Summary

Ácido retinóico encapsulado em nanoemulsão catiônica como adjuvante para promover respostas sistêmicas e mucosas específicas do OVA

Published: February 23, 2024
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Summary

Neste protocolo, desenvolvemos um ácido retinóico (AR) encapsulado em nanoemulsão catiônica para ser usado como adjuvante para promover respostas sistêmicas e mucosas específicas do antígeno. Ao adicionar o RA aprovado pela FDA à nanoemulsão, a sIgA específica do antígeno foi promovida na vagina e no intestino delgado após a injeção intramuscular da nanoemulsão.

Abstract

As nanoestruturas catiônicas surgiram como um adjuvante e sistema de entrega de antígenos que aumenta a maturação das células dendríticas, a geração de ROS e a captação de antígenos e, em seguida, promove respostas imunes específicas do antígeno. Nos últimos anos, o ácido retinóico (AR) tem recebido atenção crescente devido ao seu efeito na ativação da resposta imune da mucosa; no entanto, para usar a AR como adjuvante da mucosa, é necessário resolver o problema de sua dissolução, carregamento e entrega. Aqui, descrevemos um sistema de entrega de ácido retinóico encapsulado em nanoemulsão catiônica (CNE-RA) composto pelo lipídio catiônico 1,2-dioleoil-sn-glicero-3-fosfocolina (DOTAP), ácido retinóico, esqualeno como fase oleosa, polissorbato 80 como surfactante e trioleato de sorbitano 85 como co-surfactante. Suas propriedades físicas e químicas foram caracterizadas usando espalhamento dinâmico de luz e um espectrofotômetro. A imunização de camundongos com a mistura de antígeno (ovalbumina, OVA) e CNE-RA elevou significativamente os níveis de imunoglobulina A secretora anti-OVA (sIgA) no fluido de lavagem vaginal e no fluido de lavagem do intestino delgado de camundongos em comparação com OVA sozinho. Este protocolo descreve um método detalhado para a preparação, caracterização e avaliação do efeito adjuvante do CNE-RA.

Introduction

Os adjuvantes são frequentemente usados para aumentar a eficácia de uma vacina, estimulando o sistema imunológico a responder mais fortemente à vacina, aumentando assim a imunidade a um patógeno específico1. O adjuvante de nanoemulsão (NE) refere-se a um sistema de dispersão coloidal com estabilidade termodinâmica, emulsificando uma certa proporção da fase oleosa e da fase aquosa para produzir uma emulsão na forma de água em óleo (A/O) ou óleo em água (O/A)2. O adjuvante de nanoemulsão O/A pode produzir citocinas e quimiocinas no local da injeção, induzir a rápida agregação e proliferação de células imunes importantes, como monócitos, neutrófilos e eosinófilos, e aumentar a resposta imune e melhorar a imunogenicidade dos antígenos3. Atualmente, três adjuvantes de nanoemulsão (MF59, AS03 e AF03) foram licenciados para uso em vacinas e têm demonstrado boa segurança e eficácia4.

No entanto, a imunidade da mucosa tem sido pouco abordada pelas formulações adjuvantes atualmente licenciadas na vacinação parenteral convencional5. Foi relatado que o ácido retinóico (AR) induz o homing intestinal das células imunes, mas sua baixa polaridade, baixa solubilidade em água e baixa estabilidade térmica e luminosa limitam seu uso para vacinação entérica robusta. As nanoemulsões oferecem oportunidades para aumentar a biodisponibilidade de medicamentos altamente lipofílicos, e o núcleo de óleo dos adjuvantes de emulsão O/A é adequado para dissolver substâncias apolares, como o RA6. Portanto, as nanoemulsões podem ser usadas como carreadores para AR, a fim de alcançar o efeito de resposta dupla da imunidade sistêmica e da imunidade da mucosa.

Em comparação com os sistemas de entrega neutros ou aniônicos, os sistemas de entrega catiônica têm capacidades relativamente eficientes de encapsulamento e entrega de antígenos, o que pode aumentar a imunogenicidade dos antígenos 7,8,9. A carga de superfície catiônica de uma variedade de sistemas adjuvantes é importante para seus efeitos adjuvantes 10,11,12. A carga catiônica é um fator importante no prolongamento da retenção da vacina no local da injeção, aumentando a apresentação do antígeno e prolongando a estimulação da imunidade celular no organismo12.

Com base nas considerações acima, desenvolvemos uma nanoemulsão catiônica para co-fornecer efetivamente RA e antígenos. O tamanho de partícula e o potencial zeta da nanoemulsão foram determinados usando espalhamento dinâmico de luz (DLS), e as respostas imunes sistêmicas e mucosas da nanoemulsão combinada com OVA foram avaliadas por injeção intramuscular13.

Protocol

Os experimentos com animais foram realizados de acordo com o Guia para o Uso e Cuidados com Animais de Laboratório e aprovados pelo Comitê de Ética e Bem-Estar de Animais de Laboratório da Terceira Universidade Médica Militar. 1. Preparação de nanoemulsões (EN) Para a preparação da fase aquosa, dissolver 0,15 g de polissorbato 80 em 28,2 ml de solução salina tamponada com fosfato (PBS), agitando a 40 °C. Para a preparação da fase oleosa, use …

Representative Results

No total, quatro formulações de nanoemulsão foram preparadas e caracterizadas por seu tamanho de partícula (Figura 1), seu potencial zeta e sua eficiência de encapsulação, conforme apresentado na Tabela 2. O tamanho da partícula foi concentrado em torno de 160-190nm e a adição de DOTAP reverteu o potencial Zeta da nanoemulsão. A IgG sérica específica para OVA e seu nível de anticorpos de subgrupo no soro foram detectados 2 semanas após a terceira imunização….

Discussion

Neste protocolo, desenvolvemos um ácido retinóico encapsulado em nanoemulsão catiônica para ser usado como adjuvante para promover respostas sistêmicas e mucosas específicas do antígeno. Comparado aos adjuvantes NE tradicionais, tem as duas vantagens a seguir. Em primeiro lugar, em geral, a superfície das EN O/A tem uma carga negativa elevada, o que dificulta a carga direta dos antigénios. As EN catiônicas podem efetivamente adsorver antígenos peptídicos ou proteicos e aumentar a imunogenicidade específica. …

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi financiado pelo Programa-Chave da Fundação de Ciências Naturais de Chongqing (nº cstc2020jcyj-zdxmX0027) e pelo Projeto da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (nº 32270988).

Materials

1640 medium GIBCO, USA C11875500BT
450 nm Stop Solution for TMB Substrate Abcam ab171529-1000 mL
Automated Cell Counter Countstar, China IC1000
BSA Sigma-Aldrich, USA B2064-100G
Centrifuge 5810 R Eppendorf, Germany 5811000398
Danamic Light Scattering Malvern Zetasizer Nano S90
DOTAP CordenPharma, Switzerland O02002
ELISpot Plus: Mouse IFN-gamma (ALP) mabtech ab205719
Fetal Bovine Serum GIBCO, USA 10099141C
Full-function Microplate Reader Thermo Fisher Scientific, USA VL0000D2
Goat Anti-Mouse IgG1(HRP) Abcam ab97240-1mg
Goat Anti-Mouse IgA alpha chain (HRP) Abcam ab97235-1mg
Goat Anti-Mouse IgG H&L (HRP) Abcam Ab205720-500ug
Goat Anti-Mouse IgG2a heavy chain (HRP) Abcam ab97245-1mg
High pressure homogenizer ATS
MONTANE 85 PPI SEPPIC, France L12910
MONTANOX 80 PPI SEPPIC, France 36372K
OVA257–264 Shanghai Botai Biotechnology Co., Ltd. NA
OVA323-339 Shanghai Botai Biotechnology Co., Ltd. NA
Phosphate buffer saline ZSGB-bio ZLI-9061
Red Blood Cell Lysis Buffer Solarbio, China R1010
retinoic acid TCI, Japan TCI-R0064-5G
Squalene Sigma, USA S3626
T10 basic Ultra-Turrax IKA, Germany
TMB ELISA Substrate Abcam ab171523-1000ml
trypsin inhibitor Diamond A003570-0100
Tween-20 Macklin, China 9005-64-5
Ultraviolet spectrophotometer Hitachi U-3900

Referenzen

  1. Pulendran, B., Arunachalam, P. S., O’Hagan, D. T. Emerging concepts in the science of vaccine adjuvants. Nat Rev Drug Discov. 20 (6), 454-475 (2021).
  2. Pandey, P., Gulati, N., Makhija, M., Purohit, D., Dureja, H. Nanoemulsion: A novel drug delivery approach for enhancement of bioavailability. Recent Pat Nanotech. 14 (4), 276-293 (2020).
  3. Chen, W. L., et al. Disintegration and cancer immunotherapy efficacy of a squalane-in-water delivery system emulsified by bioresorbable poly(ethylene glycol)-block-polylactide. Biomaterials. 35 (5), 1686-1695 (2014).
  4. Iwasaki, A., Omer, S. B. Why and how vaccines work. Cell. 183 (2), 290-295 (2020).
  5. Spadoni, I., Fornasa, G., Rescigno, M. Organ-specific protection mediated by cooperation between vascular and epithelial barriers. Nat Rev Immunol. 17 (12), 761-773 (2017).
  6. Singh, Y., et al. Nanoemulsion: Concepts, development and applications in drug delivery. J Cont Release. 252, 28-49 (2017).
  7. Yan, W. L., Chen, W. S., Huang, L. Mechanism of adjuvant activity of cationic liposome: Phosphorylation of a MAP kinase, ERK and induction of chemokines. Mol Immunol. 44 (15), 3672-3681 (2007).
  8. Korsholm, K. S., et al. The adjuvant mechanism of cationic dimethyldioctadecylammonium liposomes. Immunology. 121 (2), 216-226 (2007).
  9. Agger, E. M., et al. Cationic liposomes formulated with synthetic mycobacterial cordfactor (CAF01): A versatile ddjuvant for vaccines with different immunological requirements. Plos One. 3 (9), e3116 (2008).
  10. Slutter, B., et al. Nasal vaccination with N-trimethyl chitosan and PLGA based nanoparticles: Nanoparticle characteristics determine quality and strength of the antibody response in mice against the encapsulated antigen. Vaccine. 28 (38), 6282-6291 (2010).
  11. Nochi, T., et al. Nanogel antigenic protein-delivery system for adjuvant-free intranasal vaccines. Nat Mater. 9 (8), 685-685 (2010).
  12. Henriksen-Lacey, M., et al. Liposomal cationic charge and antigen adsorption are important properties for the efficient deposition of antigen at the injection site and ability of the vaccine to induce a CMI response. J Control Release. 145 (2), 102-108 (2010).
  13. Zhong, X. F., et al. Nanovaccines mediated subcutis-to-intestine cascade for improved protection against intestinal infections. Small. 18 (1), e2105530 (2022).
  14. Mora, J. R., et al. Generation of gut-homing IgA-secreting B cells by intestinal dendritic cells. Science. 314 (5802), 1157-1160 (2006).
  15. Iwata, M., et al. Retinoic acid imprints gut-homing specificity on T cells. Immunity. 21 (4), 527-538 (2004).
  16. Hammerschmidt, S. I., et al. Retinoic acid induces homing of protective T and B cells to the gut after subcutaneous immunization in mice. J Clin Invest. 121 (8), 3051-3061 (2011).
  17. Burger, C., Shahzad, Y., Brümmer, A., Gerber, M., du Plessis, J. Traversing the skin barrier with nano-emulsions. Curr Drug Deliv. 14 (4), 458-472 (2017).
  18. Lodaya, R. N., et al. Formulation design, optimization and evaluations of an α-tocopherol-containing self-emulsified adjuvant system using inactivated influenza vaccine. J Cont Release. 316, 12-21 (2019).
  19. Carmona-Ribeiro, A. M., Pérez-Betancourt, Y. Cationic nanostructures for vaccines design. Biomimetics. 5 (3), 32 (2020).
  20. Lam, K., et al. trialkyl ionizable lipids are versatile lipid-nanoparticle components for therapeutic and vaccine applications. Adv Mater. 35 (15), e2209624 (2023).
  21. Nie, T. Q., et al. Surface coating approach to overcome mucosal entrapment of DNA nanoparticles for oral gene delivery of glucagon-like peptide 1. Acs Appl Mater Inter. 11 (33), 29593-29603 (2019).
  22. Lou, G., et al. Delivery of self-amplifying mRNA vaccines by cationic lipid nanoparticles: The impact of cationic lipid selection. J Cont Release. 325, 370-379 (2020).

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Diesen Artikel zitieren
Li, G., Li, H., Jin, Z., Feng, R., Deng, Y., Cheng, H., Li, H. Cationic Nanoemulsion-Encapsulated Retinoic Acid as an Adjuvant to Promote OVA-Specific Systemic and Mucosal Responses. J. Vis. Exp. (204), e66270, doi:10.3791/66270 (2024).

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