室和临床应用的预设计 FISH panel 成为可能。例如,MYC 家族癌基因在小细胞肺癌中经常被扩增为 ecDNA,以介导化疗耐药性。因此,靶向 MYC 、 MYCL 和 MYCN 基因的 FISH panel 可以加快活检中治疗反应的确定。相比之下,NGS 可以更公正地筛选目标基因。然而,在基于 NGS 的技术中,只有具有计算成本高昂的分析的全基因组测序22 才能表征 ecDNA。
总之,我们为研究 FFPE 样品中的局灶性基因扩增提供了稳健而全面的说明。通过检查 FISH 信号模式,可以明确地清楚基因位点是否以及如何被扩增。我们预计将机器学习集成到间期细胞核的图像分析23 中,以提取有关拷贝数和扩增形式(染色体或 ecDNA)的细胞遗传学信息,从而简化分子诊断过程并增强我们对癌症发病机制的理解。
The authors have nothing to disclose.
SW 是德克萨斯州癌症预防和研究所 (RR210034) 的学者并得到他们的支持
DAPI | Tocris Bioscience | 5748 | Nucleus staining |
Dextran sulfate 50% solution | EMD Millipore Sigma | S4030 | Probe hybridization buffer |
ERBB2 (HER2) FISH Probe | Empire Genomics | ERBB2-20-RE | FISH probe |
Ethanol | Decon Labs | 2716 | Dehydrating and hydrating tissue |
Formamide | Thermo Scientific Chemicals | 205821000 | Probe hybridization buffer |
Formula 83 (Xylene substitute) | CBG Biotech | CH0104A | Removing paraffin |
Hydrochloric acid | Fisher Chemical | A144-500 | Sample pretreatment |
IGEPAL CA-630 | Thermo Scientific Chemicals | J19628K2 | Slide washing |
Proclin 300 | Sigma-Aldrich | 48914-U | Preservative for SSC buffer (optional) |
Proteinase K (800 units/mL) | New England Biolabs | P8107S | Protein digestion |
RNase A (20 mg/mL) | New England Biolabs | T3018L | Probe hybridization buffer |
Slide Moat Hybridization System | Boekel Scientific | 280001 | Sample denature and hybridization. Alternative hot plates are acceptable. |
Sodium chloride | Fisher Chemical | S2713 | SSC buffer |
Sodium citrate dihydrate | Fisher BioReagents | FLBP3271 | SSC buffer and sample pretreatment |
Tris-EDTA (TE) buffer | Fisher BioReagents | BP2473500 | Proteinase K digestion buffer |
Tween-20 | Fisher BioReagents | BP337-500 | Probe hybridization buffer |
Vectashield antifade mounting media | Vector Laboratories | H190010 | Slide mounting |
Vector TrueVIEW | Vector Laboratories | SP8400 | Autofluorescence quenching kit |
.