Cryo-STEM 단층촬영은 임베딩, 절편 또는 기타 침습적 제제 없이 손상되지 않은 세포의 세포 소기관을 시각화하는 수단을 제공합니다. 얻어진 3D 해상도는 현재 수 나노미터 범위이며, 시야는 수 마이크로미터이고 접근 가능한 두께는 1μm 정도입니다.
극저온 전자 현미경(Cryo-EM)은 기본 수성 매질에 내장된 생물학적 또는 유기 표본의 이미징에 의존합니다. 물은 결정화 없이 유리로 고형화(즉, 유리화)됩니다. Cryo-EM 방법은 최근 원자 분해능에 가까운 생물학적 거대분자의 구조를 측정하는 데 널리 사용되고 있습니다. 이 접근법은 단층 촬영을 이용한 세포 소기관 및 세포 연구로 확장되었지만 기존의 광시야 투과 EM 이미징 모드는 표본 두께에 심각한 제한을 겪고 있습니다. 이것은 집중된 이온 빔을 사용하여 얇은 라멜라를 밀링하는 관행으로 이어졌습니다. 고해상도는 재구성에서 평균을 내는 서브토모그램에 의해 얻어지지만 나머지 층 외부의 3차원 관계는 손실됩니다. 두께 제한은 스캐닝 EM 또는 컨포칼 레이저 스캐닝 현미경과 유사한 스캔된 프로브 이미징으로 우회할 수 있습니다. 재료 과학의 주사 투과 전자 현미경(STEM)은 단일 이미지에서 원자 분해능을 제공하지만 전자 조사에 대한 극저온 생물 표본의 민감도는 특별한 고려 사항이 필요합니다. 이 프로토콜은 STEM을 사용한 극저온 단층 촬영을 위한 설정을 제공합니다. 현미경의 기본 국소 구성은 2개 및 3개 콘덴서 시스템 모두에 대해 설명되며, 자동화는 비상업적 SerialEM 소프트웨어를 통해 제공됩니다. 배치 획득 및 이전에 획득한 형광 맵에 대한 상관 정렬에 대한 개선 사항도 설명되어 있습니다. 예를 들어, 우리는 미토콘드리아의 재구성을 보여주고, 내막과 외막, 인산칼슘 과립뿐만 아니라 주변의 미세소관, 액틴 필라멘트 및 리보솜을 지적합니다. Cryo-STEM 단층 촬영은 세포질의 세포 소기관 극장을 드러내는 데 탁월하며, 경우에 따라 배양 중인 부착 세포의 핵 주변부까지 드러내는 데 탁월합니다.
세포 소기관의 3차원(3D) 시각화는 현대 세포 생물학에서 가장 중요한 작업입니다. 분비 소포의 경우 수십 나노미터에서 세포핵의 경우 수 미크론에 이르는 규모를 감안할 때 모든 응용 분야에 적합한 단일 현미경 기술을 찾는 것은 어렵습니다. 현대의 형광 현미경은 분해능 측면에서 많은 범위에 걸쳐 있을 수 있지만 표지된 분자만 나타납니다. 세포 극장은 전자 현미경의 영역으로 남아 있습니다. 기존의 화학적 고정, 플라스틱 임베딩 및 중금속 염색 방법은 강력하게 침습적이므로 결과는 샘플 준비의 세부 사항에 따라 달라질 수 있습니다. 반면에 Cryo-EM은 수성 매질을 유리화해야 할 필요성에 의해 제약을 받습니다. 전자 조명을 회절시키는 얼음 결정은 관심있는 유기 물질보다 더 높은 대비의 대비 인공물을 유발합니다.
지난 10년 동안 세포 연구를 위해 개발되거나 적용된 EM 이미징 기술이 확산되었습니다1. 주사 전자 현미경 (즉, FIB-SEM)을 사용한 반복 집속 이온 빔 (FIB) 밀링 및 직렬 표면 이미징과 결합 된 고압 동결은 현재 대형 시편2에 선택되는 방법입니다. 극저온 연질 X선 단층촬영(cryo-SXT)은 수 미크론 크기의 시료에 적합하며, 물에서 연질 X선의 특성 흡수 길이에 의해 제한됩니다 3,4,5. 이 척도는 많은 온전한 세포 유형을 포함하며, X선 흡수 대비의 정량적 특성은 농도 측정6 또는 분광법7의 측면을 추가한다. 위상차 투과 전자 현미경(TEM)을 기반으로 하는 초저온 투과 전자 단층 촬영(cryo-ET)은 서브토모그램 평균화와 결합할 때 거대분자 또는 복합체에 대해 가장 높은 분해능을 제공합니다 8,9,10. 그러나 온전한 세포 소기관이 너무 규칙적이어서 전체를 평균화할 수 있는 경우는 드뭅니다. 더욱이, 광시야 TEM의 종래의 모드는 시편의 비탄성 산란(에너지 손실 포함)과 자기 대물렌즈(11,12)의 색수차의 조합에 의해 시편 두께를 수백 나노미터로 제한한다. 에너지 확산이 크면 에너지 필터를 사용하여 초점이 맞지 않는 연무를 제거해야 하지만, 민감한 시편은 여전히 방사선 손상을 입고 이미지 신호는 두께가 증가함에 따라 기하급수적으로 약해집니다.
대체 이미징 모드인 주사 투과 EM(STEM)은 에너지 필터링의 필요성을 피하고 이미지 형성을 위해 비탄성적으로 산란된 전자를 유지하지만, 현재 TEM 단층 촬영보다 해상도가 낮습니다(그림 1). 사실, 실제 이미지는 형성되지 않습니다. 대신 스캐닝 EM에서와 같이 포인트별로 측정이 이루어지고 이미지가 컴퓨터에 의해 조립됩니다. 배율은 렌즈 전류를 변경하지 않고 스캔 단계의 크기에 의해서만 결정됩니다. 적절하게 구성되면 cryo-STEM 단층 촬영(CSTET)에 유용한 표본 두께 범위는 1.5 또는 2 μm에 도달할 수 있지만, 유용한 신호 강도가 조명의 상당 부분을 차지하는 컴포트 존은 약 600-900 nm11,13입니다. 이것은 세포질의 많은 부분과 때로는 세포핵의 가장자리를 보기에 충분합니다. 실제로, 우리는 극저온 유체에 뛰어드는 표준 방법에 의한 유리화가 STEM 이미징보다 두께에 더 심각한 제약을 가한다는 것을 발견했습니다. 이 비디오 기사의 목표는 연구실 및 현미경 시설에서 세포 및 세포 소기관 이미징을 위한 도구 상자에 CSTET를 쉽게 통합하는 것입니다.
첫 번째 과제는 CSTET의 현미경 작업이 Cryo-TEM 단층 촬영과 같은 방식으로 생명 과학 응용 분야에 대해 아직 표준화되지 않았다는 것입니다. STEM 하드웨어가 Cryo-EM 시장을 겨냥한 적이 거의 없습니다. 그러나 이것은 최신 세대의 현미경으로 변화하고 있으며 많은 기존 도구를 개조할 수 있습니다. 기술로서의 STEM은 극저온 및 저선량 방법에 대한 관심이 싹트고 있는 재료 과학 분야에서 크게 자리를 잡았습니다14,15. 재료 과학 문헌에는 BF-STEM, ADF-STEM, HAADF-STEM, 4D-STEM, DPC-STEM 등의 약어가 풍부하여 혼란을 가중시킵니다. 여기서는 Weizmann Institute of Science에서의 집단적 경험을 바탕으로 명시야(BF) STEM 이미징을 기반으로 한 유용한 결과를 위한 가장 일반적인 프로토콜을 제공하는 권장 출발점을 제공합니다16. 가능성의 범위를 소진하거나 탐색하지는 않지만 추가 개선을 위한 기초가 될 것입니다. Cryo-STEM을 강조하지만 대부분의 프로토콜은 플라스틱 내장 섹션의 실온 STEM 단층 촬영과 동등하게 관련이 있습니다.
STEM의 핵심은 집속 전자 프로브(그림 1), 조명 원뿔로 표본을 스캔하고 전송 시 회절(산란) 평면의 신호를 픽셀 단위로 기록하여 2D 이미지17,18을 생성하는 것입니다. 대부분의 세포 물질을 포함한 비정질 표본은 전달 시 확산 산란 패턴을 생성합니다. 가장 간단한 실용적인 STEM 구성은 원형 검출기를 배치하여 중앙 디스크(즉, 표본 없이 전송되는 프로브 조명)를 기록하는 것입니다. 표본은 신호가 감소하는 정도까지 이 조명 원뿔에서 전자를 산란시킵니다. 이렇게 하면 BF 이미지가 생성되며 표본이 밝은 배경에서 어둡게 나타납니다. 환형 검출기는 또한 (또는 대신에) 조명 원뿔 외부의 시편으로부터의 산란을 검출하기 위해 사용될 수 있다. 시편을 제거하면 신호가 없습니다. 표본이 제자리에 있으면 암시야(DF) 이미지의 어두운 배경에 물체가 밝게 나타납니다. STEM(BF, 환형 암시야[ADF], 고각 고리형 암시야[HAADF] 등)의 명명법은 주로 검출기의 수집 각도 범위를 나타냅니다.
조명의 수렴 각도는 세포 단층 촬영에 대한 STEM의 필수적인 적응을 나타냅니다. 최우선 순위가 고해상도인 경우 수렴 각도는 가능한 한 커야 합니다. (이것은 컨포칼 레이저 스캐닝 현미경과 유사합니다. 해상도는 프로브 직경에 의해 결정되며, 프로브 직경은 파장을 개구수로 나눈 값으로 조정됩니다. EM의 경우 반각 또는 반수렴각을 지칭합니다.) 반면에 우선 순위가 피사계 심도인 경우 해상도의 절충안은 집중된 빔이 파장의 두 배에 해당하는 거리에 대해 대략 평행하게 유지되기 때문에 큰 이점을 제공합니다. 이상적으로는, 전체 세포 부피가 초점(19)에 유지된다. 예를 들어, 300keV에서 전자 deBroglie 파장은 0.002nm이므로 1mrad의 수렴은 2nm의 분해능과 4미크론의 피사계 심도를 산출합니다. 이러한 조건 하에서, 단층 촬영은 데이터 수집 과정에서 초점을 맞추지 않고도 수행 될 수 있지만, 획득 초기에는 한 번만 수행 할 수 있습니다. 기존의 단층 촬영 가능 STEM은 7 또는 8mrad의 반 수렴 각도에 도달 할 수 있습니다. 따라서 원칙적으로 0.25nm 정도의 해상도에 도달 할 수 있지만 초점 깊이는 62nm에 불과합니다. 이것은 세포 이미징을 하기에는 분명히 너무 얇습니다. 3개의 콘덴서 렌즈가 있는 고급 현미경은 상당한 범위에서 반수렴 각도를 지속적으로 조정할 수 있습니다. 보다 전통적인 2 콘덴서 구성에서는 컨버전스가 콘덴서(C2) 조리개에 의해 개별적으로 고정됩니다.
견고한 플라스틱 내장 샘플의 경우 각 기울기에서 초점 시리즈를 기록하고 결합하여 고해상도20을 만들 수 있지만 극저온 샘플의 경우 방사선 예산이 너무 심하게 제한됩니다. 마지막으로, BF 또는 DF 이미징의 장점을 평가할 때 두꺼운 표본의 경우 표본에서 다중 탄성 산란의 영향을 고려해야 합니다. BF 신호는 다중 산란에 의해 덜 손상되고 두꺼운 시편16,21에 대해 더 높은 분해능을 나타낸다.
유용한 경험 법칙은 수렴보다 몇 배 더 큰 수집 각도를 설정하는 것입니다. 표본이 두꺼울수록 수집 디스크가 커야 합니다. 디스크가 너무 작으면 신호 강도가 낮아집니다. 디스크가 너무 크면 가장 높은 각도의 산란만 발생하므로 이미지 대비가 나빠집니다. 채취 각도는 주어진 샘플에 맞게 최적화되어야 합니다. (회절) 카메라 길이의 함수로서의 검출기 각도는 독립적으로 보정되어야 합니다. 현미경 소프트웨어로 편리하게 표시할 수 있습니다. 실제로, 조명 반각에 대한 수집 비율에서 각각 θ 대 α의 비율에서 2에서 5의 계수(그림 1)는 세포 표본의 CSTET에 권장되는 시작점입니다.
다음 프로토콜은 현미경 제어를 위해 널리 사용되는 SerialEM 소프트웨어를 사용한 STEM 단층 촬영 작업을 설명합니다22,23. SerialEM은 특정 제조업체에 얽매이지 않으며 TEM 단층 촬영에 널리 사용됩니다. 단층 촬영 설정과 관련된 대부분의 작업은 TEM에서 직접 수행할 수 있습니다. SerialEM 전략은 스캐닝 시스템을 카메라로 모델링하는 것입니다. 이를 통해 TEM에서 STEM으로의 간단한 크로스오버가 가능합니다. 그러나 확대 및 비닝과 같은 매개변수는 완전히 인공적이라는 점을 명심해야 합니다. 중요한 매개변수는 미크론 단위의 시야, 시야의 픽셀 수 및 노출 시간입니다. 픽셀 간격 또는 샘플링은 선형 필드를 픽셀 수로 나눈 값이고 체류 시간은 픽셀 수를 노출 시간으로 나눈 값입니다.
STEM 및 CSTET의 최소 구성에는 스캔 발생기, STEM 검출기 및 단층 촬영 제어 소프트웨어의 세 가지 기능이 포함됩니다. 이 프로토콜은 FEI/Thermo Fisher Scientific(TFS)의 명명법을 참조하지만 개념은 일반적입니다. TFS의 독점 소프트웨어는 TEM24용 JoVE에 설명되어 있으며 STEM 작업은 매우 유사합니다.
우리는 현미경이 서비스 팀이나 숙련된 직원에 의해 미리 정렬되었으며 파일을 로드하여 컬럼 정렬을 호출할 수 있다고 가정합니다. 사소한 조정을 직접 정렬이라고 하며 소위 FEG 레지스터(TFS 현미경)에 저장할 수 있습니다. 직접 정렬에는 회전 중심, 피벗 점, 회절 정렬 및 콘덴서 난시에 대한 보상이 포함됩니다. 조정은 반복적으로 수행되어야 합니다. TFS 현미경은 별개의 나노프로브(nP) 및 마이크로프로브(μP) 모드를 구현합니다. 주어진 콘덴서 조리개에 대해, 이들은 각각 TEM의 평행 조명과 STEM의 다소 수렴 (밀접하게 초점이 맞춰진) 전자빔으로 상대적으로 좁거나 넓은 시야를 제공합니다. 다른 제조업체는 수렴 각도 범위를 다루기 위해 다른 방식을 사용합니다.
시작하기 전에 연구 중인 샘플에 따라 시야 L과 샘플링(픽셀 너비) l을 선택해야 합니다. 예를 들어, l = 1nm/픽셀의 경우 4,000μm2의 시야를 커버하는 4,000 x 4,000픽셀 이미지를 선택해야 합니다. 분해능은 기껏해야 공간 샘플링의 두 배이므로 2nm이고 프로브 직경 d는 이와 일치해야 합니다. 프로브 각도의 교정은 이 프로토콜의 범위를 벗어나므로 테이블 또는 화면 판독을 사용할 수 있다고 가정합니다. 프로브 직경은 대략 전자 파장을 반수렴각(라디안 단위)으로 나눈 값: d = λ/θ입니다. 파장 λ는 300keV의 경우 0.002nm이고 200keV 전자의 경우 0.0025nm이므로 1mrad의 θ는 각각 2 또는 2.5nm의 스폿 직경을 제공합니다.
프로토콜은 복잡성이 증가하는 진행으로 제공됩니다. 첫 번째 작업은 현미경 제조업체의 소프트웨어에 따라 달라지는 STEM 이미지를 생성한 다음 SerialEM을 사용하는 틸트 시리즈를 생성하는 것입니다. 많은 독자들이 SerialEM에 익숙할 것이므로 더 복잡한 작업이 자연스럽게 이루어질 것입니다. 절차를 엄격하게 따를 필요가 없습니다. 자동화와 관련된 개발은 TEM뿐만 아니라 STEM을 위해 직접 구현될 수 있습니다. 숙련된 사용자는 형광 맵의 상관 등록부터 시작하여 배치 단층 촬영을 계속 설정하는 프로토콜을 뒤집을 것입니다. 자세한 내용은 Automation25의 최신 개발에 대한 최근 JoVE 기사를 포함하여 SerialEM 자체에 대한 광범위한 문서 및 자습서 라이브러리에서 찾을 수 있습니다.
이 프로토콜은 기존의 TEM 단층 촬영에 접근할 수 없는 세포 영역에서 세포 내 소기관의 3D 보기를 얻는 데 관심이 있는 생명 과학 현미경 전문가를 지원해야 합니다. 플라스틱 절편의 STEM 단층 촬영에도 동일한 프로토콜을 사용할 수 있으며 노출에 대한 제약이 완화됩니다. 프로토콜은 일련의 엄격한 규칙이 아닌 출발점으로 간주되어야 합니다. 실제로 STEM의 힘은 유연성입니다. 그것을 운영하는 올바른 방법은 없습니다.
우리는 STEM 자체가 스캔된 프로브만을 참조하고 이미지 형성을 정의하지 않는다는 점을 강조합니다. 대비는 주로 감지기의 구성에 따라 다릅니다. 보다 간단한 방법은 축 대칭을 가진 검출기, 즉 광축을 중심으로 한 디스크 또는 이를 둘러싸고 있는 고리를 사용하는 것입니다. 일반적으로 조명이 검출기에 직접 충돌하면 (전자 산란) 표본이 어둡게 나타나는 BF 이미지를 기록합니다. 반대로, 검출기가 산란된 전자만 수집할 때 밀도가 높은 표본이 밝게 보이는 DF 이미지를 기록합니다. 적절한 하드웨어를 사용할 수 있는 경우 SerialEM은 이 두 신호를 동시에 수집하고 기록할 수 있습니다. 여러 세그먼트가 있는 감지기에서 완전히 픽셀화된 카메라에 이르기까지 훨씬 더 정교한 구성을 사용할 수 있습니다. 위상차 이미징은 예를 들어, 축외 검출기 요소들(32, 33) 사이의 차이를 평가함으로써 달성될 수 있다. 픽셀당 전체 2D 산란(회절) 패턴을 수집하는 것은 4D STEM(34)으로 알려진 방법을 정의하며, 이는 동일한 원본 데이터로부터 다중 이미지 대비의 재구성을 가능하게 한다. 4차원 STEM은 전자 ptychography를 가능하게 하며, 이는 위상차35를 얻는 또 다른 수단을 제공합니다.
우리는 세포 소기관 및 온전한 세포 또는 미크론 두께의 세포 절편 연구에 가장 유용하다고 생각되는 특정 STEM 양식에 초점을 맞췄습니다. 이것은 특히 조명에서 작은 반 수렴 각도와 검출기에서 상대적으로 큰 수집 각도를 가진 BF 이미징의 사용을 수반합니다. 작은 수렴은 큰 피사계 심도를 제공하여 전체 샘플이 틸트 시리즈(19) 전체에 걸쳐 초점을 유지하도록 합니다. 실제로 좋은 현미경 단계를 사용하면 획득 중에 초점을 조정할 필요도 없앨 수 있습니다. 가격은 프로토콜의 섹션 3에 설명된 대로 해상도의 절충안입니다. 우리는 1nm 픽셀 간격이 4μm의 시야에 도달하는 ~2nm의 프로브를 가진 4k 이미지를 제안했습니다. 그러나 독자는 실험을 강력히 권장합니다. 두 번째 고려 사항은 감지기 측면에 있습니다. 조명 디스크가 축상 BF 검출기를 언더필하면 위상차가 억제되고 산란(진폭) 대비가 우세합니다. 이 상태를 비간섭성 명시야 대비(incoherent bright field contrast)라고 한다 36. 문제는 언더필할 비율에 따라 다르며 답은 샘플에 따라 다릅니다. 매우 얇은 샘플은 검출기가 완전히 채워진 상태에서 최상의 대비를 나타내지만(즉, 조명의 수집 각도와 일치함) 두꺼운 샘플은 모든 강도를 산란시켜 대비가 좋지 않은 잡음 신호를 남깁니다. 유용한 경험 법칙은 샘플이 두꺼울수록 BF 검출기의 외부 컷오프 각도가21이 되어야 한다는 것입니다. 검출기 크기와 위치는 물론 고정되어 있으므로 회절 디스크 크기는 섹션 1에 설명된 대로 카메라 길이를 사용하여 조정됩니다. 감지기 증폭기 설정이 신호가 다이내믹 레인지를 채우지만 직접 조명(1.12.3)에서 포화되지 않는 경우 적절한 신호 강도와 대비에 도달할 때까지 카메라 길이를 늘릴 수 있습니다. 다시 말하지만, 독자는 실험하는 것이 좋습니다. 말하자면 예술은 각도에 있습니다.
프로토콜에서 논의되지 않은 또 다른 매개변수는 현미경 가속 전압입니다. 조명 전자와 표본의 상호 작용은 더 낮은 전압에서 더 강해집니다. 다른 모든 조건이 동일하면 더 낮은 전압에서 더 높은 대비를 기대할 수 있습니다. 반면에, 사용 가능한 시편 두께를 제한하는 것은 시편 내에서 다중 산란이 시작되므로 전압이 높을수록 더 두꺼운 샘플을 사용할 수 있습니다. 그러나 이러한 효과는 다소 미묘합니다. 200 kV 및 300 kV 가속에 대한 지금까지의 경험은 비슷합니다.
분해능 측면에서 STEM에서 기대할 수 있는 것을 고려할 때 이는 다시 표본과 검출기 구성에 따라 다릅니다. 단일 입자 분석 접근법을 사용하여 페리틴의 금속 이온은 환형 암시야 STEM에 의해 수 옹스트롬37의 정밀도로 국소화될 수 있습니다. 보다 최근에는 iDPC(Integrated Differential Phase Contrast) STEM(32 )과 ptychography(35)로 얻은 이미지를 사용하여 바이러스 및 단백질 샘플에 대해 나노미터 미만의 분해능을 달성했습니다. 두꺼운 세포 표본의 독특한 물체와 여기에 설명 된 방법을 사용하면 이러한 고해상도가 현실적이지 않습니다. 최적의 분해능은 프로브 직경이며, 이는 설명된 바와 같이 반수렴 각도와 관련이 있습니다. 다른 요인, 특히 넓은 시야에 도달하기 위한 거친 픽셀 샘플링, 틸트 시리즈의 정렬 불량 및 전송 시 프로브 빔의 확산과 같은 분해능이 저하됩니다. 이미지는 플라스틱 단면 단층 촬영과 잘 비교됩니다. 예를 들어, 여기에 설명된 설정을 사용하면 미세소관의 속이 빈 코어를 쉽게 볼 수 있지만 개별 프로토필라멘트는 볼 수 없습니다.
요약하자면, STEM 방법과 하드웨어는 모두 개발 단계에 있습니다. 이미징의 혁신은 단층 촬영에도 영향을 미쳐 STEM을 다른 기술로는 접근할 수 없는 영역으로 이끌 것으로 예상할 수 있습니다. 우리는 현대의 광학 초해상도 방법을 기반으로 하는 상관 극저온 형광 이미징과의 수렴이 특히 유익할 것으로 기대합니다. 세포 소기관의 규모인 100-1,000nm는 이러한 새로운 방법의 이상적인 표적입니다.
The authors have nothing to disclose.
SerialEM 소프트웨어 패키지의 작성자이자 유지 관리자인 David Mastronade와 Günther Resch의 지속적이고 지속적인 지원에 매우 감사드립니다. P.K.는 오스트리아 과학 기금(FWF)의 지원을 받아 슈뢰딩거 펠로우십 J4449-B를 통해 지원받았습니다. 오픈 액세스를 위해 저자는 이 제출로 인해 발생하는 모든 저자 수락 원고 버전에 CC-BY 공개 저작권 라이선스를 적용했습니다. M.E. 및 SGW는 이스라엘 과학 재단, 보조금 번호 1696/18 및 유럽 연합 Horizon 2020 자매 결연 프로젝트 인 ImpaCT (보조금 번호 857203)의 자금 지원을 인정합니다. ME는 CryoSTEM 프로젝트 (보조금 번호 101055413)에서 ERC의 자금 지원을 인정합니다. M.E.는 Sam and Ayala Zacks 교수 의장이자 Irving and Cherna Moskowitz Center for Nano and Bio-Nano Imaging의 책임자입니다. M.E.의 실험실은 Harold Perlman 가족의 역사적 관대함으로부터 혜택을 받았습니다. 우리는 또한 유럽 연합의 자금 지원을 인정합니다. 그러나 표현된 견해와 의견은 저자의 견해일 뿐이며 반드시 유럽 연합 또는 유럽 연구 위원회 집행 기관의 견해와 의견을 반영하는 것은 아닙니다. 유럽 연합이나 부여 기관은 이에 대해 책임을 지지 않습니다.
SerialEM | University of Colorado | Veriosn 4.0 | SerialEM is a free software platform for microscope control and data acquisition. |
STEM-capable transmission electron microscope | The protocol was written based on experience with several microscopes of Thermo Fisher Scientific: Titan Krios, Talos Arctica, and Tecnai T20-F. In principle it should be applicable to other manufacturers as well. |