Este protocolo demonstra a microinjeção de lipopolissacarídeo na região ventricular cerebral em um modelo larval de peixe-zebra para estudar a resposta neuroinflamatória e a neurotoxicidade resultantes.
A neuroinflamação é um jogador-chave em vários distúrbios neurológicos, incluindo doenças neurodegenerativas. Portanto, é de grande interesse pesquisar e desenvolver modelos alternativos de neuroinflamação in vivo para entender o papel da neuroinflamação na neurodegeneração. Neste estudo, um modelo larval de peixe-zebra de neuroinflamação mediado por microinjeção ventricular de lipopolissacarídeo (LPS) para induzir uma resposta imune e neurotoxicidade foi desenvolvido e validado. As linhagens transgênicas de peixe-zebra elavl3:mCherry, ETvmat2:GFP e mpo:EGFP foram utilizadas para quantificação em tempo real da viabilidade dos neurônios cerebrais por imagem viva de fluorescência integrada com análise de intensidade de fluorescência. O comportamento locomotor das larvas de peixe-zebra foi registrado automaticamente por meio de um gravador de vídeo-rastreamento. O conteúdo de óxido nítrico (NO) e os níveis de expressão de mRNA de citocinas inflamatórias, incluindo interleucina-6 (IL-6), interleucina-1β (IL-1β) e fator de necrose tumoral humana α (TNF-α) foram investigados para avaliar a resposta imune induzida por LPS na cabeça larval de peixe-zebra. Às 24 h após a injeção ventricular cerebral de LPS, foram observadas perda de neurônios e deficiência de locomoção em larvas de peixe-zebra. Além disso, a neuroinflamação induzida por LPS aumentou a liberação de NO e a expressão de mRNA de IL-6, IL-1β e TNF-α na cabeça de larvas de peixe-zebra após 6 dias de fertilização (dpf) e resultou no recrutamento de neutrófilos no cérebro do peixe-zebra. Neste estudo, a injeção de peixe-zebra com LPS a uma concentração de 2,5-5 mg/mL a 5 dpf foi determinada como a condição ideal para este ensaio de neuroinflamação farmacológica. Este protocolo apresenta uma metodologia nova, rápida e eficiente para a microinjeção de LPS no ventrículo cerebral para induzir neuroinflamação e neurotoxicidade mediadas por LPS em uma larva de peixe-zebra, que é útil para o estudo da neuroinflamação e também pode ser usada como um ensaio de triagem de drogas in vivo de alto rendimento.
A neuroinflamação tem sido descrita como um fator antineurogênico crucial envolvido na patogênese de várias doenças neurodegenerativas do sistema nervoso central (SNC)1. Após insultos patológicos, a neuroinflamação pode resultar em várias consequências adversas, incluindo inibição da neurogênese e indução da morte celular neuronal 2,3. No processo subjacente à resposta à indução da inflamação, múltiplas citocinas inflamatórias (como TNF-α, IL-1β e IL-6) são secretadas no espaço extracelular e atuam como componentes cruciais na morte dos neurônios e na supressão da neurogênese 4,5,6.
A microinjeção de mediadores inflamatórios (como IL-1β, L-arginina e endotoxinas) no cérebro pode causar redução das células neuronais e neuroinflamação 7,8,9. O lipopolissacarídeo (LPS, Figura 1), endotoxina patogênica presente na parede celular de bactérias Gram-negativas, pode induzir neuroinflamação, exacerbar a neurodegeneração e reduzir a neurogênese em animais10. A injeção de LPS diretamente no SNC do cérebro de camundongos aumentou os níveis de óxido nítrico, citocinas pró-inflamatórias e outros reguladores11. Além disso, a injeção estereotáxica de LPS no ambiente cerebral local pode induzir a produção excessiva de moléculas neurotóxicas, resultando em comprometimento da função neuronal e subsequente desenvolvimento de doenças neurodegenerativas 10,12,13,14,15. No campo da neurociência, observações microscópicas ao vivo e em curso temporal de processos celulares e biológicos em organismos vivos são cruciais para a compreensão dos mecanismos subjacentes à patogênese e à ação farmacológica16. No entanto, a imagem ao vivo de modelos de neuroinflamação e neurotoxicidade em camundongos é fundamentalmente limitada pela profundidade limitada de penetração óptica da microscopia, o que impede a imagem funcional e a observação ao vivo dos processos de desenvolvimento17,18,19. Portanto, o desenvolvimento de modelos alternativos de neuroinflamação é de grande interesse para facilitar o estudo do desenvolvimento patológico e do mecanismo subjacente à neuroinflamação e neurodegeneração, por meio de imagens ao vivo.
O peixe-zebra (Danio rerio) emergiu como um modelo promissor para estudar a neuroinflamação e a neurodegeneração devido ao seu sistema imunológico inato evolutivamente conservado, transparência óptica, grande tamanho da embreagem embrionária, tratabilidade genética e adequação para imagens in vivo 19,20,21,22,23 . Protocolos prévios injetaram diretamente LPS na gema e no ventrículo rombencéfalo de larvas de peixe-zebra sem avaliação mecanicista, ou simplesmente adicionaram LPS à água de peixes (meio de cultura) para induzir uma resposta imune sistêmica letal24,25,26,27. Neste trabalho, desenvolvemos um protocolo para microinjeção de LPS nos ventrículos cerebrais, para desencadear uma resposta imune inata ou neurotoxicidade nos 5 dias pós-fertilização (dpf) larvas de peixe-zebra. Essa resposta é evidenciada pela perda de células neuronais, déficit de comportamento locomotor, aumento da liberação de óxido de nitrito, ativação da expressão gênica inflamatória e recrutamento de neutrófilos no cérebro do peixe-zebra 24 h após a injeção.
Uma quantidade crescente de dados epidemiológicos e experimentais implica infecções bacterianas e virais crônicas como possíveis fatores de risco para doenças neurodegenerativas36. A infecção desencadeia a ativação de processos inflamatórios e respostas imunes do hospedeiro37. Mesmo que a resposta atue como um mecanismo de defesa, a inflamação superativada é prejudicial à neurogênese, e o ambiente inflamatório não permite a sobrevivência dos neurônios re…
The authors have nothing to disclose.
Este estudo foi apoiado por subvenções do Fundo de Desenvolvimento da Ciência e Tecnologia (FDCT) da RAEM (Ref. No. FDCT0058/2019/A1 e 0016/2019/AKP), Comissão de Investigação da Universidade de Macau (MYRG2020-00183-ICMS e CPG2022-00023-ICMS) e Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (n.º 81803398).
Agarose | Sigma-Aldrich | A6361 | |
Agarose, low gelling temperature | Sigma-Aldrich | A9414 | |
Drummond Nanoject III Programmable Nanoliter Injector | Drummond Scientific | 3-000-207 | |
Fluorescence stereo microscopes | Leica | M205 FA | |
GraphPad Prism software | GraphPad Software | Ver. 7.04 | |
Lipopolysaccharides from Escherichia coli O111:B4 | Sigma-Aldrich | L3024 | |
Manual micromanipulator | World Precision Instruments | M3301 | |
Mineral oil | Sigma-Aldrich | M5904 | |
Mx3005P qPCR system | Agilent Technologies | Mx3005P | |
Nanovue plus spectrophotometer | Biochrom | 80-2140-46 | |
Nitrite concentration assay kit | Beyotime Biotechnology | S0021M | |
Phosphate-buffered saline | Sigma-Aldrich | P4417 | |
Programmable Horizontal Pipette Puller | World Precision Instruments | PMP-102 | |
PTU (N-Phenylthiourea) | Sigma-Aldrich | P7629 | |
Random primers | Takara | 3802 | |
SuperScript II Reverse Transcriptase | Invitrogen | 18064014 | |
SYBR Premix Ex Taq II kit | Accurate Biology | AG11701 | |
The 3rd Gen Tgrinder | Tiangen | OSE-Y30 | |
Thin wall glass capillaries (4”) with filament, OD 1.5 mm | World Precision Instruments | TW150F-4 | |
Tricaine (3-amino benzoic acid ethyl ester) | Sigma-Aldrich | A-5040 | |
TRNzol Universal reagent | Tiangen | DP424 | |
Zebrafish tracking box | ViewPoint Behavior Technology |