Summary

Imaging intravitale dell'espressione di proteine fluorescenti nei topi con una lesione cerebrale traumatica a cranio chiuso e una finestra cranica utilizzando un microscopio a due fotoni

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Questo studio dimostra la somministrazione di una lesione cerebrale traumatica ripetitiva ai topi e l’impianto simultaneo di una finestra cranica per il successivo imaging intravitale di un EGFP espresso da neuroni utilizzando la microscopia a due fotoni.

Abstract

L’obiettivo di questo protocollo è quello di dimostrare come visualizzare longitudinalmente l’espressione e la localizzazione di una proteina di interesse all’interno di specifici tipi di cellule del cervello di un animale, in seguito all’esposizione a stimoli esogeni. Qui, viene mostrata la somministrazione di una lesione cerebrale traumatica a cranio chiuso (TBI) e l’impianto simultaneo di una finestra cranica per il successivo imaging intravitale longitudinale nei topi. Ai topi viene iniettato per via intracranica un virus adeno-associato (AAV) che esprime una proteina fluorescente verde potenziata (EGFP) sotto un promotore neuronale specifico. Dopo 2-4 settimane, i topi vengono sottoposti a un trauma cranico ripetitivo utilizzando un dispositivo di caduta del peso sopra la posizione di iniezione dell’AAV. All’interno della stessa sessione chirurgica, ai topi viene impiantato un palo di metallo e quindi una finestra cranica di vetro sopra il sito di impatto del trauma cranico. L’espressione e la localizzazione cellulare dell’EGFP vengono esaminate utilizzando un microscopio a due fotoni nella stessa regione del cervello esposta a traumi nel corso di mesi.

Introduction

La lesione cerebrale traumatica (TBI), che può derivare da lesioni sportive, collisioni di veicoli e combattimenti militari, è un problema di salute in tutto il mondo. Il trauma cranico può portare a deficit fisiologici, cognitivi e comportamentali e disabilità o mortalità permanente 1,2. La gravità del trauma cranico può essere classificata come lieve, moderata e grave, la stragrande maggioranza dei quali è un trauma cranico lieve (75%-90%)3. È sempre più riconosciuto che il trauma cranico, in particolare le occorrenze ripetitive di trauma cranico, possono promuovere la degenerazione neuronale e fungere da fattori di rischio per diverse malattie neurodegenerative, tra cui il morbo di Alzheimer (AD), la sclerosi laterale amiotrofica (SLA), la demenza frontotemporale (FTD) e l’encefalopatia traumatica cronica (CTE)4,5,6. Tuttavia, i meccanismi molecolari alla base della neurodegenerazione indotta da TBI rimangono poco chiari e rappresentano quindi un’area di studio attiva. Per ottenere informazioni su come i neuroni rispondono e si riprendono dal trauma cranico, viene descritto un metodo per il monitoraggio delle proteine di interesse marcate con fluorescenza, in particolare all’interno dei neuroni, mediante imaging intravitale longitudinale nei topi dopo trauma cranico.

A tal fine, questo studio mostra come combinare una procedura chirurgica per la somministrazione di un trauma cranico a cranio chiuso simile a quella precedentemente riportata7,8, insieme a una procedura chirurgica per l’impianto di una finestra cranica per l’imaging intravitale a valle, come descritto da Goldey et al9. In particolare, non è possibile impiantare prima una finestra cranica e successivamente eseguire un trauma cranico nella stessa regione, poiché l’impatto della caduta di peso che induce il trauma cranico rischia di danneggiare la finestra e causare danni irreparabili al topo. Pertanto, questo protocollo è stato progettato per somministrare il trauma cranico e quindi impiantare la finestra cranica direttamente sul sito di impatto, il tutto all’interno della stessa sessione chirurgica. Un vantaggio della combinazione del trauma cranico e dell’impianto della finestra cranica in un’unica sessione chirurgica è la riduzione del numero di volte in cui un topo viene sottoposto a intervento chirurgico. Inoltre, consente di monitorare la risposta immediata (cioè sulla scala temporale di ore) al trauma cranico, invece di impiantare la finestra in una sessione chirurgica successiva (cioè l’imaging iniziale che inizia su una scala temporale di giorni dopo il trauma cranico). La finestra cranica e la piattaforma di imaging intravitale offrono anche vantaggi rispetto al monitoraggio delle proteine neuronali con metodi convenzionali come l’immunocolorazione dei tessuti fissi. Ad esempio, sono necessari meno topi per l’imaging intravitale, poiché lo stesso topo può essere studiato in più punti temporali, al contrario di coorti separate di topi necessarie per punti temporali discreti. Inoltre, gli stessi neuroni possono essere monitorati nel tempo, consentendo di tracciare specifici eventi biologici o patologici all’interno della stessa cellula.

Come prova di concetto, l’espressione neurone-specifica della proteina fluorescente verde potenziata (EGFP) sotto il promotore della sinapsina è dimostrata qui10. Questo approccio può essere esteso a 1) diversi tipi di cellule cerebrali utilizzando altri promotori specifici del tipo di cellula, come il promotore della proteina basica della mielina (MBP) per gli oligodendrociti e il promotore della proteina acida fibrillare gliale (GFAP) per gli astrociti11, 2) diverse proteine bersaglio di interesse fondendo i loro geni con il gene EGFP e 3) co-esprimendo più proteine fuse a diversi fluorofori. In questo caso, l’EGFP viene confezionato ed espresso tramite la somministrazione di virus adeno-associati (AAV) attraverso un’iniezione intracranica. Un trauma cranico a cranio chiuso viene somministrato utilizzando un dispositivo per la riduzione del peso, seguito dall’impianto di una finestra cranica. La visualizzazione dell’EGFP neuronale si ottiene attraverso la finestra cranica, utilizzando la microscopia a due fotoni per rilevare la fluorescenza dell’EGFP in vivo. Con il laser a due fotoni, è possibile penetrare più in profondità nel tessuto corticale con un fotodanno minimo, consentendo l’imaging longitudinale ripetuto delle stesse regioni corticali all’interno di un singolo topo per giorni e fino a mesi12,13,14,15. In sintesi, questo approccio di combinazione di un intervento chirurgico per trauma cranico con l’imaging intravitale mira a far progredire la comprensione degli eventi molecolari che contribuiscono alla patologia della malattia indotta da trauma cranico16,17.

Protocol

Tutti i protocolli relativi agli animali sono stati condotti in conformità con la Guida per la cura e l’uso degli animali da laboratorio pubblicata dal Comitato del Consiglio Nazionale delle Ricerche (USA). I protocolli sono stati approvati dall’Institutional Animal Care and Use Committee della Chan Medical School (UMMS) dell’Università del Massachusetts (numero di permesso 202100057). In breve, come mostrato nello schema di studio (Figura 1), l’animale riceve un’iniezione virale, un traum…

Representative Results

Come prova di concetto per questo protocollo, particelle virali che esprimono AAV-Syn1-EGFP sono state iniettate nella corteccia cerebrale di topi maschi TDP-43 Q331K/Q331K (sfondo C57BL/6J)19 all’età di 3 mesi. Si noti che possono essere utilizzati anche animali wild-type C57BL/6J, tuttavia questo studio è stato condotto su topi TDP-43 Q331K/Q331K perché il laboratorio è focalizzato sulla ricerca sulle malattie neurodegenerative. Un intervento chirurgico per trauma crani…

Discussion

In questo studio, l’iniezione di AAV, la somministrazione di TBI e un copricapo con impianto di finestra cranica sono stati combinati per l’analisi di imaging longitudinale dei neuroni marcati con EGFP all’interno della corteccia cerebrale del topo (strati IV e V) per osservare gli effetti del TBI sui neuroni corticali. Questo studio rileva che il sito del trauma cranico scelto qui, sopra l’ippocampo, fornisce una superficie relativamente piatta e ampia per l’impianto della finestra cranica. Al contrario, il cranio è re…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo il Dr. Miguel Sena-Esteves della Chan Medical School dell’Università del Massachusetts per aver donato il virus AAV(PHP.eB)-Syn1-EGFP, e Debra Cameron della University of Massachusetts Chan Medical School per aver disegnato lo schizzo del cranio dei topi. Ringraziamo anche i membri attuali e passati dei laboratori Bosco, Schafer e Henninger per i loro suggerimenti e il loro supporto. Questo lavoro è stato finanziato dal Dipartimento della Difesa (W81XWH202071/PRARP) a DAB, DS e NH.

Materials

Adjustable Precision Applicator Brushes Parkell S379
BD insulin syringe BD NDC/HRI#08290-3284-38 5/16" x 31G
Betadine Purdue NDC67618-151-17 including 7.5% povidone iodine
Buprenorphine PAR Pharmaceutical NDC 42023-179-05
Cefazolin HIKMA Pharmaceutical NDC 0143-9924-90
Ceramic Mixing Dish Parkell SKU: S387 For dental cement preparation
Cotton Tipped Applicators ZORO catlog #: G9531702
Catalyst Parkell S371 full name: "C" Universal TBB Catalyst
Dental cement powder Parkell S396 Radiopaque L-Powder for C&B Metabond
Dental drill Foredom H.MH-130
Dental drill controller Foredom HP4-310
Dexamethasone Phoenix NDC 57319-519-05
EF4 carbide bit Microcopy Lot# C150113 Head Dia/Lgth/mm 1.0/4.2
Ethonal Fisher Scientific 04355223EA 75%
FG1/4 carbide bit Microcopy Lot# C150413 Head Dia/Lgth/mm 0.5/0.4
FG4 carbide bit Microcopy Lot# C150309 Head Dia/Lgth/mm 1.4/1.1
Headpost N/A N/A Custom-manufactured
Heating apparatus CWE TC-1000 Mouse equiped with the stereotaxic instrument and be used while operating surgery
Heating blanket CVS pharmacy E12107 extra heating device and be used after surgery
Isoflurane Pivetal NDC 46066-755-03
Isoflurane induction chamber Vetequip 89012-688 induction chamber for short
Isoflurane volatilizing machine Vetequip 911103
Isoflurane volatilizing machine holder Vetequip 901801
Leica surgical microscope Leica LEICA 10450243
Lubricant ophthalmic ointment Picetal NDC 46066-753-55
Marker pen Delasco SMP-BK
Meloxicam Norbrook NDC 55529-040-10
Microinjection pump and its controller World Precision Instruments micro4 and UMP3
Microliter syringe Hamilton Hamilton 80014 1701 RN, 10 μL gauge for syringe and 32 gauge for needle, 2 in, point style 3
Mosquito forceps CAROLINA Item #:625314 Stainless Steel, Curved, 5 in
Depilatory agent McKesson Corporation N/A Nair Hair Aloe & Lanolin Hair Removal Lotion
Microscope 1 Nikon SMZ745 Nikon microscope for cranial window preparation
Microscope 2 Zeiss LSM 7 MP two-photon microscope
Multiphoton laser Coherent Chameleon Ultra II, Model: MRU X1, VERDI 18W laser for two-photon microscopy
Non-absorbable surgical suture Harvard Apparatus catlog# 59-6860 6-0, with round needle
Norland Optical Adhesive 81 Norland Products NOA 81
No-Snag Needle Holder CAROLINA Item #: 567912
Quick base liquid Parkell S398 "B" Quick Base For C&B Metabond
Regular scissor 1 Eurostat eurostat es5-300
Regular scissor 2 World Precision Instruments No. 501759-G
Round cover glass 1 Warner instruments CS-5R Cat# 64-0700 for 5 mm of diameter
Round cover glass 2 Warner instruments CS-3R Cat# 64-0720 for 3 mm of diameter
Rubber rings Orings-Online Item # OO-014-70-50 O-Rings
Saline Bioworld L19102411PR
Spring scissor 1 World Precision Instruments No. 91500-09 tip straight
Spring scissor 2 World Precision Instruments No. 91501-09 tip curved
Stereotaxic platform KOPF Model 900LS
Super glue Henkel Item #: 1647358
surgical Caliper World Precision Instruments No. 501200
Surgical forceps 1 ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES Catlog# 0508-5/45-PO style 5/45, curved
Surgical forceps 2 ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES catlog# 0103-5-PO style 5, straight
Surgical forceps 3 ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES catlog# 72912
Surgical forceps 4 ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES Catlog# 0508-5/45-PO style 5/45, curved
Surgical gauze ZORO catlog #: G0593801
Surgical lamp Leica Leica KL300 LED
UV box Spectrolinker XL-1000 also called UV crosslinker
Vaporguard Vetequip 931401
Vetbond Tissue Adhesive 3M Animal Care Part Number:014006

Referenzen

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Zhong, J., Gunner, G., Henninger, N., Schafer, D. P., Bosco, D. A. Intravital Imaging of Fluorescent Protein Expression in Mice with a Closed-Skull Traumatic Brain Injury and Cranial Window Using a Two-Photon Microscope. J. Vis. Exp. (194), e64701, doi:10.3791/64701 (2023).

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