Summary

Photoacoustique, échographie et tomographie angiographique intégrée (PAUSAT) pour l’imagerie non invasive du cerveau entier de l’AVC ischémique

Published: June 02, 2023
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Summary

Ce travail démontre l’utilisation d’une plateforme d’imagerie multimodale basée sur les ultrasons pour l’imagerie non invasive de l’AVC ischémique. Ce système permet de quantifier l’oxygénation du sang par imagerie photoacoustique et la perfusion altérée dans le cerveau par angiographie acoustique.

Abstract

Nous présentons ici une étude expérimentale sur l’AVC ischémique utilisant notre nouveau système d’imagerie non invasive qui intègre trois technologies d’imagerie acoustique : photoacoustique, échographie et tomographie angiographique (PAUSAT). La combinaison de ces trois modalités permet d’acquérir la tomographie photoacoustique multispectrale (PAT) de l’oxygénation du sang cérébral, l’imagerie par ultrasons à haute fréquence du tissu cérébral et l’angiographie acoustique de la perfusion sanguine cérébrale. La plateforme d’imagerie multimodale permet d’étudier les changements de perfusion cérébrale et d’oxygénation dans l’ensemble du cerveau de la souris après un AVC. Deux modèles d’AVC ischémique couramment utilisés ont été évalués : le modèle d’occlusion permanente de l’artère cérébrale moyenne (pMCAO) et le modèle photothrombotique (PT). PAUSAT a été utilisé pour imager les mêmes cerveaux de souris avant et après un AVC et analyser quantitativement les deux modèles d’AVC. Ce système d’imagerie a permis de montrer clairement les changements vasculaires cérébraux après un AVC ischémique, y compris une réduction significative de la perfusion sanguine et de l’oxygénation dans la région de l’infarctus de l’AVC (ipsilatéral) par rapport au tissu non blessé (controlatéral). Les résultats ont été confirmés par imagerie de contraste par moucheturation laser et coloration au chlorure de triphényltétrazolium (TTC). De plus, le volume de l’infarctus de l’AVC dans les deux modèles d’AVC a été mesuré et validé par la coloration TTC comme la vérité sur le terrain. Grâce à cette étude, nous avons démontré que PAUSAT peut être un outil puissant dans les études précliniques non invasives et longitudinales de l’AVC ischémique.

Introduction

Le sang transporte l’oxygène (via la protéine d’hémoglobine) et d’autres nutriments importants vers les tissus de notre corps. Lorsque le flux sanguin à travers les tissus est interrompu (ischémie), de graves dommages aux tissus peuvent survenir, dont les effets les plus immédiats sont dus à un manque d’oxygène (hypoxie). L’AVC ischémique est le résultat d’une interruption du flux sanguin vers une certaine région du cerveau. Les lésions cérébrales résultant d’un AVC ischémique peuvent survenir dans les minutes suivant le blocage d’un vaisseau et peuvent souvent avoir des effets débilitants et durables 1,2. Une stratégie très utile pour évaluer la physiopathologie après un AVC ischémique et identifier et tester de nouveaux traitements est l’utilisation de modèles de petits animaux en laboratoire. Les traitements découverts en laboratoire visent à être traduits en utilisation clinique et à améliorer la vie des patients. Cependant, l’utilisation d’animaux dans la recherche biomédicale doit être soigneusement évaluée selon les principes 3R de Russell et Burch: remplacement, réduction et raffinement3. L’objectif du volet réduction est de réduire le nombre d’animaux sans compromettre la collecte de données. Dans cette optique, le fait de pouvoir évaluer longitudinalement l’évolution de la lésion via l’imagerie non invasive permet un grand avantage dans la réduction du nombre d’animaux nécessaires, ainsi que dans la maximisation des informations obtenues de chaque animal4.

La tomographie photoacoustique (PAT) est une modalité d’imagerie hybride qui combine le contraste d’absorption optique avec la résolution spatiale de l’imagerie par ultrasons5. Le mécanisme d’imagerie de PAT est le suivant. Une impulsion laser d’excitation est allumée sur la cible photographiée. En supposant que la cible absorbe la lumière à la longueur d’onde du laser d’excitation, sa température augmentera. Cette augmentation rapide de la température entraîne une expansion thermoélastique de la cible. L’expansion provoque la propagation d’une onde ultrasonore hors de la cible. En détectant l’onde ultrasonore à de nombreuses positions, le temps nécessaire à l’onde pour se propager de la cible aux détecteurs peut être utilisé pour créer une image grâce à un algorithme de reconstruction. La capacité de la PAT à détecter l’absorption optique dans les régions des tissus profonds différencie la PAT de l’imagerie par ultrasons, qui détecte les limites des différentes impédances acoustiques des tissus5. Dans les spectres visible et proche infrarouge, les biomolécules primaires hautement absorbantes qui sont abondantes dans les organismes sont l’hémoglobine, les lipides, la mélanine et l’eau7. L’hémoglobine est particulièrement intéressante dans l’étude de l’AVC. Étant donné que l’oxyhémoglobine et la désoxyhémoglobine ont des spectres d’absorption optique différents, la PAT peut être utilisée avec plusieurs longueurs d’onde laser d’excitation pour déterminer la concentration relative des deux états de la protéine. Cela permet de quantifier la saturation en oxygène de l’hémoglobine (sO2), ou oxygénation du sang, à l’intérieur et à l’extérieur de la région de l’infarctus 8,9. Il s’agit d’une mesure importante dans l’AVC ischémique, car elle peut indiquer le niveau d’oxygène dans le tissu cérébral endommagé après une ischémie.

L’angiographie acoustique (AA) est une méthode d’imagerie par ultrasons à contraste amélioré qui est particulièrement utile pour l’imagerie de la morphologie du système vasculaire in vivo10. La méthode repose sur l’utilisation d’un transducteur oscillant à deux éléments (un élément basse fréquence et un élément haute fréquence) en conjonction avec des microbulles injectées dans le système circulatoire du sujet imageur. L’élément basse fréquence du transducteur est utilisé pour transmettre à la fréquence de résonance des microbulles (par exemple, 2 MHz), tandis que l’élément haute fréquence est utilisé pour recevoir les signaux super harmoniques des microbulles (par exemple, 26 MHz). Lorsqu’elles sont excitées à une fréquence de résonance, les microbulles ont une forte réponse non linéaire, ce qui entraîne la production de signaux super harmoniques que les tissus corporels environnants ne produisent pas11. En recevant avec un élément haute fréquence, cela garantit que seuls les signaux de microbulles sont détectés. Puisque les microbulles sont confinées aux vaisseaux sanguins, le résultat est une image angiographique de la morphologie des vaisseaux sanguins. L’AA est une méthode puissante pour l’imagerie de l’AVC ischémique, car les microbulles qui circulent dans le système circulatoire ne peuvent pas circuler à travers les vaisseaux bloqués. Cela permet aux AA de détecter les régions du cerveau qui ne sont pas perfusées en raison d’un AVC ischémique, ce qui indique la région de l’infarctus.

La recherche préclinique sur l’AVC ischémique repose généralement sur l’utilisation de l’histologie et des tests comportementaux pour évaluer l’emplacement et la gravité de l’AVC. La coloration au chlorure de triphényltétrazolium (TTC) est une analyse histologique courante utilisée pour déterminer le volume de l’infarctus de l’AVC. Cependant, il ne peut être utilisé qu’à un point final, puisqu’il nécessite l’euthanasie de l’animal12. Les tests comportementaux peuvent être utilisés pour déterminer la déficience de la fonction motrice à plusieurs moments, mais ils ne peuvent pas fournir de valeurs anatomiques ou physiologiques quantitatives13. L’imagerie biomédicale offre une approche plus quantitative pour étudier les effets de l’AVC ischémique de façon non invasive et longitudinale 9,14,15. Cependant, les technologies d’imagerie existantes (telles que l’imagerie par résonance magnétique [IRM] pour petits animaux) peuvent avoir un coût élevé, être incapables de fournir des informations structurelles et fonctionnelles simultanées ou avoir une profondeur de pénétration limitée (comme la plupart des techniques d’imagerie optique).

Ici, nous combinons la photoacoustique, l’échographie et la tomographie angiographique (PAUSAT; voir schéma du système à la figure 1), ce qui permet d’obtenir des informations structurelles et fonctionnelles complémentaires sur la perfusion sanguine et l’oxygénation après un AVC ischémique16. Ce sont deux aspects importants dans l’évaluation de la gravité de la blessure et le suivi du rétablissement ou de la réponse aux traitements. L’utilisation de ces méthodes d’imagerie intégrées peut augmenter la quantité d’information obtenue par chaque animal, réduire le nombre d’animaux requis et fournir plus d’information dans l’étude des traitements potentiels de l’AVC ischémique.

Figure 1
Figure 1 : Diagramme PAUSAT. (A) Schéma complet du système PAUSAT, y compris le laser et l’OPO utilisés pour le PAT. (B) Vue intérieure du système PAUSAT, y compris deux transducteurs à ultrasons. Le transducteur oscillant à double élément est utilisé à la fois pour les ultrasons en mode B et AA, et le transducteur linéaire est utilisé pour le PAT. Les deux transducteurs sont montés sur le même étage motorisé 2D, ce qui permet de numériser des données volumétriques. Ce chiffre a été modifié par rapport à16. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Protocol

Toutes les procédures animales ont été approuvées par le Comité de soin et d’utilisation des animaux du Duke University Medical Center et ont été menées conformément à la politique du Service de santé publique des États-Unis sur les soins et l’utilisation sans cruauté des animaux de laboratoire. Des souris C57BL/6J mâles et femelles (voir le tableau des matériaux) ont été utilisées pour ces études. Un minimum de trois animaux ont été photographiés par groupe modèle d’AVC. Voi…

Representative Results

Imagerie de la morphologie des vaisseaux sanguins dans le cerveauAA génère des images de morphologie des vaisseaux sanguins en excitant des microbulles dans le système circulatoire à leur fréquence de résonance et en recevant la réponse super harmonique des microbulles. En utilisant la rampe personnalisée (Figure 2C) fixée à une platine réglable manuellement, nous pouvons imager le cerveau de la souris avec le mode AA à deux profondeurs focales différentes. …

Discussion

Il y a quelques aspects essentiels de cette méthode qui, s’ils sont mal exécutés, peuvent entraîner une diminution significative de la qualité de l’image et de l’analyse quantitative. Le résultat le plus courant de l’erreur de l’utilisateur dans les images PAUSAT est soit un manque de signal, soit une très faible intensité du signal, qui peuvent tous deux se produire pour diverses raisons. L’une de ces raisons est un problème avec le couplage acoustique. De grosses bulles d’air dans l’eau entoura…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier l’équipe d’ingénierie de SonoVol Inc. pour son soutien technique. Ce travail a été partiellement parrainé par l’American Heart Association Collaborative Sciences Award (18CSA34080277), à J. Yao et W. Yang; Les subventions des National Institutes of Health (NIH) des États-Unis R21EB027981, R21 EB027304, RF1 NS115581 (BRAIN Initiative), R01 NS111039, R01 EB028143; Le prix CAREER de la National Science Foundation (NSF) des États-Unis 2144788; la subvention de l’Initiative Chan Zuckerberg (2020-226178), à J. Yao; et les NIH accordent des R21NS127163 et des R01NS099590 à W. Yang.

Materials

20 GA catheter BD Insyte Autoguard Winged 381534 For mouse intubation
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride Sigma T8877 Necessary for TTC-staining brain for validation
532nm Laser Quantel Q-smart 850 Laser used to pump the OPO for PAT
Automatic Ventilator Rovent Jr. Kent Scientific RV-JR To keep mice under anesthesia during surgical procedure
Black braided silk 4-0 USP Surgical Specialties SP116 Used for sutures on the neck for pMCAO surgery
Bupivacaine Hospira 0409-1159-18 Used prior to closing wounds during surgical procedure
C57BL/6 Mice Jackson Lab #000664 Mice used for studying ischemic stroke (2-6 month old male/female)
Clear suture Ethicon 8606 Used for closing wound (PT stroke and pMCAO). A clear suture won't interfere with PAT
Cold Light LED Schott KL 1600 Needed to create PT stroke
Disposable Razor Blade Accutec Blades 74-0002 For sectioning mouse brain
Electric drill JSDA JD-700 Used to expose MCA during pMCAO procedure
Electrocauterization tool Wet-Field Wet-Field Bipolar-RG Stops blood flow after drilling during pMCAO procedure
Hair removal gel Veet 8282651 Used to remove hair from mouse prior to imaging
High Temperature Cautery Loop Tip BOVIE Medical Corporation REF AA03 Used to avoid bleeding when separating the temporal muscle from the skull
IR Detector Card Thorlabs VRC5 Used to ensure light path is aligned
Laser Power Meter Ophir StarBright, P/N 7Z01580 Can be used to calibrate the laser energy prior to imaging
Laser Speckle Imaging System RWD Life Science Co. RFLSI-III Can be used to validate stroke surgery success
Lubricant Eye Ointment Soothe AB31336 Can be used to avoid drying of the eyes
Manually adjustable stage Thorlabs L490 Used with custom ramp for multiple focal depth AA imaging
Modified Vega Imaging System Perkin Elmer LLA00061 System containing both B-mode/AA and PAT transducers
Optical Parametric Oscillator Quantel versaScan-L532 Allows for tuning of excitation wavelength in a large range
Programmable Ultrasound System Verasonics Vantage 256 Used for PAT part of system
Rose Bengal Sigma 330000 Necessary to induce PT stroke
Suture LOOK SP116 Used for permanent ligation of CCA
Temperature Contoller Physitemp TCAT-2 Used to maintain stable body temperature of mice during procedures
VesselVue Microbubbles Perkin Elmer P-4007001 Used for acoustic angiography (2.43 × 10^9 microbubbles/mL)

Referenzen

  1. Durukan, A., Tatlisumak, T. Acute ischemic stroke: overview of major experimental rodent models, pathophysiology, and therapy of focal cerebral ischemia. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 87 (1), 179-197 (2007).
  2. Vander Worp, H. B., van Gijn, J. Clinical Practice. Acute ischemic stroke. The New England Journal of Medicine. 357 (6), 572-579 (2007).
  3. Tannenbaum, J., Bennett, B. T. Russell and Burch’s 3Rs then and now: the need for clarity in definition and purpose. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (2), 120-132 (2015).
  4. Hochrainer, K., Yang, W. Stroke proteomics: from discovery to diagnostic and therapeutic applications. Circulation Research. 130 (8), 1145-1166 (2022).
  5. Wang, L. V., Yao, J. A practical guide to photoacoustic tomography in the life sciences. Nature Methods. 13 (8), 627-638 (2016).
  6. Aldrich, J. E. Basic physics of ultrasound imaging. Critical Care Medicine. 35 (5), S131-S137 (2007).
  7. Jacques, S. L. Optical properties of biological tissues: a review. Physics in Medicine and Biology. 58 (11), R37-R61 (2013).
  8. Li, M., Tang, Y., Yao, J. Photoacoustic tomography of blood oxygenation: a mini review. Photoacoustics. 10, 65-73 (2018).
  9. Menozzi, L., Yang, W., Feng, W., Yao, J. Sound out the impaired perfusion: Photoacoustic imaging in preclinical ischemic stroke. Frontiers in Neuroscience. 16, 1055552 (2022).
  10. Gessner, R. C., Frederick, C. B., Foster, F. S., Dayton, P. A. Acoustic angiography: a new imaging modality for assessing microvasculature architecture. International Journal of Biomedical Imaging. 2013, 936593 (2013).
  11. Dayton, P. A., Rychak, J. J. Molecular ultrasound imaging using microbubble contrast agents. Frontiers in Bioscience. 12, 5124-5142 (2007).
  12. Isayama, K., Pitts, L. H., Nishimura, M. C. Evaluation of 2, 3, 5-triphenyitetrazolium chloride staining to delineate rat brain infarcts. Stroke. 22 (11), 1394-1398 (1991).
  13. Ruan, J., Yao, Y. Behavioral tests in rodent models of stroke. Brain Hemorrhages. 1 (4), 171-184 (2020).
  14. Parthasarathy, A. B., Kazmi, S. M. S., Dunn, A. K. Quantitative imaging of ischemic stroke through thinned skull in mice with Multi Exposure Speckle Imaging. Biomedical Optics Express. 1 (1), 246-259 (2010).
  15. Hingot, V., et al. Early ultrafast ultrasound imaging of cerebral perfusion correlates with ischemic stroke outcomes and responses to treatment in mice. Theranostics. 10 (17), 7480-7491 (2020).
  16. Menozzi, L., et al. Three-dimensional non-invasive brain imaging of ischemic stroke by integrated photoacoustic, ultrasound and angiographic tomography (PAUSAT). Photoacoustics. 29, 100444 (2022).
  17. Llovera, G., Roth, S., Plesnila, N., Veltkamp, R., Liesz, A. Modeling stroke in mice: permanent coagulation of the distal middle cerebral artery. Journal of Visualized Experiments. (89), e51729 (2014).
  18. Trotman-Lucas, M., Kelly, M. E., Janus, J., Fern, R., Gibson, C. L. An alternative surgical approach reduces variability following filament induction of experimental stroke in mice. Disease Models & Mechanisms. 10 (7), 931-938 (2017).
  19. Labat-Gest, V., Tomasi, S. Photothrombotic ischemia: a minimally invasive and reproducible photochemical cortical lesion model for mouse stroke studies. Journal of Visualized Experiments. (76), e50370 (2013).
  20. Matsumoto, Y., et al. Visualising peripheral arterioles and venules through high-resolution and large-area photoacoustic imaging. Scientific Reports. 8 (1), 14930 (2018).
  21. Xu, Y., Wang, L. V., Ambartsoumian, G., Kuchment, P. Reconstructions in limited-view thermoacoustic tomography. Medical Physics. 31 (4), 724-733 (2004).
  22. Yal Tang, ., et al. High-fidelity deep functional photoacoustic tomography enhanced by virtual point sources. Photoacoustics. 29, 100450 (2023).
  23. Zheng, W., Huang, C., Zhang, H., Xia, J. Slit-based photoacoustic tomography with co-planar light illumination and acoustic detection for high-resolution vascular imaging in human using a linear transducer array. Biomedical Engineering Letters. 12 (2), 125-133 (2022).
  24. Wang, Y., et al. Slit-enabled linear-array photoacoustic tomography with near isotropic spatial resolution in three dimensions. Optics Letters. 41 (1), 127-130 (2016).
  25. Vu, T., Li, M., Humayun, H., Zhou, Y., Yao, J. A generative adversarial network for artifact removal in photoacoustic computed tomography with a linear-array transducer. Experimental Biology and Medicine. 245 (7), 597-605 (2020).
  26. Zhang, H., et al. Deep-E: A fully-dense neural network for improving the elevation resolution in linear-array-based photoacoustic tomography. IEEE Transactions on Medical Imaging. 41 (5), 1279-1288 (2022).
  27. Hauptmann, A., et al. Model-based learning for accelerated, limited-view 3-D photoacoustic tomography. IEEE Transactions on Medical Imaging. 37 (6), 1382-1393 (2018).
  28. Li, M., et al. Three-dimensional deep-tissue functional and molecular imaging by integrated photoacoustic, ultrasound, and angiographic tomography (PAUSAT). IEEE Transactions on Medical Imaging. 41 (10), 2704-2714 (2022).

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Diesen Artikel zitieren
Menozzi, L., del Águila, Á., Vu, T., Ma, C., Yang, W., Yao, J. Integrated Photoacoustic, Ultrasound, and Angiographic Tomography (PAUSAT) for NonInvasive Whole-Brain Imaging of Ischemic Stroke. J. Vis. Exp. (196), e65319, doi:10.3791/65319 (2023).

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