Протокол описывает пошаговый метод создания модели поврежденной овец ex vivo , инфицированной золотистым стафилококком. Эта высокопроизводительная модель лучше имитирует инфекции in vivo по сравнению с обычными методами микробиологии и предоставляет исследователям физиологически значимую платформу для проверки эффективности новых противомикробных препаратов.
Разработка противомикробных препаратов является дорогостоящим процессом со все более низкими показателями успеха, что делает дальнейшие инвестиции в исследования по обнаружению противомикробных препаратов менее привлекательными. Открытие противомикробных препаратов и последующая коммерциализация могут стать более прибыльными, если подход «быстро и безотказно дешево» может быть реализован на этапах оптимизации лидов, где исследователи имеют больший контроль над дизайном и формулированием лекарств. В этой статье описана установка модели поврежденной овец ex vivo , инфицированной золотистым стафилококком, которая является простой, экономически эффективной, высокопроизводительной и воспроизводимой. Бактериальная физиология в модели имитирует, что во время инфекции бактериальная пролиферация зависит от способности патогена повреждать ткани. Установление раневой инфекции подтверждается увеличением жизнеспособного количества бактерий по сравнению с инокулятом. Эта модель может быть использована в качестве платформы для проверки эффективности новых противомикробных препаратов на этапе оптимизации лидов. Можно утверждать, что доступность этой модели предоставит исследователям, разрабатывающим противомикробные препараты, модель «быстро и без сбоев», которая поможет повысить показатели успеха в последующих испытаниях на животных. Модель также будет способствовать сокращению и совершенствованию использования животных для исследований и в конечном итоге позволит быстрее и экономичнее переводить новые противомикробные препараты для инфекций кожи и мягких тканей в клинику.
Кожные инфекции являются важной глобальной проблемой, с большими экономическими издержками для поставщиков медицинских услуг во всем мире. Развитие множественной лекарственной устойчивости и образование биопленки патогенами играет ключевую роль в распространенности незаживающих ран 1,2,3,4. В результате этого инфекции кожи и мягких тканей являются одной из наиболее распространенных причин длительной госпитализации и последующей реадмиссии5. Задержки в заживлении ран являются дорогостоящими как для пациента, так и для медицинских работников, причем, по некоторым оценкам, около 6,5 миллионов пациентов ежегодно страдают в США. В Великобритании кожные инфекции и связанные с ними осложнения приводят к примерно 75 000 смертей ежегодно 2,4,6.
Золотистый стафилококк (S. aureus) является грозным раневым возбудителем, часто выделяемым из ран пациента 2,7. Скорость появления множественной лекарственной устойчивости резко возросла в 2000-х годах. В течение этого времени около 60% острых бактериальных инфекций кожи и структуры кожи были положительными для метициллин-резистентного S. aureus1. Растущее число штаммов с множественной лекарственной устойчивостью среди стафилококков, да и других патогенов, в течение последних 2 десятилетий указывает на острую необходимость быстрой разработки антибиотиков с новыми способами действия, которые могут преодолеть резистентность.
Тем не менее, с начала 2000-х годов в программах открытия антибиотиков доминировало более длительное время разработки и низкие показатели успеха, и только 17% новых антибиотиков, поступающих в клинические испытания в США, достигли одобрения рынка8. Это говорит о несоответствии между результатами тестирования in vitro новых антибиотиков и их клиническими результатами. Можно утверждать, что это несоответствие во многом связано с различиями в физиологии бактерий во время инфекций in vivo и во время обычных микробиологических методов при тестировании эффективности антибиотиков на доклинических стадиях in vitro . Поэтому новые лабораторные методы, которые более репрезентативны для бактериальной физиологии во время инфекции, необходимы для улучшения показателей успеха в программах открытия антибиотиков.
Современные методы изучения кожных инфекций включают исследования на живых животных (например, мышах), моделях кожи ex vivo (например, свиней) и 3D-тканеинженерных моделях кожи (например, человека)9,10,11,12. Исследования на живых животных строго регламентированы и имеют относительно низкую пропускную способность. На животных моделях раны и инфекции вызывают значительные страдания у животных и вызывают этические проблемы. Модели кожи человека, ex vivo или тканевые, требуют этического одобрения, соблюдения местного и глобального законодательства (Закон о тканях человека, Хельсинкская декларация), и существуют трудности с приобретением тканей, причем для выполнения некоторых запросов требуются годы для выполнения13,14. Оба типа моделей являются трудоемкими и требуют значительных знаний для обеспечения успеха экспериментов. Некоторые современные модели инфекции кожи ex vivo требуют предварительно инокулированных дисков и добавок для раневого ложа, чтобы обеспечить инфекцию; хотя эти модели невероятно полезны, существуют ограничения в процессе заражения, поскольку добавки ограничивают использование раневого ложа в качестве источника питательных веществ 10,15,16,17. Модель, описанная в этом исследовании, не использует никаких добавок к раневому слою, что гарантирует, что патология инфекции и количество жизнеспособных клеток являются результатом прямого использования раневого ложа в качестве единственного источника питательных веществ.
Учитывая необходимость новых лабораторных методов, была разработана новая высокопроизводительная модель овец ex vivo для использования при оценке эффективности новых антибиотиков. Исследования кожных инфекций сталкиваются со многими проблемами – высокими затратами, этическими проблемами и моделями, которые не показывают полной картины20,21. Модели ex vivo и 3D-модели эксплантата позволяют лучше визуализировать процесс заболевания и влияние, которое лечение может оказать от более клинически значимой модели. Здесь описана установка новой модели овечьей кожи, которая проста, воспроизводима и клинически значима и имеет высокую пропускную способность. Овечья кожа была выбрана, поскольку овцы являются одним из крупных млекопитающих, обычно используемых для моделирования реакций на инфекции in vivo. Кроме того, они легко доступны со скотобоен, обеспечивая постоянный запас кожи для исследований, а их туши не ошпариваются, обеспечивая хорошее качество тканей. В этом исследовании в качестве примера патогена использовался S. aureus; однако модель хорошо работает с другими микроорганизмами.
Разработка противомикробных препаратов является важным, но дорогостоящим предприятием, которое, по оценкам, стоит около 1 миллиарда долларов и занимает около 15 лет. Более 90% открытий противомикробных препаратов и доклинических исследований эффективности противомикробных препаратов ?…
The authors have nothing to disclose.
Авторы хотели бы поблагодарить EPSRC (EP/R513313/1) за финансирование. Авторы хотели бы также поблагодарить R.B Elliot и Son Abattoir в Калоу, Честерфилд, за предоставление голов ягнят и за то, что они были так любезны на ранних стадиях проекта, Касию Эмери за ее поддержку на протяжении всего развития этого протокола и Фиону Райт из Департамента инфекций, иммунитета и сердечно-сосудистых заболеваний в Университете Шеффилда за обработку образцов гистологии и невероятное содействие на протяжении всего этого проекта.
24 Well Companion Plate | SLS | 353504 | |
4 mm Biopsy Punch | Williams Medical | D7484 | |
50 ml centrifuge tubes | Fisher Scientific | 10788561 | |
8 mm Biopsy Punch | Williams Medical | D7488 | |
Amphotericin B solution, sterile | Sigma | A2942 | |
Colour Pro Style Cordless Hair Clipper | Wahl | 9639-2117X | Hair Clippers |
Dual Oven Incubator | SLS | OVe1020 | Sterilising oven |
Epidermal growth factor | SLS | E5036-200UG | |
Ethanol | Honeywell | 458600-2.5L | |
F12 HAM | Sigma | N4888 | |
Foetal bovine serum | Labtech International | CA-115/500 | |
Forceps | Fisher Scientific | 15307805 | |
Hair Removal Cream | Veet | Not applicable | |
Heracell VIOS 160i | Thermo Scientific | 15373212 | Tissue culture incubator |
Heraeus Megafuge 16R | VWR | 521-2242 | Centrifuge |
Homogenizer 220, Handheld | Fisher Scientific | 15575809 | |
Homogenizer 220, plastic blending cones | Fisher Scientific | 15585819 | |
Insert Individual 24 well 0.4um membrane | VWR International | 353095 | |
Insulin, recombinant Human | SLS | 91077C-1G | |
Medium 199 (MK media) | Sigma | M0393 | |
Microplate, cell culture Costar 96 well | Fisher Scientific | 10687551 | |
Multitron | Infors | Not applicable | Bacterial incubator |
PBS tablets | Sigma | P4417-100TAB | |
Penicillin-Streptomycin | SLS | P0781 | |
Plate seals | Fisher Scientific | ESI-B-100 | |
Safe 2020 | Fisher Scientific | 1284804 | Class II microbiology safety cabinet |
Scalpel blade number 15 | Fisher Scientific | O305 | |
Scalpel Swann Morton | Fisher Scientific | 11849002 | |
Sodium bicarbonate | Sigma | S5761-1KG | |
Toothed Allis Tissue Forceps | Rocialle | RSPU500-322 | |
Tryptic Soy Agar | Merck Life Science UK Limited | 14432-500G-F | |
Tryptic Soy Broth | Merck Life Science UK Limited | 41298-500G-F | |
Vimoba Tablets | Quip Labs | VMTAB75BX |