Summary

Affinitetsoprensning af et fibrinolytisk enzym fra Sipunculus nudus

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Her præsenterer vi en affinitetsrensningsmetode af et fibrinolytisk enzym fra Sipunculus nudus , der er enkelt, billigt og effektivt.

Abstract

Det fibrinolytiske enzym fra Sipunculus nudus (sFE) er et nyt fibrinolytisk middel, der både kan aktivere plasminogen i plasmin og nedbryde fibrin direkte, hvilket viser store fordele i forhold til traditionelle trombolytiske midler. På grund af manglen på strukturel information er alle rensningsprogrammer for sFE imidlertid baseret på flertrinskromatografirensninger, som er for komplicerede og dyre. Her udvikles en affinitetsrensningsprotokol for sFE for første gang baseret på en krystalstruktur af sFE; det omfatter fremstilling af råprøven og lysin/arginin-agarosematrix-affinitetskromatografikolonnen, affinitetsoprensning og karakterisering af den rensede sFE. Efter denne protokol kan et parti sFE renses inden for 1 dag. Desuden øges renheden og aktiviteten af den rensede sFE til henholdsvis 92% og 19.200 E / ml. Dette er således en enkel, billig og effektiv tilgang til sFE-rensning. Udviklingen af denne protokol er af stor betydning for den videre anvendelse af sFE og andre lignende midler.

Introduction

Trombose er en stor trussel mod folkesundheden, især efter den globale covid-19-pandemi 1,2. Klinisk er mange plasminogenaktivatorer (PA’er), såsom vævstype plasminogenaktivator (tPA) og urokinase (UK), blevet anvendt i vid udstrækning som trombolytiske lægemidler. PA’er kan aktivere patienternes plasminogen til aktivt plasmin for at nedbryde fibrin. Således er deres trombolytiske effektivitet stærkt begrænset af patienternes plasminogenstatus 3,4. Fibrinolytiske midler, såsom metalloproteinaseplasmin og serinplasmin, er en anden type klinisk trombolytisk lægemiddel, der også inkluderer fibrinolytiske enzymer (FE), såsom plasmin, som kan opløse blodpropper direkte, men hurtigt inaktiveres af forskellige plasminhæmmere5. Efterfølgende er der rapporteret om en ny type fibrinolytisk middel, der kan opløse tromben ved ikke kun at aktivere plasminogenet i plasmin, men også nedbryde fibrinet direkte 6-det fibrinolytiske enzym fra den gamle jordnøddeorm Sipunculus nudus (sFE)6. Denne bifunktion giver sFE andre fordele i forhold til traditionelle trombolytiske lægemidler, især med hensyn til unormal plasminogenstatus. Sammenlignet med andre bifunktionelle fibrinolytiske midler 7,8,9 viser sFE flere fordele, herunder sikkerhed, i forhold til ikke-fødevareafledte midler til lægemiddeludvikling, især for orale lægemidler. Dette skyldes, at biosikkerheden og biokompatibiliteten af Sipunculus nudus er veletableret10.

I lighed med de andre naturlige fibrinolytiske midler isoleret fra mikroorganismer, regnorme og svampe er oprensningen af sFE fra S. nudus meget kompliceret og inkluderer flere trin, såsom vævshomogenisering, ammoniumsulfatudfældning, afsaltning, anionbytterkromatografi, hydrofob interaktionskromatografi og molekylær sigtning10,11,12. Et sådant rensningssystem afhænger ikke kun af dygtige færdigheder og dyre materialer, men kræver også flere dage for at fuldføre hele proceduren. Derfor er et simpelt rensningsprogram af sFE af stor betydning for den videre udvikling af sFE. Heldigvis to krystaller af sFE (PDB: 8HZP; FBF: 8HZO) er opnået med succes (se supplerende fil 1 og supplerende fil 2). Gennem strukturel analyse og molekylære dockingeksperimenter fandt vi, at den katalytiske kerne i sFE specifikt kunne binde til mål, der indeholder arginin eller lysinrester.

Heri blev et affinitetsrensningssystem foreslået for første gang baseret på krystalstrukturen af sFE. Ved at følge denne protokol kunne meget ren og meget aktiv sFE renses fra de rå ekstrakter i et enkelt affinitetsrensningstrin. Den protokol, der udvikles her, er ikke kun vigtig for den store fremstilling af sFE, men kan også anvendes til oprensning af andre fibrinolytiske midler.

Protocol

1. Forberedelse Prøve behandlingDissekere forsigtigt frisk S. nudus (100 g) og saml tarmen og dens indre væske. Tilsæt 300 ml Tris-HCl-buffer (0,02 M, pH 7,4) til homogenisering (1.000 o / min, 60 s). Frys-optø homogenatet 3x. Prøven centrifugeres (10,956 × g, 0,5 timer, 4 °C), og supernatanten opsamles. Prøven opbevares ved 4 °C, indtil den anvendes yderligere. Protein udfældningSupernatanten bla…

Representative Results

Efter denne protokol blev råvævslysater ekstraheret, arginin-agarosematrix og lysin-agarosematrixaffinitetskromatografikolonner blev bygget, renset sFE blev opnået, og renheden og fibrinolytisk aktivitet af den rensede sFE blev målt med henholdsvis SDS-PAGE og fibrinplader. Efter centrifugering var den opsamlede supernatant en gennemsigtig, solbrun tyktflydende væske. Udfældningen begyndte, da denne supernatant blev blandet med mættet ammoniumsulfatopløsning (ni rumfang). Efter at have…

Discussion

På grund af utilgængeligheden af den nøjagtige gensekvens af sFE blev den aktuelt anvendte sFE ekstraheret fra frisk S. nudus14. Desuden var rensningsprocedurerne for sFE rapporteret i litteraturen komplicerede og dyre, da de var baseret på nogle generelle træk ved sFE, såsom molekylvægt, isoelektrisk punkt, ionstyrke og polaritet15,16. Ingen affinitetsrensningsprotokol for sFE er blevet rapporteret til dato. I denne unders…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev finansieret af Science and Technology Bureau of Xiamen City (3502Z20227197) og Science and Technology Bureau of Fujian-provinsen (nr. 2019J01070, nr. 2021Y0027).

Materials

30% Acrylamide-Bisacrylamide (29:1) Biosharp
2-Mercaptoethanol Solarbio
Agarose G-10 Biowest
Ammonium persulfate SINOPHARM
Ammonium sulfate SINOPHARM
Arginine-Sepharose 4B Solarbio Arginine-agarose matrix
Bromoxylenol Blue (BPB) Solarbio
Fast Silver Stain Kit Beyotime
Fibrinogen Merck
Glycine Solarbio
Hydrochloric acid SINOPHARM
Kinase RHAWN
Lysine-Sepharose 4B Solarbio Lysine-agarose matrix
N,N,N',N'-Tetramethylethylenediamine (TEMED) Sigma-Aldrich
Prestained Color Protein Marker (10-170 kD) Beyotime
Sodium chloride SINOPHARM
Sodium Dodecyl Sulfonate (SDS) Sigma-Aldrich
Sodium hydroxide SINOPHARM
Thrombin Meilunbio
Tris(Hydroxymethyl) Aminomethane Solarbio
Tris(Hydroxymethyl) Aminomethane Hydrochloride Solarbio
Equipment
AKT Aprotein Purification System pure GE
Automatic Vertical Pressure Steam Sterilizer MLS-3750 SANYO
Chemiluminescence Imaging System GE
Constant Flow Pump BT-100 QITE
Constant Temperature Incubator JINGHONG
Desktop Refrigerated Centrifuge 3-30KS SIGMA
DHG Series Heating and Drying Oven DGG-9140AD SENXIN
Electric Glass Homogenizer DY89-II SCIENTZ
Electronic Analytical Balance DENVER
Electro-Thermostatic Water Bath DK-S12 SENXIN
Horizontal Decolorization Shaker Kylin-Bell
Ice Machine AF 103 Scotsman
KQ-500E Ultrasonic Cleaner ShuMei
Magnetic Stirrer Zhi wei
Micro Refrigerated Centrifuge H1650-W Cence
Microwave Oven Galanz
Milli-Q Reference Millipore
Pipettor Thermo Fisher Scientific
Precision Desktop pH Meter Sartorious
Small-sized Vortex Oscillator Kylin-Bell
Vertical Electrophoresis System Bio-Rad
Consumable Material 
200 µL PCR Tube (200 µL) Axygene
Centrifuge Tube (1.5 mL) Biosharp
Centrifuge Tube (5 mL) Biosharp
Centrifuge Tube (50 mL) NEST
Centrifuge Tube (7 mL) Biosharp
Culture Dish (60 mm) NEST
Filter Membrane (0.22 µm) Millex GP
Parafilm Bemis
Pipette Tip (1 mL ) KIRGEN
Pipette Tip (10 µL) Axygene
Pipette Tip (200 µL) Axygene
Special Indicator Paper TZAKZY
Ultra Centrifugal Filter Unit (15 mL 3 KDa) Millipore
Ultra Centrifugal Filter Unit (4 mL 3 KDa) Millipore
Universal pH Indicator SSS Reagent

Referenzen

  1. Rosell, A., et al. Patients with COVID-19 have elevated levels of circulating extracellular vesicle tissue factor activity that is associated with severity and mortality-brief report. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 41 (2), 878-882 (2021).
  2. Schultz, N. H., et al. Thrombosis and thrombocytopenia after ChAdOx1 nCoV-19 vaccination. The New England. Journal of Medicine. 384 (22), 2124-2130 (2021).
  3. von Kaulla, K. N. Urokinase-induced fibrinolysis of human standard clots. Nature. 184 (4695), 1320-1321 (1959).
  4. Van de Werf, F., et al. Coronary thrombolysis with tissue-type plasminogen activator in patients with evolving myocardial infarction. The New England Journal of Medicine. 310 (10), 609-613 (1984).
  5. Schaller, J., Gerber, S. S. The plasmin-antiplasmin system: structural and functional aspects. Cellular and Molecular Life Sciences. 68 (5), 785-801 (2011).
  6. Ge, Y. -. H., et al. A novel antithrombotic protease from marine worm Sipunculus nudus. International Journal of Molecular Sciences. 19 (10), 3023 (2018).
  7. Liu, X., et al. Purification and characterization of a novel fibrinolytic enzyme from culture supernatant of Pleurotus ostreatus. Journal of Microbiology and Biotechnology. 24 (2), 245-253 (2014).
  8. Choi, J. -. H., Sapkota, K., Kim, S., Kim, S. -. J. Starase: A bi-functional fibrinolytic protease from hepatic caeca of Asterina pectinifera displays antithrombotic potential. Biochimie. 105, 45-57 (2014).
  9. Liu, H., et al. A novel fibrinolytic protein From Pheretima vulgaris: purification, identification, antithrombotic evaluation, and mechanisms investigation. Frontiers in Molecular Biosciences. 8, 772419 (2022).
  10. Wu, Y., et al. Antioxidant, hypolipidemic and hepatic protective activities of polysaccharides from Phascolosoma esculenta. Marine Drugs. 18 (3), 158 (2020).
  11. . Preparation and application of natural fibrinolytic enzyme from peanut worm Available from: https://patents.google.com/patent/CN109295042A/en (2019)
  12. Li, W., Yuan, M., Wu, Y., Xu, R. Identification of genes expressed differentially in female and male gametes of Sipunculus nudus. Aquaculture Research. 51 (9), 3780-3789 (2020).
  13. Ossipow, V., Laemmlii, U. K., Schibler, U. A simple method to renature DNA-binding proteins separated by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. Nucleic Acids Research. 21 (25), 6040-6041 (1993).
  14. Hsu, T., Ning, Y., Gwo, J., Zeng, Z. DNA barcoding reveals cryptic diversity in the peanut worm Sipunculus nudus. Molecular Ecology Resources. 13 (4), 596-606 (2013).
  15. Abiko, Y., Iwamoto, M., Shimizu, M. Plasminogen-plasmin system. I. Purification and properties of human plasminogen. The Journal of Biochemistry. 64 (6), 743-750 (1968).
  16. Abiko, Y., Iwamoto, M., Shimizu, M. Plasminogen-plasmin system. II. Purification and properties of human plasmin. The Journal of Biochemistry. 64 (6), 751-757 (1968).
  17. Wiman, B. Affinity-chromatographic purification of human α2-antiplasmin. The Biochemical Journal. 191 (1), 229-232 (1980).
  18. Sandbjerg Hansen, M., Clemmensen, I. Partial purification and characterization of a new fast-acting plasmin inhibitor from human platelets. Evidence for non-identity with the known plasma proteinase inhibitors. The Biochemical Journal. 187 (1), 173-180 (1980).
  19. Pietrocola, G., Rindi, S., Nobile, G., Speziale, P. Purification of human plasma/cellular fibronectin and fibronectin fragments. Fibrosis. 1627, 309-324 (2017).
  20. Nabiabad, H. S., Yaghoobi, M. M., Javaran, M. J., Hosseinkhani, S. Expression analysis and purification of human recombinant tissue type plasminogen activator (rt-PA) from transgenic tobacco plants. Preparative Biochemistry and Biotechnology. 41 (2), 175-186 (2011).
  21. Shearin, T. V., Pizzo, S. V., Gonzalez-Gronow, M. Molecular abnormalities of human plasminogen isolated from synovial fluid of rheumatoid arthritis patients. Journal of Molecular Medicine. 75 (5), 378-385 (1997).
check_url/de/65631?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Tang, M., Lin, H., Hu, C., Yan, H. Affinity Purification of a Fibrinolytic Enzyme from Sipunculus nudus. J. Vis. Exp. (196), e65631, doi:10.3791/65631 (2023).

View Video