Aqui, apresentamos um protocolo para utilizar software de visão mecânica para estabilizar processos dinâmicos durante imagens de TEM, enquanto indexamos simultaneamente vários fluxos de metadados para cada imagem em uma linha do tempo navegável. Demonstramos como esta plataforma permite a calibração automatizada e o mapeamento da dose de elétrons ao longo de um experimento.
A microscopia eletrônica de transmissão (MET) permite que os usuários estudem materiais em sua escala atômica fundamental. Experimentos complexos geram rotineiramente milhares de imagens com inúmeros parâmetros que exigem análises demoradas e complicadas. A sincronicidade AXON é uma solução de software de sincronização de visão mecânica (MVS) projetada para abordar os pontos problemáticos inerentes aos estudos de TEM. Uma vez instalado no microscópio, ele permite a sincronização contínua de imagens e metadados gerados pelo microscópio, detector e sistemas in situ durante um experimento. Essa conectividade permite a aplicação de algoritmos de visão mecânica que aplicam uma combinação de correções espaciais, de feixe e digitais para centralizar e rastrear uma região de interesse dentro do campo de visão e fornecer estabilização imediata da imagem. Além da melhora substancial na resolução proporcionada por essa estabilização, a sincronização de metadados permite a aplicação de algoritmos computacionais e de análise de imagens que calculam variáveis entre imagens. Esses metadados calculados podem ser usados para analisar tendências ou identificar áreas-chave de interesse dentro de um conjunto de dados, levando a novos insights e ao desenvolvimento de recursos de visão mecânica mais sofisticados no futuro. Um desses módulos que se baseia nesses metadados calculados é a calibração e o gerenciamento da dose. O módulo de dose fornece calibração, rastreamento e gerenciamento de última geração da fluência eletrônica (e-/Å 2·s-1) e da dose cumulativa (e–/Å2) que é entregue a áreas específicas da amostra em uma base pixel a pixel. Isso permite uma visão abrangente da interação entre o feixe de elétrons e a amostra. A análise de experimentos é simplificada por meio de um software de análise dedicado no qual conjuntos de dados que consistem em imagens e metadados correspondentes são facilmente visualizados, classificados, filtrados e exportados. Combinadas, essas ferramentas facilitam colaborações eficientes e análises experimentais, incentivam a mineração de dados e aprimoram a experiência de microscopia.
Os microscópios eletrônicos de transmissão (TEMs) e suas capacidades se beneficiaram enormemente dos avanços em câmeras, detectores, porta-amostras e tecnologias de computação. No entanto, esses avanços são dificultados por fluxos de dados desconectados, limitações da operação humana e análise de dados pesada 1,2. Além disso, experimentos in situ e operacionais adaptam METs em laboratórios de nanoescala em tempo real, permitindo que amostras sejam estudadas em ambientes gasosos ou líquidos, aplicando simultaneamente uma gama de estímulos externos 3,4,5. A adoção de fluxos de trabalho tão complexos apenas ampliou essas limitações, e o aumento resultante do tamanho e da complexidade desses fluxos de dados é uma área de crescente preocupação. Assim, há uma ênfase crescente na utilização da capacidade de ação da máquina para encontrar, acessar, interoperar e reutilizar dados, uma prática conhecida como princípios FAIR6. A publicação de dados de pesquisa de acordo com o conceito de princípios FAIR tem recebido atenção favorável de agências governamentais em todo o mundo7,8, e a aplicação dos princípios FAIR usando software de visão mecânica é um passo fundamental para sua adoção.
Uma plataforma de software de sincronização de visão mecânica (MVS) foi desenvolvida em resposta aos pontos problemáticos específicos inerentes à realização e análise de experimentos complexos e pesados em metadados (particularmente experimentos in situ e operacionais)9. Uma vez instalado no TEM, o software MVS conecta, integra e se comunica com a coluna do microscópio, detectores e sistemas integrados in situ . Isso permite coletar continuamente imagens e alinhá-las com seus metadados experimentais, formando um banco de dados abrangente pesquisável, uma linha do tempo do experimento do início ao fim (Figura 1). Essa conectividade permite que o software MVS aplique algoritmos que rastreiam e estabilizam de forma inteligente uma região de interesse (ROI), mesmo quando as amostras estão passando por mudanças morfológicas. O software aplica ajustes em correções de estágio, feixe e digital conforme necessário para estabilizar o ROI por meio de suas funções Drift Control e Focus Assist . Além de enriquecer as imagens com os metadados brutos produzidos a partir dos diferentes sistemas experimentais, o software pode produzir novos metadados computacionais usando algoritmos de análise de imagens para calcular variáveis entre imagens, o que permite corrigir automaticamente desvios de amostras ou mudanças de foco.
As imagens de ETM e seus metadados associados, coletados por meio do software MVS, são organizados como uma linha do tempo experimental que pode ser aberta e visualizada por qualquer pessoa por meio da versão off-line e gratuita do software de análise, Studio (doravante denominado software de análise)10. Durante um experimento, o software MVS sincroniza e grava três tipos de imagens da câmera ou detector do microscópio, que são exibidas no topo da linha do tempo abaixo do visualizador de imagens: aquisição única (imagens individuais de aquisição única adquiridas diretamente do software TEM), raw (imagens do detector/transmissão ao vivo da câmera que não tiveram nenhuma correção de deriva digital aplicada; essas imagens podem ter sido fisicamente corrigidas via movimento de palco ou mudança de feixe) e desvio corrigido (imagens do detector/câmera transmissão ao vivo que foram digitalmente derivadas). Os dados coletados durante um experimento ou sessão podem ser refinados em seções menores ou trechos de dados, conhecidos como coleções, sem perda de metadados incorporados. A partir do software de análise, imagens, pilhas de imagens e metadados podem ser exportados diretamente para uma variedade de imagens de formato aberto e tipos de planilhas para análise usando outras ferramentas e programas.
A estrutura de controle de microscópio, estabilização e integração de metadados habilitada pelo software MVS também permite a implementação de programas ou módulos adicionais de visão mecânica, projetados para aliviar as limitações nos fluxos de trabalho atuais de TEM. Um dos primeiros módulos desenvolvidos para aproveitar essa plataforma de sincronização é a calibração da dose de elétrons e o rastreamento espacial das áreas expostas do feixe dentro da amostra. Todas as imagens de MET são formadas a partir da interação entre a amostra e o feixe de elétrons. No entanto, essas interações também podem resultar em impactos negativos e inescapáveis na amostra, como radiólise e dano por knock-on11,12, e requerem um equilíbrio cuidadoso entre a aplicação de uma dose eletrônica alta o suficiente para gerar a imagem e a minimização do dano resultante do feixe13,14.
Embora muitos usuários confiem em medições de corrente de tela para estimar a dose de elétrons, este método tem sido mostrado para subestimar amplamente a corrente real do feixe15. Valores qualitativos de dose podem ser obtidos através da corrente de tela no mesmo microscópio com as mesmas configurações, mas reproduzir essas condições de dose usando microscópios ou configurações diferentes é altamente subjetivo. Além disso, quaisquer ajustes de parâmetros de imagem feitos pelo usuário durante o experimento, como tamanho do ponto, abertura, ampliação ou intensidade, requerem uma medição separada da corrente da tela para calcular a dose resultante. Os usuários devem limitar rigorosamente as condições de imagem usadas durante um determinado experimento ou medir e registrar meticulosamente cada condição de lente utilizada, complicando e estendendo significativamente o experimento além do que é viável para a operação normal do microscópio16,17.
Dose, referido como software de dose para este protocolo, é um módulo de software de calibração de dose que utiliza um suporte de calibração dedicado projetado para permitir medições automatizadas de corrente. Um copo Faraday, o padrão ouro para calibração precisa da corrente do feixe15, é integrado na ponta do suporte de calibração. O software MVS executa uma série de calibrações de corrente de feixe e área de feixe para cada condição de lente e incorpora esses valores nas imagens no nível de pixel.
Neste artigo em vídeo, os protocolos de software MVS projetados para melhorar todas as áreas do fluxo de trabalho do MET são apresentados usando amostras representativas de nanomateriais. Uma amostra de nanopartículas de zeólita sensível ao feixe14 é usada para demonstrar os fluxos de trabalho de calibração e gerenciamento de dose. Realizamos um experimento representativo de aquecimento in situ usando uma amostra de Au/FeOx nanocatalisador18,19 que sofre alterações morfológicas significativas quando aquecida. Este experimento in situ destaca os algoritmos de estabilização do software e sua capacidade de agrupar múltiplos fluxos de metadados, o que é um desafio inerente para estudos in situ e operacionais. Embora não descrito no protocolo, devido à sua sensibilidade única à dose eletrônica, discutimos exemplos representativos da utilidade do software para estudos de EM-líquido (protocolos para os quais já foram relatados na literatura20,21,22), e como essas técnicas podem ser aplicadas para melhorar a compreensão do efeito da dose em experimentos líquido-EM. Finalmente, mostramos como a análise de dados é simplificada usando o software de análise offline para visualizar, filtrar e exportar uma variedade de arquivos de imagem, vídeo e dados para outros formatos acessíveis.
Figura 1: Exemplos de interface do usuário para MVS e software de análise. (A) O painel de visualização de imagens e o painel de controle do software de sincronização. Uma conexão entre o MET e o software de sincronização é estabelecida ativando o botão Conectar, que transmite as imagens e metadados do microscópio para o software de sincronização. A partir do visualizador de imagens, o operador pode realizar uma variedade de operações assistidas por visão mecânica, como Drift Correct e Focus Assist. Ele também fornece a capacidade de aplicar imagens de marca e sessão de revisão sem interromper a coleta de dados. (B) Captura de tela do software de análise de imagem destacando a localização da Porta de Visualização de Imagem, Linha do Tempo e o painel Metadados e Análise. O software de análise pode ser acessado a qualquer momento durante um experimento para revisar as imagens adquiridas até aquele momento usando o botão Sessão de Revisão. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
A interpretação dos resultados experimentais do ETM é frequentemente dependente de muitos parâmetros experimentais interconectados, tais como configurações do microscópio, condições de imagem e, no caso de experimentos operacionais ou in situ, mudanças no ambiente ou estímulos 1,23. A análise precisa de grandes conjuntos de dados de TEM, sobre os quais esses parâmetros podem ser continuamente modificados, requer atenção significativa do operador para registrar com precisão cada condição e configuração para cada imagem em um diário de laboratório ou outra fonte de documentação externa. À medida que os conjuntos de dados TEM crescem em tamanho e complexidade, a manutenção manual de registros se torna incontrolável e as principais informações podem ser perdidas ou registradas de forma imprecisa. O software MVS descrito aqui consolida os metadados gerados durante um experimento a partir do microscópio, do detector/câmera e de outros sistemas (como porta-amostras in situ) e os alinha com suas respectivas imagens.
Além da consolidação de metadados, o software aplica algoritmos de visão mecânica para rastrear e estabilizar o campo de visão por meio de uma combinação de correções espaciais, de feixe e digitais usando suas funções Drift Correct e Focus Assist . Quando a função Drift Correct é ativada, uma imagem de ‘modelo’ de correlação cruzada é gerada usando a primeira imagem puxada para o software MVS. O modelo é então comparado com as imagens recebidas para calcular a direção e a magnitude da deriva ou movimento da amostra. Com essas informações, o software MVS aplica automaticamente as correções necessárias para manter as características da imagem no mesmo lugar, ajustando pelo menos um dos três parâmetros: localização do palco, mudança do feixe ou da imagem e correção digital da imagem. A função Focus Assist utiliza uma combinação de algoritmos para atribuir um valor de foco, chamado de pontuação de foco a cada imagem, e essas pontuações são comparadas para determinar a magnitude e a direção do ajuste de desfocagem a ser aplicado para manter a amostra em foco. No modo de imagem STEM, o software MVS tenta maximizar o contraste por meio de uma versão proprietária da variância normalizada para atribuir a pontuação de foco. No modo ETM, uma soma radial de intensidade é calculada no FFT e usada para calcular o escore de foco. Limitações na capacidade do software MVS de otimizar o foco ocorrem quando ele não consegue calcular com precisão a pontuação de foco correta para uma imagem. Isso geralmente ocorre quando o microscópio está desalinhado ou a amostra está significativamente fora de foco durante a calibração, impedindo que o software calcule corretamente o valor correto do escore de foco inicial. O software MVS pode ter dificuldade em calcular o escore de foco para amostras com franjas de rede bem definidas, pois as franjas de rede no FFT podem “sobrecarregar” o algoritmo de pontuação de foco; Assim, se uma amostra sair do foco, o escore de foco pode não refletir com precisão a mudança de foco. Por outro lado, trabalhar em ampliações baixas ou com uma amostra que tem um sinal FFT baixo também pode tornar desafiador calcular uma boa pontuação de foco. Para mitigar essas dificuldades, o software MVS contém uma série de algoritmos adicionais que podem ser selecionados pelo usuário para calcular a pontuação de foco se as configurações padrão não forem adequadas para a amostra. Estes devem ser testados e aplicados caso a caso para determinar os melhores algoritmos para um determinado experimento.
Mudanças morfológicas na estrutura da amostra ao longo do tempo são explicadas usando um fator de morfização de molde. Esse filtro é ajustável pelo operador, de modo que os algoritmos de registro levem em conta as mudanças morfológicas ao longo do tempo. Além disso, o software monitora a imagem contínua, as configurações do microscópio e as configurações da câmera ou do detector para atualizar automaticamente o molde quando acionado por mudanças na estrutura da amostra e após quaisquer alterações induzidas pelo operador nos parâmetros do microscópio, câmera ou detector. Como mostrado na Figura 4, Figura 5, Arquivo Suplementar 7 e Arquivo Suplementar 8, o software MVS fornece estabilização efetiva e imediata, permitindo imagens de alta resolução de amostras em movimento ou mudança dinâmicas. Embora o software seja capaz de controlar taxas muito altas de deriva ou movimento da amostra, como as que ocorrem ao aplicar uma rampa de aquecimento durante um experimento in situ , existem limitações para as correções máximas de estágio ou deslocamentos de feixe que o software pode controlar se a amostra está se movendo ou derivando muito rapidamente. Esse limite é uma função da taxa de atualização da imagem, do tamanho do campo de visão e da taxa de desvio. Para um determinado campo de visão e taxa de atualização de imagem, há uma taxa máxima de deriva que pode ser corrigida, e se os movimentos físicos não conseguem acompanhar, o processo pode terminar ou se tornar instável. A partir dos modelos de registro gerados quando recursos como Drift Correct são aplicados, metadados calculados adicionais podem ser gerados. Por exemplo, Correlação de correspondência é um registro numérico da extensão da mudança entre modelos em uma série e é usado para identificar pontos em uma linha do tempo experimental em que a amostra mudou. Um alto valor de correlação de correspondência corresponde a uma amostra que sofreu alterações em sua morfologia, e um baixo valor de correlação de correspondência corresponde a uma amostra cuja estrutura permanece relativamente estática. A correlação de correspondência é particularmente valiosa para estudos in situ , pois pode ser plotada graficamente, permitindo que o usuário identifique rapidamente imagens na série correspondente a uma mudança significativa na amostra. É importante, no entanto, entender que altos valores de correlações de correspondência também podem corresponder a mudanças nas condições de imagem, como mover o estágio ou alterar a ampliação, se essas ações forem executadas enquanto a função Correção de Desvio permanecer ativa.
O fluxo de trabalho de calibração apresentado aqui utiliza um suporte de calibração exclusivo e uma rotina de calibração semi-automatizada para calibrar com precisão o feixe sob uma variedade de condições de lente com intervenção mínima do operador. A rotina de calibração de dose é acessada através do software MVS instalado no MET. O software MVS lê automaticamente as configurações relevantes do microscópio para salvar todas as medições para referência para experimentos posteriores. Em alguns METs, não é possível ler as configurações de abertura ou monocromador, e estas devem ser inseridas nas configurações do software MVS pelo operador durante as calibrações e durante o uso. Há lembretes embutidos no software para ajudar a manter essas configurações de entrada do operador atualizadas seguindo os prompts do programa. O desenvolvimento de um suporte com um coletor de corrente embutido, em vez de depender de um integrado em outro lugar na coluna do microscópio, é uma escolha deliberada de projeto. Isso permite que o coletor de corrente seja posicionado no mesmo plano de uma amostra, eliminando erros na medição de corrente causados pela deflexão do feixe ou diferenças na absorção de elétrons por aberturas em diferentes posições do feixe. O software MVS segue uma rotina automatizada para medir a corrente e a área do feixe para qualquer combinação de condições de lente. O software pode então correlacionar essas calibrações medidas com a corrente da câmera ou da tela e extrapolar quaisquer mudanças na ampliação, etc., para a área do feixe durante o experimento. Uma vez gerados, esses arquivos de calibração podem ser usados imediatamente e são salvos automaticamente para uso posterior se o software detectar as mesmas configurações sendo usadas durante uma sessão futura. Embora a longevidade do arquivo de calibração varie de microscópio para microscópio, os autores descobriram que eles são capazes de usar os mesmos arquivos de calibração por vários meses sem observar mudanças substanciais nos valores atuais. Existem rotinas integradas monitorando o perfil de emissão das pistolas para ajudar a manter essas calibrações relevantes, especialmente em pistolas de emissão FEG frias.
A normalização das medidas de dose entre microscópios e o rastreamento automatizado da exposição do feixe de uma amostra são funções críticas do software MVS, pois permitem comparações quantitativas das condições de dose entre experimentos a serem realizados em diferentes sistemas de microscópios. A degradação induzida por dose de uma amostra de zeólita (ZSM-5), obtida durante experimentos idênticos usando microscópios diferentes, resulta no desaparecimento completo dos pontos FFT após uma dose máxima cumulativa ou limiar de elétrons (~60.000 e-/Å 2 ao aplicar uma taxa de dose de ~500 e–/Å2·s) para ambas as configurações. Estes resultados comparativos demonstram que o software de dose facilita medidas quantitativas de dose reprodutíveis. A pequena diferença na dose cumulativa na qual o desaparecimento total do ponto FFT é observado para cada experimento é provavelmente resultado das diferentes tensões de aceleração empregadas pelos dois microscópios, com tensões de aceleração mais baixas resultando em mais vias de dano de radiação, e tensões de aceleração mais altas tipicamente resultando em mais danos de detonação24. Os resultados da literatura para a dose crítica de nanopartículas de ZSM-5 variam de 9.000-14.000 e–/Å2 usando os primeiros desaparecimentos de pontos de FFT, em vez do desaparecimento completo de todos os pontos de FFT25,26. Em nossos resultados, o primeiro desaparecimento do ponto FFT corresponde a uma dose cumulativa de cerca de 25.000 e–/Å2. Estudos anteriores basearam-se em medidas de corrente obtidas usando uma tela de fósforo, que é bem documentada para subestimar as medidas de corrente do feixe quando comparadas a uma xícara de Faraday15. A dose crítica determinada pode variar por um fator de dois ou mais, dependendo de qual pico de FFT é usado para rastrear a dose. Isso indica que as frequências espaciais mais altas degradam primeiro, e podem resultar em valores diferentes dependendo do acesso à zona usada durante as medições (nossos resultados se concentraram em pontos FFT de todo o cristal de zeólita, em vez de características estruturais específicas)25,26. Essas diferenças nas técnicas e na calibração atual explicam a diferença de valores entre os dois experimentos relatados em nossos resultados e estudos prévios da literatura.
Embora as interações de dose de elétrons sejam um fator significativo em muitos experimentos de MET, estudos in situ e especificamente líquido-EM são particularmente sensíveis aos seus efeitos. A radiólise de líquidos pelo feixe de elétrons resulta em uma cascata de espécies quimicamente reativas que podem interagir com a amostra, dificultando a análise. Tanto a taxa de dose ou fluência utilizada durante um experimento líquido-EM quanto a dose cumulativa podem influenciar na concentração de espécies de radicais geradas pela radiólise líquida27,28. Assim, coletar e registrar metadados cumulativos de dose e taxa de dose ao longo de um experimento permite uma correlação direta entre as imagens e o histórico de doses de uma amostra, sendo uma maneira mais precisa de elucidar e controlar o impacto do feixe de elétrons nesses experimentos. Embora não abordado neste protocolo, um exemplo da utilidade dos recursos de gerenciamento de dose para EM líquido é mostrado na Figura 6.
Figura 6: Crescimento induzido por feixe de nanopartículas de ouro durante um experimento líquido-EM in situ. (A) Visão geral STEM de baixa ampliação do crescimento de partículas resultante com uma sobreposição de cores do mapa de dose cumulativa em toda a região. As áreas vermelhas na sobreposição indicam regiões de exposição cumulativa elevada à dose e as áreas amarelas indicam regiões de menor exposição. Realçar um pixel individual com o cursor ou desenhar uma caixa sobre uma área usando as ferramentas de desenho incluídas indica a dose cumulativa para esse pixel ou área. A barra de escala é de 2 μm. (B,C) Imagens STEM de maior ampliação das áreas indicadas pelas caixas laranjas (b,c) em A. A área b, exposta a uma dose cumulativa mais elevada (10,811 e-/Å 2) contém partículas maiores do que as encontradas na área c, que foi exposta a uma dose cumulativa mais baixa (0,032 e–/Å2). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
A taxa de dose enriquecida e os metadados de dose cumulativa simplificam a análise das vias de crescimento e degradação de nanomateriais dependentes da dose. A Figura 6 mostra a redução induzida por feixe de uma solução de íons cloreto áurico de ouro (HAuCl3) em água durante experimentos líquido-EM. A partir da sobreposição do mapa de dose colorido na Figura 6A, é fácil visualizar que a dose cumulativa de elétrons influencia o tamanho e a forma resultantes das nanopartículas 29,30,31,32. A visão geral STEM de baixa ampliação mostra regiões expostas a uma dose cumulativa alta (vermelha) e baixa (amarela). As partículas na região exposta a doses mais altas são maiores do que as das regiões expostas a doses cumulativas mais baixas. Como os metadados de dose são diretamente incorporados em cada imagem no nível de pixel, os efeitos complexos da dose de elétrons em experimentos de EM líquido podem agora ser sistematicamente analisados de uma maneira nunca antes alcançável.
Neste protocolo, demonstramos que o software MVS fornece uma solução abrangente para calibrar, monitorar e rastrear tanto a dose de elétrons quanto a dose total entregue a uma amostra pixel a pixel. Essa capacidade desbloqueia um novo paradigma para a obtenção de imagens de amostras sensíveis à dose e para a compreensão das interações do feixe de elétrons. É particularmente empolgante para experimentos líquido-EM, pois permitirá uma interrogação mais eficaz sobre o papel que a dose de elétrons desempenha e melhorará a reprodutibilidade experimental. Esperamos que esta nova estrutura permita a coleta precisa de informações sobre a taxa de dose e a dose acumulada, facilite o compartilhamento desses dados com a comunidade para uma interpretação mais precisa dos resultados da TEM e avance a colaboração científica e o compartilhamento de dados, permitindo o relato e a análise dos principais FAIR.
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi realizado em parte no Analytical Instrumentation Facility (AIF) da North Carolina State University, que é apoiado pelo Estado da Carolina do Norte e pela National Science Foundation (número de prêmio ECCS-2025064). O FIA é membro da North Carolina Research Triangle Nanotechnology Network (RTNN), um local na National Nanotechnology Coordinated Infrastructure (NNCI). Os autores gostariam de agradecer a Damien Alloyeau, Diretor de Pesquisa do CNRS na Universidade Paris Cité, por fornecer os resultados do estudo de limiar de dose de zeólita CFEG de 200 kV.
ARM200F CFEG | JEOL | Transmission Electron Microscope (200 kV) | |
AXON DOSE Calibration Holder | Protochips, Inc. | AXA-FC-TFS | Dose calibration and management hardware package for ThermoFisher ScientificTEM |
AXON DOSE Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | AX-MOD-DOSE-01-1YR | Dose calibration and management software |
AXON Studio Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | No Part Number. Available to download at success.protochips.com |
Offline analysis software for AXON datasets. A free copy of the AXON Studio software is available for down load at: success.protochips.com |
AXON Synchronicity Core | Protochips, Inc. | AXON-CORE | Hardware component of the synchronization software. |
AXON Synchronicity Software: Version 10.6.5.3 | Protochips, Inc. | AX-MOD-SYNCPRO-01-1YR | Synchronization software |
Fusion In-Situ Heating E-chip | Protochips, Inc. | E-FHDC-VO-10 | Sample Support E-chip with carbon film. Used with in situ heating system |
Fusion Select In Situ Heating System | Protochips, Inc. | FFAD-6200-EXP | In-situ MEMs heating system for ThermoFisher Scientific TEM. |
Gold(III) chloride (50% gold basis) hydrate 50790 | Sigma Aldrich | 27988-77-8 | Used to prepare Au/FeOx nanocatalyst. Coprecipitation synthesis procedure followed in C. Sze et al. Materials Letters. 36 (1–4), 11–16 (1998) |
Iron (III) Oxide 310050 (Fe2O3) | Sigma Aldrich | 1309-37-1 | Used to prepare Au/FeOx nanocatalyst. Coprecipitation synthesis procedure followed in C. Sze et al. Materials Letters. 36 (1–4), 11–16 (1998) |
Titan ChemiSTEM | ThermoFisher Scientific | Transmission Electron Microscope (300 kV) | |
Zeolite ZSM-5 | Zeolyst | CBV 8014 | Nanocatalyst sample: 80 SiO2/Al2O3 Mole Ratio |